Оценка свойств костнозамещающих материалов на основе полиэтиленгликоль диакрилата и октакальциевого фосфата на модели монокортикального диафизарного дефекта бедренной кости крысы: экспериментальное исследование
- Авторы: Щербаков И.М.1, Климашина Е.С.1, Евдокимов П.В.1, Тихонов А.А.1, Путляев В.И.1, Шипунов Г.А.1, Зацепин В.А.1, Дубров В.Э.1, Данилова Н.В.1, Мальков П.Г.1
-
Учреждения:
- ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»
- Выпуск: Том 29, № 1 (2023)
- Страницы: 25-35
- Раздел: Теоретические и экспериментальные исследования
- URL: https://ogarev-online.ru/2311-2905/article/view/132696
- DOI: https://doi.org/10.17816/2311-2905-2039
- ID: 132696
Цитировать
Аннотация
Актуальность. Проблема замещения дефектов кости актуальна в настоящее время, постоянно ведутся поиски новых синтетических костнозамещающих материалов, однако идеальный материал не найден до сих пор.
Цели исследования: 1) определение пригодности модели монокортикального дефекта диафиза бедренной кости крысы с дополнительным профилактическим армированием при помощи накостной пластины для оценки биологических свойств имплантируемых материалов на примере коммерчески доступного материала сhronOS®; 2) оценка остеокондуктивных свойств композитных материалов на основе полиэтиленгликоль диакрилата и октакальциевого фосфата с архитектурой Кельвина и типа гироид на разработанной модели.
Материал и методы. Монокортикальный дефект диафиза бедренной кости крыс размером 7 мм в длину производили под наркозом в асептических условиях операционной и фиксировали полиэфирэфиркетоновой пластиной и шестью титановыми винтами. Крыс распределяли случайным образом на четыре группы по 12 особей в каждой. В группе «Контроль» у животных костный дефект не заполняли. У животных в группе «Хронос» дефект заполняли подготовленным материалом chronOS® в виде полуцилиндрического блока, в группе «Кельвин» — исследуемым материалом с архитектурой Кельвина, в группе «Гироид» — исследуемым материалом с архитектурой типа гироид. Через 3 и 6 нед. крыс выводили из эксперимента и производили гистологическое исследование зоны дефекта. Затем выполняли гистометрическую оценку количества новообразованной костной ткани с последующей статистической обработкой результатов.
Результаты. В ходе эксперимента все животные достигли планируемой конечной точки, инфекционные осложнения и потеря фиксации зафиксированы не были. При гистологическом исследовании зоны дефекта выявлен минимальный рост кости в группе «Контроль», достаточно медленное образование кости в материале группы «Гироид» и статистически значимо более выраженное образование костной ткани в порах материалов в группах «Кельвин» и «Хронос».
Заключение. Разработанная модель дефекта кости спонтанно не заполняется костной тканью и позволяет проводить изучение биологических свойств костнопластических материалов (способность к биодеградации и остеокондуктивные свойства). Остеокондуктивные свойства композитного материала на основе полиэтиленгликоль диакрилата и октакальциевого фосфата с архитектурой Кельвина выше, чем с архитектурой типа гироид, и сопоставимы с таковыми у материала сhronOS.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Иван Михайлович Щербаков
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»
Автор, ответственный за переписку.
Email: imscherbackov@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-5487-9039
Россия, г. Москва
Елена Сергеевна Климашина
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»
Email: alenakovaleva@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-7441-7381
канд. хим. наук
Россия, г. МоскваПавел Владимирович Евдокимов
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»
Email: pavel.evdokimov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-4398-054X
канд. хим. наук
Россия, г. МоскваАндрей Александрович Тихонов
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»
Email: andytikhon94@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-3372-5393
Россия, г. Москва
Валерий Иванович Путляев
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»
Email: valery.putlayev@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-7601-6787
канд. хим. наук
Россия, г. МоскваГеоргий Александрович Шипунов
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»
Email: shipunovgeorge@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-4495-7050
Россия, г. Москва
Владислав Александрович Зацепин
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»
Email: gyglvladislav@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-8233-2989
Россия, г. Москва
Вадим Эрикович Дубров
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»
Email: vduort@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-5407-0432
д-р мед. наук, профессор
Россия, г. МоскваНаталья Владимировна Данилова
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»
Email: natalyadanilova@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-7848-6707
канд. мед. наук
Россия, г. МоскваПавел Георгиевич Мальков
ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»
Email: malkovp@fbm.msu.ru
ORCID iD: 0000-0001-5074-3513
канд. мед. наук
Россия, г. МоскваСписок литературы
- Карякин Н.Н., Горбатов Р.О., Новиков А.Е., Нифтуллаев Р.М. Хирургическое лечение пациентов с опухолями длинных трубчатых костей верхних конечностей с использованием индивидуальных имплантатов из костнозамещающего материала, созданных по технологиям 3D-печати. Гений ортопедии. 2017;23(3): 323-330. doi: 10.18019/1028-4427-2017-23-3-323-330.
- Касьянова Е.С., Копелев П.В., Александрова С.А. Оценка влияния модификации коллагеном I типа поверхности остеозамещающего материала “БИОСИТ СР ЭЛКОР” на жизнеспособность мезенхимных стромальных клеток костного мозга. Бюллетень инновационных технологий. 2018;2(3(7)):32-37.
- Крюков Е.В., Брижань Л.К., Хоминец В.В., Давыдов Д.В., Чирва Ю.В., Севастьянов В.И. и др. Опыт клинического применения тканеинженерных конструкций в лечении протяженных дефектов костной ткани. Гений ортопедии. 2019;25(1):49-57. doi: 10.18019/1028-4427-2019-25-1-49-57.
- Хоминец В.В., Воробьев К.А., Соколова М.О., Иванова А.К., Комаров А.В. Аллогенные остеопластические материалы для реконструктивной хирургии боевых травм. Известия Российской Военно-медицинской академии. 2022;41(3):309-314. doi: 10.17816/rmmar109090.
- Bai X., Gao M., Syed S., Zhuang J., Xu X., Zhang X.Q. Bioactive hydrogels for bone regeneration. Bioact Mater. 2018;3(4):401-417. doi: 10.1016/j.bioactmat.2018.05.006.
- van der Heide D., Cidonio G., Stoddart M.J., D’Este M. 3D printing of inorganic-biopolymer composites for bone regeneration. Biofabrication. 2022;14(4). doi: 10.1088/1758-5090/ac8cb2.
- Wu Y., Zeng W., Xu J., Sun Y., Huang Y., Xiang D. et al. Preparation, physicochemical characterization, and in vitro and in vivo osteogenic evaluation of a bioresorbable, moldable, hydroxyapatite/poly(caprolactone-co-lactide) bone substitute. J Biomed Mater Res A. 2023;111(3):367-377. doi: 10.1002/jbm.a.37463.
- Kitamura M., Ohtsuki C., Iwasaki H., Ogata S., Tanihara M., Miyazaki T. The controlled resorption of porous alpha-tricalcium phosphate using a hydroxypropylcellulose coating. J Mater Sci Mater Med. 2004;15(10): 1153-1158. doi: 10.1023/B:JMSM.0000046399.40310.47.
- Bohner M. Resorbable biomaterials as bone graft substitutes. 2010;13(1-2):24-30. Available from: https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S1369702110700146. doi: 10.1016/S1369-7021(10)70014-6.
- Hing K.A. Bioceramic bone graft substitutes: influence of porosity and chemistry. Int J Appl Ceram Technol. 2005;2(3):184-199. doi: 10.1111/j.1744-7402.2005.02020.x.
- Komlev V.S., Bozo I.I., Deev R.V., Gurin A.N. Bioactivity and effect of bone formation for octacalcium phosphate ceramics. In: Octacalcium Phosphate Biomaterials. 2020. p. 85-119. doi: 10.1016/B978-0-08-102511-6.00005-4. Available from: https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/B9780081025116000054.
- Suzuki O. Octacalcium phosphate: osteoconductivity and crystal chemistry. Acta Biomater. 2010;6(9):3379-3387. doi: 10.1016/j.actbio.2010.04.002.
- Miño-Fariña N., Muñoz-Guzón F., López-Peña M., Ginebra M.P., Del Valle-Fresno S., Ayala D. et al. Quantitative analysis of the resorption and osteoconduction of a macroporous calcium phosphate bone cement for the repair of a critical size defect in the femoral condyle. Vet J. 2009;179(2):264-272. doi: 10.1016/j.tvjl.2007.09.011.
- Sutradhar A., Paulino G.H., Miller M.J., Nguyen T.H. Topological optimization for designing patient-specific large craniofacial segmental bone replacements. Proc Natl Acad Sci USA. 2010;107(30):13222-13227. doi: 10.1073/pnas.1001208107.
- Al-Tamimi A.A., Peach C., Fernandes P.R., Cseke A., Bartolo P.J.D.S. Topology Optimization to Reduce the Stress Shielding Effect for Orthopedic Applications. Procedia CIRP. 2017;65:202-206. Available from: https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S2212827117305425.
- Querin O.M., Victoria M., Alonso C., Ansola R., Martí P. Topology Optimization as a Digital Design Tool. In: Topology Design Methods for Structural Optimization. Elsevier; 2017. p. 93-111. doi: 10.1016/B978-0-08-100916-1.00006-4. Available from: https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/B9780081009161000064.
- Тихонов А.А., Евдокимов П.В., Путляев В.И., Сафронова Т.В., Филиппов Я.Ю. О выборе архитектуры остеокондуктивных биокерамических имплантатов. Материаловедение. 2018;(8):43-48. doi: 10.31044/1684-579Х-2018-0-8-43-48.
- Kapfer S.C., Hyde S.T., Mecke K., Arns C.H., Schröder-Turk G.E. Minimal surface scaffold designs for tissue engineering. Biomaterials. 2011;32(29):6875-6882. doi: 10.1016/j.biomaterials.2011.06.012.
- Тихонов А.А., Кукуева Е.В., Евдокимов П.В., Климашина Е.С, Путляев В.И., Щербаков И.М. и др. Синтез замещенного октакальциевого фосфата для наполнения композитных имплантатов на основе полимерных гидрогелей, сформированных стереолитографической 3d-печатью. Неорганические материалы. 2018;54(10):1123-1132. doi: 10.1134/s0002337x18100172.
- Schindelin J., Arganda-Carreras I., Frise E., Kaynig V., Longair M., Pietzsch T. et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nat Methods. 2012;9(7):676-682. doi: 10.1038/nmeth.2019.
- Mohiuddin O.A., Campbell B., Poche J.N., Ma M., Rogers E., Gaupp D. et al. Decellularized Adipose Tissue Hydrogel Promotes Bone Regeneration in Critical-Sized Mouse Femoral Defect Model. Front Bioeng Biotechnol. 2019;7:211. doi: 10.3389/fbioe.2019.00211.
- Dau M., Ganz C., Zaage F., Frerich B., Gerber T. Hydrogel-embedded nanocrystalline hydroxyapatite granules (Elastic blocks) based on a cross-linked polyvinylpyrrolidone as bone grafting substitute in a rat tibia model. Int J Nanomedicine. 2017;12:7393-7404.
- Frasca S., Norol F., Le Visage C., Collombet J.M., Letourneur D., Holy X. et al. Calcium-phosphate ceramics and polysaccharide-based hydrogel scaffolds combined with mesenchymal stem cell differently support bone repair in rats. J Mater Sci Mater Med. 2017;28(2):35. doi: 10.1007/s10856-016-5839-6.
- Lohmann P., Willuweit A., Neffe A.T., Geisler S., Gebauer T.P., Beer S. et al. Bone regeneration induced by a 3D architectured hydrogel in a rat critical-size calvarial defect. Biomaterials. 2017;113:158-169. doi: 10.1016/j.biomaterials.2016.10.039.
- Каралкин П.А., Сергеева Н.С., Комлев В.С., Свиридова И.К., Кирсанова В.А., Ахмедова С.А. и др. Биосовместимость и остеопластические свойства минерал-полимерных композиционных материалов на основе альгината натрия, желатина и фосфатов кальция, предназначенных для 3D-печати костнозамещающих конструктов. Гены и клетки. 2016;11(3):94-101.
- Мураев А.А., Бонарцев А.П., Гажва Ю.В., Рябова В.М., Волков А.В., Жаркова И.И. и др. Разработка и доклинические исследования ортотопических костных имплантатов на основе гибридной конструкции из поли-3-оксибутирата и альгината натрия. Современные технологии в медицине. 2016;8(4):42-49.
- Bi S., Wang P., Hu S., Li S., Pang J., Zhou Z. et al. Construction of physical-crosslink chitosan/PVA double-network hydrogel with surface mineralization for bone repair. Carbohydr Polym. 2019;224:115176. doi: 10.1016/j.carbpol.2019.115176.
- Лунева С.Н., Талашова И.А., Осипова Е.В., Накоскин А.Н., Еманов А.А. Влияние состава биокомпозиционных материалов, имплантированных в дырчатые дефекты метафиза, на репаративную регенерацию и минерализацию костной ткани. Бюллетень экспериментальой биологии и медицины. 2013;156(8):255-259.
- Susin C., Lee J., Fiorini T., Koo K.T., Schüpbach P., Finger Stadler A. et al. Screening of Hydroxyapatite Biomaterials for Alveolar Augmentation Using a Rat Calvaria Critical-Size Defect Model: Bone Formation/Maturation and Biomaterials Resolution. Biomolecules. 2022;12(11):1677. doi: 10.3390/biom12111677.
- Wang M., Gu Z., Li B., Zhang J., Yang L., Zheng X. et al. Bioactive Nanocomposite Microsponges for Effective Reconstruction of Critical-Sized Calvarial Defects in Rat Model. Int J Nanomedicine. 2022;17:6593-6606. doi: 10.2147/IJN.S389194.
- van der Stok J., Koolen M.K., de Maat M.P., Yavari S.A., Alblas J., Patka P. et al. Full regeneration of segmental bone defects using porous titanium implants loaded with BMP-2 containing fibrin gels. Eur Cell Mater. 2015;29:141-153; discussion 153-154. doi: 10.22203/ecm.v029a11.
- Ando K., Imagama S., Kobayashi K., Ito K., Tsushima M., Morozumi M. et al. Effects of a self-assembling peptide as a scaffold on bone formation in a defect. PLoS One. 2018;13(1):e0190833. doi: 10.1371/journal.pone.0190833.
Дополнительные файлы
