ВЛИЯНИЕ ДАЛАРГИНА НА ФАГОЦИТАРНУЮ АКТИВНОСТЬ НЕЙТРОФИЛОВ ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМ ЯЗВЕННОМ КОЛИТЕ У МЫШЕЙ
- Авторы: Ляшев А.Ю.1, Маль Г.С.1
-
Учреждения:
- Курский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 23, № 3 (2024)
- Страницы: 40-46
- Раздел: Медико-биологические науки: оригинальные статьи
- URL: https://ogarev-online.ru/2225-6016/article/view/354457
- DOI: https://doi.org/10.37903/vsgma.2024.3.5
- EDN: https://elibrary.ru/FBXDVM
- ID: 354457
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Ключевые слова
Полный текст
Введение Язвенный колит представляет собой хроническое, мультифакториальное заболевание, характеризующееся взаимодействием различных этиологических факторов и патогенетических механизмов, в том числе генетических, эпигенетических, средовых и микробных [10]. Несмотря на значительный прогресс, достигнутый в диагностике ЯК и других воспалительных заболеваний кишечника, их лечение до настоящего времени остается во многом эмпирическим [14]. Известно, что патогенез язвенного колита связан с нарушением барьера слизистой оболочки толстого кишечника, пенетрацией патогенной и комменсальной микрофлоры из просвета кишечника в толщу его стенки, последовательной активацией нейтрофилов, макрофагов, лимфоцитов, развитием гиперергического воспаления [13]. Ранее показано, что активация мононуклеарных клеток сопровождается развитием дисбаланса про- и противовоспалительных цитокинов, нарушением продукции ростовых факторов и матриксных металлопротеиназ [8, 15, 20]. Важную роль в развитии язвенного колита играют нарушения состава микробиома, что подтверждается терапевтическим эффектом трансплантации фекальной микробиоты [2]. Общепризнано, что восстановление гомеостаза в стенке толстого кишечника невозможно без элиминации патогенных микробов. В то же время динамика фагоцитарной активности нейтрофилов при язвенном колите остается недостаточно исследованной. Ранее показано, что даларгин обладает корригирующим действием при экспериментальном язвенном колите, что проявляется снижением индекса активности болезни, распространенности язв и инфильтратов в стенке толстого кишечника [7], а также модулирующим эффектом на содержание провоспалительных и противовоспалительных цитокинов в ткани ободочной кишки [8]. Хорошо известен антиоксидантный эффект даларгина [1], при этом общепризнано, что активация свободно-радикального окисления является одним из ведущих факторов формирования различных форм патологии толстого кишечника [19], включая состояние микробиоты толстого кишечника [3]. Целью работы явилось изучение эффектов даларгина на фагоцитарную активность нейтрофилов периферической крови у мышей с экспериментальным язвенным колитом. Методика Исследование выполнено на 104 мышах-самцах линии Balb/C весом 21-23 г. из филиала «Столбовая» Федерального государственного бюджетного учреждения науки «Научный центр биомедицинских технологий Федерального медико-биологического агентства». Для выполнения исследования были сформированы следующие группы: 1) интактная (8 животных без экспериментального язвенного колита и инъекций); 2) контрольная №1 (24 мыши с экспериментальным язвенным колитом и подкожным введением физраствора); 3) контрольная №2 (24 мыши с экспериментальным язвенным колитом и внутрижелудочным введением физраствора); 4) опытная №1 (24 мыши с экспериментальным язвенным колитом и введением даларгина); 5) опытная №2 (24 мыши с экспериментальным язвенным колитом и введением сульфасалазина). Язвенный колит моделировали заменой питьевой воды 5% раствором декстрана сульфата натрия (Mr=40000, «PanReac-AppliСhem», ФРГ) в кипяченой воде на 5 суток [11]. Животных выводили из эксперимента на 5, 7 сутки (острый колит) и на 28 сутки (хронический колит) цервикальной дислокацией под хлоралгидратным наркозом. Даларгин (Тир-D-Ала-Гли-Фен-Лей-Арг) (НПО «Микроген», РФ) растворяли в 0,9% растворе хлорида натрия, применяли подкожно в объеме 0,1 мл в дозе 100 мкг/кг массы тела 1 раз в сутки в течение 7 дней с начала моделирования язвенного колита. По данным литературы даларгин проявляет высокую фармакологическую активность при его использовании в указанной дозе [6]. Сульфасалазин («КРКА», Словения) применяли в качестве препарата сравнения и вводили мышам внутрижелудочно в виде суспензии в физиологическом растворе в дозе 200 мг/кг массы тела в объеме 0,3 мл в течение 7 суток с начала моделирования язвенного колита [9]. При терапии экспериментального язвенного колита у крыс внутрижелудочным введением сульфасалазина в дозе 200 мг/кг установлено уменьшение индекса активности болезни, площади язв и кровоизлияний в прямой кишке, содержания индуцированной NO-синтазы, ИЛ-1β, ИЛ-6, ФНОα в гомогенате прямой кишки [9]. Контрольная группа животных с экспериментальным язвенным колитом состояла из 48 особей, 24 из которых физраствор вводили подкожно, 24 - внутрижелудочно. Физраствор вводили 1 раз в сутки в течение 7 дней с начала моделирования язвенного колита в объеме 0,1 мл подкожно или 0,3 мл внутрижелудочно. Для определения фагоцитарной активности нейтрофилов в пробирку с 0,5 мл гепаринизированной крови экспериментального животного добавляли бактериальную взвесь Staphylococcus aureus (109 микробных тел/мл) из расчета 10 микробов на 1 нейтрофил. Кровь, смешанную с бактериями, инкубировали 30 минут в термостате при температуре 370С. Приготовленные мазки фиксировали этанолом и окрашивали по Романовскому-Гимза. Фагоцитарную активность нейтрофилов периферической крови оценивали по следующим показателям: фагоцитарный индекс (ФИ) - количество активно фагоцитирующих нейтрофилов из 100 клеток; фагоцитарное число (ФЧ) - среднее число микробных тел, захваченных 1 фагоцитирующим нейтрофилом, опсоно-фагоцитарный индекс (ОФИ) - среднее количество поглощенных микробных тел в расчете на 100 нейтрофилов. Исследование выполнено в лаборатории доклинических исследований лекарственных средств НИИ экспериментальной медицины Курского государственного медицинского университета с соблюдением принципов гуманного отношения к лабораторным животным [4, 5], положений Хельсинской декларации Всемирной медицинской ассоциации о гуманном отношении к лабораторным животным (2000 г.), директивы Европейского Парламента и Совета от 22 сентября 2010 года (86/609 ЕС) и Правил надлежащей лабораторной практики в Российской Федерации (приказ МЗ РФ №199н от 01.04.2016 г.). Проведение экспериментов по теме диссертационного исследования было одобрено Региональным этическим комитетом (протокол заседания секции доклинических исследований РЭК №1 от 03.04.2023). При статистической обработке полученных результатов нормальность распределения оценивали с помощью критерия Шапиро-Уилка, а гомогенность дисперсий по критерию Левена. Проверку статистических гипотез проводили с помощью непараметрического U-критерия Манна-Уитни. Применение непараметрической статистики было связано с небольшим размером выборок, разным характером распределения в вариационных рядах и неравенством дисперсий при сравнении групп. Материал представлен как медиана (Me) нижний (Ql) и верхний (Q3) квартили. В ходе проведения статистического анализа нулевая гипотеза отвергалась при p≤0,05. Статистическая обработка проводилась с помощью программного обеспечения Statistica версия 10. Результаты исследования При сравнении двух контрольных групп не установлено статистически значимых различий по показателям фагоцитарной активности нейтрофилов (p>0,05). У мышей Balb/C с экспериментальным язвенным колитом установлено повышение фагоцитарной активности нейтрофилов периферической крови на 5 и 7 сутки эксперимента (табл.). Так, на 5 сутки показано увеличение ФИ на 29,7-52,2% (P=0,0019), ФЧ - на 65,5% (P=0,0009), ОФИ - в 2,2-2,3 (P=0,0009) раза у животных контрольных групп по сравнению с интактными. Спустя 7 суток у мышей с острым колитом отмечается повышение ФИ на 57,1% (P=0,0009), ФЧ - на 69,0-75,9% (P=0,0009), ОФИ - в 2,7-2,8 (P=0,0009) раза. У животных с хроническим язвенным колитом на 28 сутки эксперимента не установлено различий по показателям, характеризующим фагоцитарную активность нейтрофилов периферической крови (p>0,05). Применение даларгина мышам с экспериментальным язвенным колитом оказывало корригирующее влияние на фагоцитарную активность нейтрофилов, что проявлялось снижением ФИ на 32,4%, ФЧ - на 16,7%, ОФИ - на 39,8% на 5 сутки и на 22,4%, 17,6%, 36,6% соответственно на 7 сутки (P=0,0009-0,0063). На 28 сутки даларгин не оказывал статистически значимого влияния на фагоцитарную активность нейтрофилов по сравнению, как с контрольной группой, так и с интактными мышами (p>0,05). Внутрижелудочное введение сульфасалазина в дозе 200 мг/кг массы тела вызывало снижение ФЧ на 14,6% (P=0,0046), ОФИ - на 28,4% (P=0,0046), но не влияло на ФИ (p>0,05) на 5 сутки наблюдения. На 7 сутки эксперимента установлено уменьшение всех 3 изучаемых показателей у мышей с язвенным колитом, которым применяли сульфасалазин: ФИ - на 16,7% (P=0,0016), ФЧ - на 10,2% (P=0,0028), ОФИ - на 25,3% (P=0,0009). Как и в группе язвенный колит+даларгин, не выявлено изменений изучаемых показателей на 28 сутки у мышей группы язвенный колит+сульфасалазин (p>0,05). При сравнении эффектов даларгина и сульфасалазина на фагоцитарную активность нейтрофилов периферической крови мышей с экспериментальным язвенным колитом не установлено статистически значимых различий по показателям ФЧ, ФИ и ОФИ (p>0,05). Таблица Влияние даларгина на фагоцитарный индекс, фагоцитарное число и опсоно-фагоцитарный индекс нейтрофилов периферической крови мышей с язвенным колитом Показатели Группа Срок эксперимента Значение фагоцитарного индекса, n Значение фагоцитарного числа, n Значение опсоно-фагоцитарного индекса, n Интактная 45,5 [42, 5; 49, 0] 1,45 [1, 35; 1, 50] 64,7 [60, 8; 67, 9] Контрольная группа №1 (язвенный колит+физраствор подкожно) 5 сутки 69,5 [56, 5; 65, 5]х, P=0,0019 2,40 [2, 30; 2, 50] х, P=0,0009 145,7 [136, 0; 159, 9] х, P=0,0009 7 сутки 71,5 [68, 0; 75, 5] х, P=0,0009 2,55 [2, 45; 2, 65] х, P=0,0009 178,8 [177, 4; 187, 7] х, P=0,0009 28 сутки 47,5 [41, 5; 50, 5], P=0,8336 1,40 [1, 35; 1, 55], P=1,0000 64,9 [60, 5; 73, 1], P=0,8748 Контрольная группа №2 (язвенный колит+физраствор внутрижелудочно) 5 сутки 59,0 [51, 5; 68, 0] х, P=0,0074 2,40 [2, 25; 2, 60] х, P=0,0009 141,4 [123, 6; 166, 8] х, P=0,0009 7 сутки 71,5 [68, 0; 76, 5] х, P=0,0009 2,45 [2, 40; 2, 55] х, P=0,0009 177,7 [162, 0; 192, 4] х, P=0,0009 28 сутки 42,0 [39, 5; 50, 0], P=0,5286 1,40 [1, 25; 1, 50], P=0,6744 60,1 [54, 3; 68, 6], P=0,4309 Группа язвенный колит+даларгин в дозе 100 мкг/кг 5 сутки 47,0 [43, 5; 52, 5]*, P=0,0063 2,00 [1, 80; 2, 05]*, P=0,0023 87,7 [81, 9; 107, 6]*, P=0,0039 7 сутки 55,5 [51, 0; 61, 5]*, P=0,0009 2,10 [1, 95; 2, 25]*, P=0,0014 113,4 [99, 4; 138, 4]*, P=0,0009 28 сутки 47,0 [41, 5; 51, 0], P=0,9581 1,35 [1, 30; 1, 45] , P=0,3446 65,8 [54, 0; 71, 9] , P=0,6365 Группа язвенный колит+ сульфасалазин в дозе 200 мг/кг 5 сутки 50,5 [45, 5; 54, 0], P=0,0520 2,05 [1, 85; 2, 20]*, P=0,0046 101,2 [93, 4; 116, 1]*, P=0,0046 7 сутки 59,5 [55, 0; 63, 5]*, P=0,0016 2,20 [2, 05; 2, 25]*, P=0,0028 132,8 [114, 0; 143, 0]*, P=0,0009 28 сутки 47,0 [41, 5; 52, 0], P=0,4008 1,35 [1, 25; 1, 40], P=0,4948 62,5 [54, 3; 71, 7], P=0,7929 Примечание: х - p<0,05 по сравнению с интактной группой; * - p<0,05 по сравнению с контрольной группой Обсуждение результатов исследования Полученные нами результаты подтверждают данные литературы об активном участии нейтрофилов в развитии язвенного колита [17]. Повышение функциональной активности нейтрофилов в стенке ободочной кишки при пенетрации комменсальной и патогенной микрофлоры из просвета толстого кишечника, является одним из ведущих механизмов патогенеза этого заболевания [20]. Как показано мультицентровыми исследованиями, определение индекса PICaSSO Histological Remission Index [PHRI], основанным только на определении нейтрофилов, является простым и надежным показателем ремиссии язвенного колита и коррелирует с выраженностью эндоскопическим изменений в стенке ободочной кишки [18]. Применение даларгина оказывает корригирующее влияние на фагоцитарную активность нейтрофилов, что проявляется увеличением ФЧ, ФИ и ОФИ на 5 и 7 сутки эксперимента по сравнению с контрольной группой. Установлено, что опиоидные μ-рецепторы присутствуют на нейтрофилах, макрофагах, Т- и В-лимфоцитах, дендритных, эпителиальных клетках и нейронах в толстом кишечнике [12], и их экспрессия повышается при развитии язвенного колита [16]. Известно, что даларгин является аналогом лей-энкефалина и проявляет высокую аффинность в отношении опиоидных μ- и δ-рецепторов [1]. Учитывая данные об увеличении плотности опиоидных μ-рецепторов на фагоцитирующих клетках при язвенном колите, можно предположить, что корригирующий эффект даларгина на функциональную активность нейтрофилов реализуется через опиоидные μ-рецепторы на поверхности нейтрофилов. Также терапевтическое действие препарата связано, по-видимому, с уменьшением продукции провоспалительных цитокинов и увеличением секреции противовоспалительных интерлейкинов [8]. Полученные в работе данные об ингибировании фагоцитарной активности нейтрофилов у мышей с язвенным колитом подтверждают ранее полученные результаты об эффективности даларгина при терапии этого заболевания [7, 8]. Выводы 1. Развитие экспериментального язвенного колита у мышей сопровождается повышением фагоцитирующей активности нейтрофилов в острый период заболевания, что проявляется повышением ФЧ, ФИ и ОФИ. 2. Применение даларгина снижает фагоцитарную активность нейтрофилов, что является одним из механизмов противовоспалительного действия препарата у мышей с язвенным колитом.Об авторах
Андрей Юрьевич Ляшев
Курский государственный медицинский университет
Email: email@example.com
младший научный сотрудник лаборатории доклинических исследований лекарственных средств НИИ экспериментальной медицины Курского государственного медицинского университета Россия, 305041, Курск, ул. Карла Маркса, 3
Галина Сергеевна Маль
Курский государственный медицинский университет
Email: email@example.com
доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой фармакологии Курского государственного медицинского университета Россия, 305041, Курск, ул. Карла Маркса, 3
Список литературы
Булгаков С.А. Пептидные лекарства в панкреатологии: состояние проблемы и перспективы // Доказательная гастроэнтерология. - 2018. - Т.7, №4. - С.30-34. @@ Bulgakov S.A. Peptide therapeutics in pancreatology // Dokazanel’naya gastroenterologiya.Russian Journal of Evidence-based Gastroenterology. - 2018. - V.7, N4. - P. 30-34. (in Russian) Волк Т.Г., Савин М.В., Томилина П.А. Перспективы использования метода трансплантации фекальной микробиоты для лечения дисбиотических состояний и связанных с ними заболеваний //Вестник Смоленской государственной медицинской академии. - 2022. - Т.21, №2. - С. 139-147. @@ Volk T.G., Savin M.V., Tomilina P.A. Prospects for using the method of fecal microbiota transplantation for the treatment of dysbiotic conditions and related diseases // Vestnik Smolenskoi gosudarstvennoi meditsinskoi akademii. Bulletin of Smolensk State Medical Academy. - 2022. - V.21, N2. - P. 139-147. (in Russian) Королев В.А., Медведева О.А., Ряднова В.А., Шевченко А.В., Шеховцова О.В., Королев И.В., Королев Е.В. Оценка состояния пристеночной микробиоты толстой кишки и антиоксидантных свойств колоноцитов крыс в условиях экологического дисбиоза и монокоррекции витамином E и облепиховым маслом // Научные результаты биомедицинских исследований. - 2023. - Т.9, №1. - С. 71-85. @@ Korolev V.A., Medvedeva O.A., Riadnova V.A., Shevchenko A.V., Shekhovtsova O.V., Korolev I.V., Korolev E.V. State of colon parietal microbiota and antioxidant properties of colonocytes in rats with ecological dysbiosis treated with sea vitamin E and buckthorn oil // Nauchnyye rezul’taty biomeditsinskih issledovanii. Research Results in Biomedicine. - 2023. - V.9, N1. - P. 71-85. (in Russian) Липатов В.А., Крюков А.А., Северинов Д.А., Саакян А.Р. Этические и правовые аспекты проведения экспериментальных биомедицинских исследований in vivo. Часть I // Российский медико-биологический вестник имени академика И.П. Павлова. - 2019. - Т.27, №1. - С. 80-92. @@ Lipatov V.A., Severinov D.A., Kryukov A.A., Saakyan A.R. Ethical and legal aspects of in vivo experimental biomedical research. Part I // Rossiiskii medico-biologicheskii vestnik imeni akademika I.P. Pavlova. I.P. Pavlov Russian Medical Biological Herald. - 2019. - V.27, N1. - P. 80-92. (in Russian) Липатов В.А., Крюков А.А., Северинов Д.А., Саакян А.Р. Этические и правовые аспекты проведения экспериментальных биомедицинских исследований in vivo. Часть II // Российский медико-биологический вестник имени академика И.П. Павлова. - 2019. - Т.27, №2. - С. 245-257. @@ Lipatov V.A., Severinov D.A., Kryukov A.A., Saakyan A.R. Ethical and legal aspects of in vivo experimental biomedical research. Part II // Rossiiskii medico-biologicheskii vestnik imeni akademika I.P. Pavlova. I.P. Pavlov Russian Medical Biological Herald. - 2019. - V.27, N2. - P. 245-257. (in Russian) Лишманов Ю.Б., Маслов Л.Н., Нарыжная Н.В. и др.Эндогенная опиоидная система как звено срочной и долговременной адаптации организма к экстремальным воздействиям. Перспективы клинического применения опиоидных пептидов // Вестник РАМН. - 2012. - Т.67, №6. - С. 73-82. @@ Lishmanov Yu.B., Maslov L.N., Naryzhnaya N.V. i dr. Endogenous opioid system as a mediator of acute and long-term adaptation to stress. Prospects for clinical use of opioid peptides // Vestnik RAMN. Annals RAMS. - 2012. - V.67, N6. - P. 73-82. (in Russian) Ляшев А.Ю., Маль Г.С., Солин А.В. Изучение эффективности даларгина при экспериментальном язвенном колите // Экспериментальная и клиническая фармакология. - 2023. - Т.86, №9. - С.7-11. @@ Liashev A.Yu., Mal G.S., Solin A.V. Study of the effectiveness of dalargin in experimental ulcerative colitis // Eksperimental’naya i klinicheskaya farmakologiya. Experimental and clinical pharmacology. - 2023. - V.86, N9. - P. 7-11. (in Russian) Ляшев А.Ю., Маль Г.С. Влияние аналога лей-энкефалина на содержание про- и противовоспалительных цитокинов в стенке толстого кишечника при экспериментальном язвенном колите // Иммунология. - 2024. - Т.45, №1. - С. 50-57. @@ Liashev A.Yu., Mal G.S. Effect of leu-enkephalin analogue on the content of pro- and anti-inflammatory cytokines in the colonic wall in experimental ulcerative colitis // Immunologiya. Immunology. - 2024. - V.45, N1. - P. 50-57. (in Russian) Мотов В.С., Быкова А.В., Быков В.В., Хазанов В.А., Венгеровский А.Ш. Протективное действие производного аминогуанидина на модели язвенного колита у крыс // Экспериментальная и клиническая фармакология. - 2021. - Т.84, №5. - С. 6-10. @@ Motov V.S., Bykova A.V., Bykov V.V. Khazanov V.A., Vengerovskii A.I. Protective activity of aminoguanidine derivate on the model of ulcerative colitis in rats // Eksperimental’naya i klinicheskaya farmakologiya. Experimental and Clinical Pharmacology. - 2021. - V.84, N5. - P. 6-10. (in Russian) Хавкин А.И., Налетов А.В., Марченко Н.А. Воспалительные заболевания кишечника у детей: современные достижения в диагностике и терапии // Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. - 2023. - Т.33, №6. - С. 7-15. @@ Khavkin A.I., Nalyotov A.V., Marchenko N.A. Inflammatory Bowel Diseases in Children: Modern Achievements in Diagnostics and Therapy // Rossiyskii zhurnal gastroenterologii, gepatologii, koloproktologii.Russian Journal of Gastroenterology, Hepatology, Coloproctology. - 2023. - V.33, N6. - P. 7-15. (in Russian) Хомякова Т.И., Золотова Н.А., Хочанский Д.Н., Хомяков Ю.Н. Моделирование острого и хронического колита у мышей // Лечение и профилактика. - 2013. - Т.7, №3. - С. 148-159. @@ Khomyakova T.I., Zolotova N.A., Khochanskiy D.N., Khomyakov Yu.N. Modelling of acute and chronic colitis in mice // Lecheniye i Pprofilaktika. Therapy and Prophylaxis. - 2013. - Т.7, N3. - С. 148-159. (in Russian) Basso L., Gamier L., Bessac A., Boue J., Blanpied C., Cenac N., Laffont S., Dietrich G. T-lymphocyte-derived enkephalins reduce Th1/Th17 colitis and associated pain in mice // Journal of Gastroenterology. - 2018. - V.53, N2. - P. 215-226. Du L., Ha C. Epidemiology and Pathogenesis of Ulcerative Colitis // Gastroenterology Clinics of North America. - 2020. - V.49, N4. - P. 643-654. Graham D.B., Xavier R.J. Pathway paradigms revealed from the genetics of inflammatory bowel disease // Nature. - 2020. - V.578, N7796. - P. 527-539. Maronek M., Marafini I., Gardlik R., Link R., Troncone E., Monteleone G. Metalloproteinases in Inflammatory Bowel Disease // Journal of Inflammation Research. - 2021. - V.14. - P. 1029-1041. Mosińska P., Zielińska M., Fichna J. Expression and physiology of opioid receptors in the gastrointestinal tract // Current Opinion in Endocrinology, Diabetes and Obesity. - 2016. - V.23, N1. - P. 3-10. Muthas D., Reznichenko A., Balendran C.A., Böttcher G., Clausen I.G., Kärrman Mårdh K., Ottosson T., Uddin M., MacDonald T.T., Danese S., Hansen M.B. Neutrophils in Ulcerative Colitis: A review of selected biomarkers and their potential therapeutic implications // Scandinavian Journal of Gastroenterology. - 2017. - V.52, N2. - P. 125-135. Parigi T.L., Cannatelli R., Nardone O.N. et al. Neutrophil-only Histological Assessment of Ulcerative Colitis Correlates with Endoscopic Activity and Predicts Long-term Outcomes in a Multicentre Study // Journal of Crohns Colitis. - 2023. - V.17, N12. - P. 1931-1938. Shcheblykin D.V., Bolgov A.A., Pokrovskii M.V. et al. Endothelial dysfunction: developmental mechanisms and therapeutic strategies // Research Results in Pharmacology. - 2022. - V.8, N4. - P. 89-99. Tatiya-Aphiradee N., Chatuphonprasert W., Jarukamjorn K. Immune response and inflammatory pathway of ulcerative colitis // Journal of Basic and Clinical Physiology and Pharmacology. - 2018. - V.30, N1. - P. 1-10.
Дополнительные файлы


