Эпигенетические механизмы развития преэклампсии: роль плазменных микроРНК
- Авторы: Никитина Н.А.1, Сидорова И.С.1, Райгородская М.П.2, Морозова Е.А.1, Тимофеев С.А.1, Агеев М.Б.1, Амирасланова Н.И.1
-
Учреждения:
- Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова
- Московский научно-исследовательский онкологический институт им. П.А. Герцена — филиал Национального медицинского исследовательского центра радиологии
- Выпуск: Том 11, № 2 (2024)
- Страницы: 179-192
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://ogarev-online.ru/2313-8726/article/view/260552
- DOI: https://doi.org/10.17816/aog623622
- ID: 260552
Цитировать
Аннотация
Введение. Несмотря на сохранение значимости преэклампсии (ПЭ) в структуре основных причин материнской заболеваемости и смертности, остается неясной этиология данного осложнения беременности, много пробелов в вопросах патофизиологии, соответственно по-прежнему не разработаны высокоэффективные методы прогнозирования, профилактики и лечения. В последние годы большой интерес вызывают перспективы использования молекул микроРНК, которые эпигенетически контролируют экспрессию генов-мишеней на посттранскрипционном уровне и имеют ключевое значение в пролиферации, дифференцировке, инвазии, миграции, апоптозе клеток трофобласта, регуляции ангиогенеза, иммунного ответа и других процессов во время беременности.
Цель. Изучение эпигенетических механизмов развития ПЭ на основании оценки экспрессии патогенетически значимых микроРНК в плазме крови женщин.
Материалы и методы. В исследование включены 62 пациентки, которых разделили на основную (42 беременные с ПЭ) и контрольную (20 здоровых женщин с неосложнённым течением беременности, родов и послеродового периода) группы. Всем пациенткам проводили общеклиническое, лабораторное и инструментальное обследование. Уровень экспрессии 15 микроРНК в плазме крови оценивали с помощью количественной полимеразной цепной реакции в режиме реального времени. Для оценки влияния дифференциально экспрессируемых микроРНК на функционирование сигнальных путей использовали программное обеспечение DIANA miRPath v.3.0. Статистическую обработку данных проводили с использованием лицензионного пакета программ Statistica 6.0.
Результаты. У женщин с ПЭ выявлены разнонаправленные изменения экспрессии 13 из 15 плазменных микроРНК по сравнению с контрольной группой, однако статистически значимо было снижение уровней экспрессии 8 микроРНК: hsa-miR-146a-5p (р=0,011), hsa-miR-181a-5p (р=0,015), hsa-miR-210-3p (р=0,031), hsa-miR-517a-3p (р=0,004), hsa-miR-517с-3p (р=0,007), hsa-miR-574-3p (р=0,048), hsa-miR-574-5p (р=0,003), hsa-miR-1304-5p (р=0,001). В подгруппе беременных, у которых ПЭ протекала с симптомами задержки роста плода, отмечено значимое снижение экспрессии молекул hsa-miR-20a-5p (FC=0,39; р=0,049) и hsa-miR-143-3p (FC=0,71, р=0,05) по сравнению с подгруппой без задержки роста плода. Не выявлено значимых различий в уровне экспрессии анализируемых микроРНК между подгруппами с умеренной и тяжёлой ПЭ, ранней и поздней ПЭ. Функциональная оценка дифференциально экспрессируемых микроРНК у женщин с ПЭ с учётом идентификации их потенциальных генов-мишеней показала наличие дисрегуляции более 40 сигнальных путей и биологических процессов, в которые вовлечены указанные молекулы.
Заключение. Развитие ПЭ сопровождается значимыми эпигенетическими изменениями, при которых изменяется профиль экспрессии микроРНК, ассоциированных с сердечно-сосудистыми и цереброваскулярными заболеваниями, а также плацентарными нарушениями. Выявленные дифференциально экспрессируемые микроРНК могут быть потенциальными диагностическими маркерами ПЭ.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Наталья Александровна Никитина
Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова
Email: natnikitina@list.ru
ORCID iD: 0000-0001-8659-9963
д-р мед. наук, профессор
Россия, МоскваИраида Степановна Сидорова
Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова
Email: sidorovais@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-2209-8662
академик РАН, д-р мед. наук, профессор
Россия, МоскваМария Павловна Райгородская
Московский научно-исследовательский онкологический институт им. П.А. Герцена — филиал Национального медицинского исследовательского центра радиологии
Email: maria.raygorodskaya@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-0527-7773
канд. биол. наук
Россия, МоскваЕкатерина Андреевна Морозова
Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова
Автор, ответственный за переписку.
Email: drstrelnikova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1670-9044
аспирант
Россия, МоскваСергей Анатольевич Тимофеев
Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова
Email: satimofeev30@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-7380-9255
ассистент кафедры
Россия, МоскваМихаил Борисович Агеев
Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова
Email: mikhaageev@ua.ru
ORCID iD: 0000-0002-6603-804X
канд. мед. наук, ассистент кафедры
Россия, МоскваНигяр Ильхамовна Амирасланова
Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова
Email: amiraslanova00@mail.ru
ORCID iD: 0009-0008-7446-3995
ординатор
Россия, МоскваСписок литературы
- Jung E., Romero R., Yeo L., et al. The etiology of preeclampsia // Am J Obstet Gynecol. 2022. Vol. 226, N 2S. P. S844–S866. doi: 10.1016/j.ajog.2021.11.1356
- Khan K.S., Wojdyla D., Say L., et al. WHO analysis of causes of maternal death: a systematic review // Lancet. 2006. Vol. 367, N 9516. P. 1066–1074. doi: 10.1016/S0140-6736(06)68397-9
- Steegers E.A., von Dadelszen P., Duvekot J.J., Pijnenborg R. Pre-eclampsia // Lancet. 2010. Vol. 376, N 9741. P. 631–644. doi: 10.1016/S0140-6736(10)60279-6
- World Health Organization. WHO recommendations for prevention and treatment of pre-eclampsia and eclampsia. Geneva, 2011.
- Roberts J.M., Rich-Edwards J.W., McElrath T.F., et al. Global Pregnancy Collaboration. Subtypes of Preeclampsia: Recognition and Determining Clinical Usefulness // Hypertension. 2021. Vol. 77, N 5. P. 1430–1441. doi: 10.1161/HYPERTENSIONAHA.120.14781
- Roberts J.M., Hubel C.A. The two stage model of preeclampsia: variations on the theme // Placenta. 2009. Vol. 30. Suppl. A. P. S32–37. doi: 10.1016/j.placenta.2008.11.009
- Fitzgerald J.S., Germeyer A., Huppertz B., et al. Governing the invasive trophoblast: current aspects on intra- and extracellular regulation // Am J Reprod Immunol. 2010. Vol. 63, N 6. P. 492–505. doi: 10.1111/j.1600-0897.2010.00824.x
- James J.L., Saghian R., Perwick R., Clark A.R. Trophoblast plugs: impact on utero-placental haemodynamics and spiral artery remodelling // Hum Reprod. 2018. Vol. 33, N 8. P. 1430–1441. doi: 10.1093/ humrep/dey225
- Allerkamp H.H., Clark A.R., Lee T.C., et al. Something old, something new: digital quantification of uterine vascular remodelling and trophoblast plugging in historical collections provides new insight into adaptation of the uteroplacental circulation // Hum Reprod. 2021. Vol. 36, N 3. P. 571–586. doi: 10.1093/humrep/deaa303
- Staff A.C., Fjeldstad H.E., Fosheim I.K., et al. Failure of physiological transformation and spiral artery atherosis: their roles in preeclampsia // Am J Obstet Gynecol. 2022. Vol. 226, N 2S. P. S895–S906. doi: 10.1016/j.ajog.2020.09.026
- Сидорова И.С. Решённые вопросы и нерешённые проблемы преэклампсии в России (редакционная статья) // Российский вестник акушера-гинеколога. 2015. Т. 15, № 2. С. 4–9. doi: 10.17116/rosakush20151524-9
- Phipps E., Prasanna D., Brima W., Jim B. Preeclampsia: Updates in Pathogenesis, Definitions, and Guidelines // Clin J Am Soc Nephrol. 2016. Vol. 11, N 6. P. 1102–1113. doi: 10.2215/CJN.12081115
- Roberts J.M., Bell M.J. If we know so much about preeclampsia. why haven’t we cured the disease? // J. Reprod. Immunol. 2013. Vol. 99, N 1–2. P. 1–9. doi: 10.1016/j.jri.2013.05.003
- Poirier C., Desgagné V., Guérin R., Bouchard L. MicroRNAs in Pregnancy and Gestational Diabetes Mellitus: Emerging Role in Maternal Metabolic Regulation // Curr Diab Rep. 2017. Vol. 17, N 5. P. 35. doi: 10.1007/s11892-017-0856-5
- Enquobahrie D.A., Abetew D.F., Sorensen T.K., et al. Placental microRNA expression in pregnancies complicated by preeclampsia // Am J Obstet Gynecol. 2011. Vol. 204, N 2. P. 178.e12–178.e21.78E21. doi: 10.1016/j.ajog.2010.09.004
- Luo S., Cao N., Tang Y., Gu W. Identification of key microRNAs and genes in preeclampsia by bioinformatics analysis // PLoS One. 2017. Vol. 12, N 6. P. e0178549. doi: 10.1371/journal.pone.0178549
- Wu L., Zhou H., Lin H., et al. Circulating microRNAs are elevated in plasma from severe preeclamptic pregnancies // Reproduction. 2012. Vol. 143, N 3. P. 389–397. doi: 10.1530/REP-11-0304
- Matsubara K., Matsubara Y., Uchikura Y., Sugiyama T. Pathophysiology of Preeclampsia: The Role of Exosomes // Int J Mol Sci. 2021. Vol. 22, N 5. P. 2572. doi: 10.3390/ijms22052572
- Lv Y., Lu C., Ji X., et al. Roles of microRNAs in preeclampsia // J Cell Physiol. 2019. Vol. 234, N 2. P. 1052–1061. doi: 10.1002/jcp.27291
- Ходжаева З.С., Шмаков Р.Г., Савельева Г.М., и др. Преэклампсия. Эклампсия. Отёки, протеинурия и гипертензивные расстройства во время беременности, в родах и послеродовом периоде. Клинические рекомендации. Министерство здравоохранения РФ; 2021.
- Wang Y., Zhang Y., Wang H., et al. Aberrantly up-regulated miR-20a in pre-eclampsic placenta compromised the proliferative and invasive behaviors of trophoblast cells by targeting forkhead box protein A1 // Int J Biol Sci. 2014. Vol. 10, N 9. P. 973–982. doi: 10.7150/ijbs.9088
- Luizon M.R., Conceição I.M.C.A., Viana-Mattioli S., et al. Circulating MicroRNAs in the Second Trimester from Pregnant Women who Subsequently Developed Preeclampsia: Potential Candidates as Predictive Biomarkers and Pathway Analysis for Target Genes of miR-204-5p // Front. Physiol. 2021. Vol. 12. P. 678184. doi: 10.3389/fphys.2021.678184
- Peng P., Song H., Xie C., et al. miR-146a-5p-mediated suppression on trophoblast cell progression and epithelial-mesenchymal transition in preeclampsia // Biol Res. 2021. Vol. 54, N 1. P. 30. doi: 10.1186/s40659-021-00351-5
- Huang X., Wu L., Zhang G., et al. Elevated MicroRNA-181a-5p Contributes to Trophoblast Dysfunction and Preeclampsia // Reprod Sci. 2019. Vol. 26, N 8. P. 1121–1129. doi: 10.1177/1933719118808916
- Kim C., Ye Z., Weyand C.M., Goronzy J.J. miR-181a-regulated pathways in T-cell differentiation and aging // Immun Ageing. 2021. Vol. 18, N 1. P. 28. doi: 10.1186/s12979-021-00240-1
- Nejad R.M.A., Saeidi K., Gharbi S., et al. Quantification of circulating miR-517c-3p and miR-210-3p levels in preeclampsia // Pregnancy Hypertens. 2019. Vol. 16. P. 75–78. doi: 10.1016/j.preghy.2019.03.004
- Munaut C., Tebache L., Blacher S., et al. Dysregulated circulating miRNAs in preeclampsia // Biomed Rep. 2016. Vol. 5, N 6. P. 686–692. doi: 10.3892/br.2016.779
- Jaszczuk I., Koczkodaj D., Kondracka A., et al. The role of miRNA-210 in pre-eclampsia development // Ann Med. 2022. Vol. 54, N 1. P. 1350–1356. doi: 10.1080/07853890.2022.2071459
- Anton L., DeVine A., Polyak E., et al. HIF-1α Stabilization Increases miR-210 Eliciting First Trimester Extravillous Trophoblast Mitochondrial Dysfunction // Front Physiol. 2019. Vol. 10. P. 699. doi: 10.3389/fphys.2019.00699
- Zhong Y., Zhu F., Ding Y. Differential microRNA expression profile in the plasma of preeclampsia and normal pregnancies // Exp Ther Med. 2019. Vol. 18, N 1. P. 826–832. doi: 10.3892/etm.2019.7637
- Liao G., Cheng D., Li J., Hu S. Clinical significance of microRNA-320a and insulin-like growth factor-1 receptor in early-onset preeclampsia patients // Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2021. Vol. 263. P. 164–170. doi: 10.1016/j.ejogrb.2021.06.032
- Akgör U., Ayaz L., Çayan F. Expression levels of maternal plasma microRNAs in preeclamptic pregnancies // J Obstet Gynaecol. 2021. Vol. 41, N 6. P. 910–914. doi: 10.1080/01443615.2020.1820465
- Ren Y., Xu Y., Wang Y., et al. Regulation of miR-375 and Sonic hedgehog on vascular endothelial growth factor in preeclampsia rats and its effect on trophoblast cells // Biosci Rep. Published online May 15, 2020. doi: 10.1042/BSR20200613
- Mayor-Lynn K., Toloubeydokhti T., Cruz A.C., Chegini N. Expression Profile of MicroRNAs and mRNAs in Human Placentas from Pregnancies Complicated by Preeclampsia and Preterm Labor // Reproductive Sciences. 2011. Vol. 18, N 1. P. 46–56. doi: 10.1177/1933719110374115
- Nejad R.M.A., Saeidi K., Gharbi S., et al. Quantification of circulating miR-517c-3p and miR-210-3p levels in preeclampsia // Pregnancy Hypertens. 2019. Vol. 16. P. 75–78. doi: 10.1016/j.preghy.2019.03.004
- Hromadnikova I., Kotlabova K., Krofta L. Cardiovascular Disease-Associated MicroRNA Dysregulation during the First Trimester of Gestation in Women with Chronic Hypertension and Normotensive Women Subsequently Developing Gestational Hypertension or Preeclampsia with or without Fetal Growth Restriction // Biomedicines. 2022. Vol. 10, N 2. P. 256. doi: 10.3390/ biomedicines10020256
- Munaut C., Tebache L., Blacher S., et al. Dysregulated circulating miRNAs in preeclampsia // Biomed Rep. 2016. Vol. 5, N 6. P. 686–692. doi: 10.3892/br.2016.779
- Lip S.V., Boekschoten M.V., Hooiveld G.J., et al. Early-onset preeclampsia, plasma microRNAs, and endothelial cell function // Am J Obstet Gynecol. 2020. Vol. 222, N 5. P. 497.e1–497.e12. doi: 10.1016/j.ajog.2019.11.1286
- Zhong Y., Zhu F., Ding Y. Differential microRNA expression profile in the plasma of preeclampsia and normal pregnancies // Exp Ther Med. 2019. Vol. 18, N 1. P. 826–832. doi: 10.3892/etm.2019.7637
- Ali Z., Zargham U., Zaki S., et al. Elevated expression of miR-210-5p & miR-195-5p deregulates angiogenesis in preeclampsia // Baltica. 2020. Vol. 33, N 5. Paper ID 30dW0.
- Vlachos I.S., Zagganas K., Paraskevopoulou M.D., et al. DIANA-miRPath v3.0: deciphering microRNA function with experimental support // Nucleic Acids Res. 2015. Vol. 43, N W1. P. W460–W466. doi: 10.1093/nar/gkv403
- Bao S., Zhou T., Yan C., et al. A blood-based miRNA signature for early non-invasive diagnosis of preeclampsia // BMC Med. 2022. Vol. 20, N 1. P. 303. doi: 10.1186/s12916-022-02495-x
- Vaiman D. Genes, epigenetics and miRNA regulation in the placenta // Placenta. 2017. Vol. 52. P. 127–133. doi: 10.1016/j.placenta.2016.12.026
- DaSilva-Arnold S.C., Zamudio S., Al-Khan A., et al. Human trophoblast epithelial-mesenchymal transition in abnormally invasive placenta // Biol Reprod. 2018. Vol. 99, N 2. P. 409–421. doi: 10.1093/biolre/ioy042
- Jauniaux E., Watson A., Burton G. Evaluation of respiratory gases and acid-base gradients in human fetal fluids and uteroplacental tissue between 7 and 16 weeks’ gestation // Am J Obstet Gynecol. 2001. Vol. 184, N 5. P. 998–1003. doi: 10.1067/mob.2001.111935
- Ura B., Feriotto G., Monasta L., et al. Potential role of circulating microRNAs as early markers of preeclampsia // Taiwan J Obstet Gynecol. 2014. Vol. 53, N 2. P. 232–234. doi: 10.1016/j.tjog.2014.03.001
- Anton L., Olarerin-George A.O., Hogenesch J.B., Elovitz M.A. Placental expression of miR-517a/b and miR-517c contributes to trophoblast dysfunction and preeclampsia // PLoS One. 2015. Vol. 10. N 3. P. e0122707. doi: 10.1371/journal.pone.0122707
- Burton G.J., Yung H.-W., Cindrova-Davies T., Charnock-Jones D.S. Placental endoplasmic reticulum stress and oxidative stress in the pathophysiology of unexplained intrauterine growth restriction and early onset preeclampsia // Placenta. 2009. Vol. 30, Suppl A(Suppl). P. S43–S48. doi: 10.1016/j.placenta.2008.11.003
- Carbonell T., Gomes A.V. MicroRNAs in the regulation of cellular redox status and its implications in myocardial ischemia-reperfusion injury // Redox Biol. 202. Vol. 36. P. 101607. doi: 10.1016/j.redox.2020.101607
- Carrella S., Di Guida M., Brillante S., et al. miR-181a/b downregulation: a mutation-independent therapeutic approach for inherited retinal diseases // EMBO Mol Med. 2022. Vol. 14, N 11. P. e15941. doi: 10.15252/emmm.202215941
- Hromadnikova I., Kotlabova K., Krofta L. First-Trimester Screening for Fetal Growth Restriction and Small-for-Gestational-Age Pregnancies without Preeclampsia Using Cardiovascular Disease-Associated MicroRNA Biomarkers // Biomedicines. 2022. Vol. 10, N 3. P. 718. doi: 10.3390/biomedicines10030718
- Shi L., Song Z., Li Y., et al. MiR-20a-5p alleviates kidney ischemia/reperfusion injury by targeting ACSL4-dependent ferroptosis // Am J Transplant. 2023. Vol. 23, N 1. P. 11–25. doi: 10.1016/j.ajt.2022.09.003
- Salomon C., Torres M.J., Kobayashi M., et al. A gestational profile of placental exosomes in maternal plasma and their effects on endothelial cell migration // PLoS One. 2014. Vol. 9, N 6. P. e98667. doi: 10.1371/journal.pone.0098667
Дополнительные файлы
