Методы исследования антибактериальной активности и механизма противомикробного действия лекарственных молекул, инкапсулированных в системы доставки (обзор)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Разнообразие структуры и супрамолекулярной архитектуры существующих систем доставки антибактериальных препаратов создает проблему выбора методов исследованияin vitroсвойств лекарственных форм (ЛФ) и определения влияния носителя на противомикробные свойства препарата. В обзоре рассмотрены основные микробиологические методы исследования противомикробной активности, которые используются при исследовании ЛФ, дана оценка методов исследования в соответствии с типом и химической природой носителя препарата. Кроме того, обсуждены инструментальные методы и экспериментальные методики изучения механизма противомикробного действия ЛФ, а такжеin vitroэффекты, которые наиболее часто описываются в литературе при инкапсулировании препаратов. Обзор предоставляет исследователю стратегию анализа противомикробных свойств, разрабатываемых ЛФ на основании физико-химических свойств системы, что позволяет более комплексно оценить дальнейшие перспективы ЛФ.

Об авторах

А. А. Скуредина

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова, химический факультет

Email: anna.skuredina@yandex.ru
Москва, 119991 Россия

Н. Г. Белогурова

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова, химический факультет

Email: anna.skuredina@yandex.ru
Москва, 119991 Россия

Е. В. Кудряшова

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова, химический факультет

Автор, ответственный за переписку.
Email: anna.skuredina@yandex.ru
Москва, 119991 Россия

Список литературы

  1. Damian F.,Harati M.,Schwartzenhauer J.,Van Cauwenberghe O.,Wettig S.D. // Pharmaceutics.2021. V. 13. № 2. P. 214. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics13020214
  2. Pradal J. // J. Pain Res. 2020. V. 13. P. 2805–2814. https://doi.org/10.2147/JPR.S262390
  3. Veiga M.-D.,Ruiz-Caro R.,Martín-Illana A.,Notario-Pérez F.,Cazorla-Luna R. // Polymer Gels. 2018. P. 197–246. https://doi.org/10.1007/978-981-10-6083-0_8
  4. Adepu S.,Ramakrishna S. // Molecules. 2021. V. 26. № 19. P. 5905. https://doi.org/10.3390/molecules26195905
  5. Sultana A.,Zare M.,Thomas V.,Kumar T.S.S.,Ramakrishna S. // Med. Drug Discov. 2022. V. 15. P. 100134. https://doi.org/10.1016/j.medidd.2022.100134
  6. Shirley M. // Drugs. 2019. V. 79. № 5. P. 555–562. https://doi.org/10.1007/s40265-019-01095-z
  7. Adler-Moore J.,Proffitt R.T. // J. Antimicrob. Chemother. 2002. V. 49. P. 21–30. https://doi.org/10.1093/jac/49.suppl_1.21
  8. Liu P.,Chen G.,Zhang J. // Molecules. 2022. V. 27. № 4. P. 1372. https://doi.org/10.3390/molecules27041372
  9. Park H.,Otte A.,Park K. // J. Control. Release. 2022. V. 342. P. 53–65. https://doi.org/10.1016/j.jconrel.2021.12.030
  10. Gao W.,Chen Y.,Zhang Y.,Zhang Q.,Zhang L. // Adv. Drug Deliv. Rev. 2018. V. 127. P. 46–57. https://doi.org/10.1016/j.addr.2017.09.015
  11. Devnarain N.,Osman N.,Fasiku V.O.,Makhathini S.,Salih M.,Ibrahim U.H. et al. // Wiley Interdiscip Rev Nanomed Nanobiotechnol. 2021. V. 13. № 1. https://doi.org/10.1002/wnan.1664
  12. Zhang W.,Hu E.,Wang Y.,Miao S.,Liu Y.,Hu Y. et al. // Int. J. Nanomedicine. 2021. V. 16. P. 6141–6156. https://doi.org/10.2147/IJN.S311248
  13. Mohapatra A.,Harris M.A.,LeVine D.,Ghimire M.,Jennings J.A.,Morshed B.I. et al. // J. Biomed. Mater. Res. Part B Appl. Biomater. 2018. V. 106. № 6. P. 2169–2176. https://doi.org/10.1002/jbm.b.34015
  14. Eskitoros-Togay Ş.M.,Bulbul Y.E.,Tort S.,Demirtaş Korkmaz F.,Acartürk F.,Dilsiz N. // Int. J. Pharm. 2019. V. 565. P. 83–94. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2019.04.073
  15. Güncüm E.,Bakırel T.,Anlaş C.,Ekici H.,Işıklan N. // J. Vet. Pharmacol. Ther. 2018. V. 41. № 4. P. 588–598. https://doi.org/10.1111/jvp.12505
  16. Que Y.,Yang Y.,Zafar H.,Wang D. // Front. Pharmacol. 2022. V. 13. https://doi.org/10.3389/fphar.2022.993095
  17. Abou Assi R.,M. Abdulbaqi I.,Seok Ming T.,Siok Yee C.,A. Wahab H.,Asif S.M. et al. // Pharmaceutics. 2020. V. 12. № 11. P. 1052. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics12111052
  18. Методические Указания. 2004. № ББК 52.64. 1–91 p.
  19. Balouiri M.,Sadiki M.,Ibnsouda S.K. // J. Pharm. Anal. Elsevier, 2016. V. 6. № 2. P. 71–79. https://doi.org/10.1016/j.jpha.2015.11.005
  20. Li J.,Rong K.,Zhao H.,Li F.,Lu Z.,Chen R. // J. Nanosci. Nanotechnol. 2013. V. 13. № 10. P. 6806–6813. https://doi.org/10.1166/jnn.2013.7781
  21. Guo L.,Gong S.,Wang Y.,Sun Q.,Duo K.,Fei P. // Foodborne Pathog. Dis. 2020. V. 17. № 6. P. 396–403. https://doi.org/10.1089/fpd.2019.2713
  22. Ando Y.,Miyamoto H.,Noda I.,Miyaji F.,Shimazaki T.,Yonekura Y. et al. // Biocontrol Sci. 2010. V. 15. № 1. P. 15–19. https://doi.org/10.4265/bio.15.15
  23. Mohammadi G.,Valizadeh H.,Barzegar-Jalali M.,Lotfipour F.,Adibkia K.,Milani M. et al. // Colloids Surfaces B Biointerfaces. Elsevier B.V., 2010. V. 80. № 1. P. 34–39. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2010.05.027
  24. Mostafa A.A.,Al-Askar A.A.,Almaary K.S.,Dawoud T.M.,Sholkamy E.N.,Bakri M.M. // Saudi J. Biol. Sci. 2018. V. 25. № 2. P. 361–366. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2017.02.004
  25. Liu X.,Cai J.,Chen H.,Zhong Q.,Hou Y.,Chen W. et al. // Microb. Pathog. 2020. V. 141. P. 103980. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2020.103980
  26. Dev A.,Mohan J.C.,Sreeja V.,Tamura H.,Patzke G.R.,Hussain F. et al. // Carbohydr. Polym. 2010. V. 79. № 4. P. 1073–1079. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2009.10.038
  27. Uyen Thanh N.,Abdul Hamid Z.,Thi L.,Ahmad N. // J. Drug Deliv. Sci. Technol. 2020. V. 58. P. 101796. https://doi.org/10.1016/j.jddst.2020.101796
  28. Chao Y.,Zhang T. // Langmuir. 2011. V. 27. № 18. P. 11545–11553. https://doi.org/10.1021/la202534p
  29. Naveed M.,Tianying H.,Wang F.,Yin X.,Chan M.W.H.,Ullah A. et al. // Curr. Res. Biotechnol. 2022. V. 4. P. 290–301. https://doi.org/10.1016/j.crbiot.2022.06.002
  30. Skuredina A.A.,Tychinina A.S.,Le-Deygen I.M.,Golyshev S.A.,Kopnova T.Y.,Le N.T. et al. // Polymers. 2022. V. 14. P. 4476. https://doi.org/10.3390/ polym14214476
  31. Kavanagh A.,Ramu S.,Gong Y.,Cooper M.A.,Blaskovich M.A.T. // Antimicrob. Agents Chemother. 2019. V. 63. № 1. https://doi.org/10.1128/AAC.01760-18
  32. Bock L.J.,Hind C.K.,Sutton J.M.,Wand M.E. // Lett. Appl. Microbiol. 2018. V. 66. № 5. P. 368–377. https://doi.org/10.1111/lam.12863
  33. Lahuerta Zamora L.,Pérez-Gracia M.T. // J.R. Soc. Interface. 2012. V. 9. № 73. P. 1892–1897. https://doi.org/10.1098/rsif.2011.0809
  34. Schug A.R.,Bartel A.,Scholtzek A.D.,Meurer M.,Brombach J.,Hensel V. et al. // Vet. Microbiol. 2020. V. 248. P. 108791. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2020.108791
  35. Pinna A.,Donadu M.G.,Usai D.,Dore S.,Boscia F.,Zanetti S. // Cornea. 2020. V. 39. № 11. P. 1415–1418. https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000002375
  36. Lozano G.E.,Beatriz S.R.,Cervantes F.M.,María G.N.P.,Francisco J.M.C. // African J. Microbiol. Res. 2018. V. 12. № 31. P. 736–740. https://doi.org/10.5897/AJMR2018.8893
  37. Rodríguez-López M.I.,Mercader-Ros M.T.,Pellicer J.A.,Gómez-López V.M.,Martínez-Romero D.,Núñez-Delicado E. et al. // Food Control. 2020. V. 108. P. 106814. https://doi.org/10.1016/j.foodcont.2019.106814
  38. Darbasizadeh B.,Fatahi Y.,Feyzi-barnaji B.,Arabi M.,Motasadizadeh H.,Farhadnejad H. et al. // Int. J. Biol. Macromol. 2019. V. 141. P. 1137–1146. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2019.09.060
  39. Kamimura J.A.,Santos E.H.,Hill L.E.,Gomes C.L. // LWT — Food Sci. Technol. 2014. V. 57. № 2. P. 701–709. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2014.02.014
  40. Natsaridis E.,Gkartziou F.,Mourtas S.,Stuart M.C.A.,Kolonitsiou F.,Klepetsanis P. et al. // Pharmaceutics. 2022. V. 14. № 2. P. 370. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics14020370
  41. García-González C.A.,Barros J.,Rey-Rico A.,Redondo P.,Gómez-Amoza J.L.,Concheiro A. et al. // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2018. V. 10. № 4. P. 3349–3360. https://doi.org/10.1021/acsami.7b17375
  42. Kucukoglu V.,Uzuner H.,Kenar H.,Karadenizli A. // Int. J. Pharm. 2019. V. 569. P. 118578. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2019.118578
  43. Aytac Z.,Yildiz Z.I.,Kayaci-Senirmak F.,Tekinay T.,Uyar T. // Food Chem. 2017. V. 231. P. 192–201. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2017.03.113
  44. Jug M.,Kosalec I.,Maestrelli F.,Mura P. // J. Pharm. Biomed. Anal. 2011. V. 54. № 5. P. 1030–1039. https://doi.org/10.1016/j.jpba.2010.12.009
  45. Bhuyan S.,Yadav M.,Giri S.J.,Begum S.,Das S.,Phukan A. et al. // J. Microbiol. Methods. 2023. V. 207. P. 106707. https://doi.org/10.1016/j.mimet.2023.106707
  46. Thomas P.,Sekhar A.C.,Upreti R.,Mujawar M.M.,Pasha S.S. // Biotechnol. Reports. 2015. V. 8. P. 45–55. https://doi.org/10.1016/j.btre.2015.08.003
  47. Boukouvalas D.T.,Belan P.,Leal C.R.L.,Prates R.A.,de Araújo S.A.2019. P. 410–418. https://doi.org/10.1007/978-3-030-13469-3_48
  48. Chen C.,Qu F.,Wang J.,Xia X.,Wang J.,Chen Z. et al. // J. Therm. Anal. Calorim. 2016. V. 123. № 2. P. 1583–1590. https://doi.org/10.1007/s10973-015-4999-9
  49. EUCAST Definitive Document E.DEF 3.1, June 2000: Determination of Minimum Inhibitory Concentrations (MICs) of Antibacterial Agents by Agar Dilution. // Clinical Microbiology and Infection. 2000. V. 6. № 9. P. 509–515. https://doi.org/10.1046/j.1469-0691.2000.00142.x
  50. Mączyńska B.,Paleczny J.,Oleksy-Wawrzyniak M.,Choroszy-Król I.,Bartoszewicz M. // Pathogens. 2021. V. 10. № 5. P. 512. https://doi.org/10.3390/pathogens10050512
  51. Huang D.,Zuo Y.,Zou Q.,Zhang L.,Li J.,Cheng L. et al. // J. Biomater. Sci. Polym. Ed. 2011. V. 22. № 7. P. 931–944. https://doi.org/10.1163/092050610X496576
  52. Taha M.,Chai F.,Blanchemain N.,Neut C.,Goube M.,Maton M. et al. // Int. J. Pharm. 2014. V. 477. № 1–2. P. 380–389. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2014.10.026
  53. Orszulik S.T. // Expert Rev. Mol. Diagn. 2020. V. 20. № 3. P. 277–283. https://doi.org/10.1080/14737159.2020.1719070
  54. Orszulik S.T. // J. Microbiol. Methods. 2022. V. 200. P. 106538. https://doi.org/10.1016/j.mimet.2022.106538
  55. The European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing (EUCAST). Routine and Extended Internal Quality Control for MIC Determination and Disk Diffusion as Recommended by EUCAST. Version 9.0. 2019. http://www.eucast.org
  56. Missoun F.,Ríos A.P. de los,Ortiz-Martínez V.,Salar-García M.J.,Hernández-Fernández J.,Hernández-Fernández F.J. // Processes. 2020. V. 8. № 9. https://doi.org/10.3390/PR8091163
  57. Li Y.,Zhou J.,Gu J.,Shao Q.,Chen Y. // Colloids Surfaces B Biointerfaces. 2022. V. 215. P. 112514. https://doi.org/10.1016/j.colsurfb.2022.112514
  58. Skuredina A.,Le-Deygen I.,Belogurova N.,Kudryashova E. // Carbohydr. Res. 2020. P. 108183. https://doi.org/10.1016/j.carres.2020.108183
  59. Azhdarzadeh M.,Lotfipour F.,Zakeri-Milani P.,Mohammadi G.,Valizadeh H. // Adv. Pharm. Bull. 2012. V. 2. № 1. P. 17–24. https://doi.org/10.5681/apb.2012.003
  60. Almekhlafi S.,Thabit A.A.M. // J. Chem. Pharm. Res. 2014. V. 6. № 3. P. 1242–1248.
  61. Valizadeh H.,Mohammadi G.,Ehyaei R.,Milani M.,Azhdarzadeh M.,Zakeri-Milani P. et al. // Pharmazie. 2012. V. 67. № 1. P. 63–68. https://doi.org/10.1691/ph.2012.1052
  62. Jabir M.S.,Taha A.A.,Sahib U.I. // Artif. Cells, Nanomedicine, Biotechnol. 2018. V. 46. P. 345–355. https://doi.org/10.1080/21691401.2018.1457535
  63. Furneri P.M.,Fresta M.,Puglisi G.,Tempera G. // Antimicrob. Agents Chemother. 2000. V. 44. № 9. P. 2458–2464. https://doi.org/10.1128/AAC.44.9.2458-2464.2000
  64. Le-Deygen I.M.,Mamaeva P.V.,Skuredina A.A.,Safronova A.S.,Belogurova N.G.,Kudryashova E.V. // J. Funct. Biomater. 2023. V. 14. № 7. P. 381. https://doi.org/10.3390/jfb14070381
  65. Klančnik A.,Piskernik S.,Jeršek B.,Možina S.S. // J. Microbiol. Methods. 2010. V. 81. № 2. P. 121–126. https://doi.org/10.1016/j.mimet.2010.02.004
  66. Arasoglu T.,Derman S.,Mansuroglu B.,Yelkenci G.,Kocyigit B.,Gumus B. et al. // J. Appl. Microbiol. 2017. V. 123. № 6. P. 1407–1419. https://doi.org/10.1111/jam.13601
  67. Hoang Thi T.H.,Chai F.,Leprêtre S.,Blanchemain N.,Martel B.,Siepmann F. et al. // Int. J. Pharm. 2010. V. 400. № 1–2. P. 74–85. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2010.08.035
  68. Houdkova M.,Rondevaldova J.,Doskocil I.,Kokoska L. // Fitoterapia. 2017. V. 118. P. 56–62. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2017.02.008
  69. Liang H.,Yuan Q.,Vriesekoop F.,Lv F. // Food Chem. 2012. V. 135. № 3. P. 1020–1027. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2012.05.054
  70. Skuredina A.A.,Yakupova L.R.,Le-Deygen I.M.,Kudryashova E.V. // Lomonosov Chem. J. 2023. V. 64. № №5, 2023. P. 441–459. https://doi.org/10.55959/MSU0579-9384-2-2023-64-5-441-459
  71. Harish Prashanth K.V.,Tharanathan R.N. // Trends Food Sci. Technol. 2007. V. 18. № 3. P. 117–131. https://doi.org/10.1016/j.tifs.2006.10.022
  72. Chen C.Z.,Cooper S.L. // Biomaterials. 2002. V. 23. № 16. P. 3359–3368. https://doi.org/10.1016/S0142-9612(02)00036-4
  73. He M.,Wu T.,Pan S.,Xu X. // Appl. Surf. Sci. 2014. V. 305. P. 515–521. https://doi.org/10.1016/j.apsusc.2014.03.125
  74. Kochan K.,Perez-Guaita D.,Pissang J.,Jiang J.H.,Peleg A.Y.,McNaughton D. et al. // J.R. Soc. Interface. 2018. V. 15. № 140. https://doi.org/10.1098/rsif.2018.0115
  75. Wongthong S.,Tippayawat P.,Wongwattanakul M.,Poung-ngern P.,Wonglakorn L.,Chanawong A. et al. // World J. Microbiol. Biotechnol. 2020. V. 36. № 2. P. 22. https://doi.org/10.1007/s11274-019-2788-5
  76. Yakupova L.R.,Skuredina A.A.,Kopnova T.Y.,Kudryashova E.V. // Polysaccharides. 2023. V. 4. № 4. P. 343–357. https://doi.org/10.3390/polysaccharides4040020
  77. Dillen K.,Bridts C.,Van der Veken P.,Cos P.,Vandervoort J.,Augustyns K. et al. // Int. J. Pharm. 2008. V. 349. № 1–2. P. 234–240. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2007.07.041
  78. Skuredina A.A.,Tychinina A.S.,Le-Deygen I.M.,Golyshev S.A.,Belogurova N.G.,Kudryashova E.V. // React. Funct. Polym. 2021. V. 159. № 498. P. 104811. https://doi.org/10.1016/j.reactfunctpolym.2021. 104811
  79. Camacho-Cruz L.A.,Velazco-Medel M.A.,Cruz-Gómez A.,Bucio E. // Advanced Antimicrobial Materials and Applications. 2021. P. 1–42. https://doi.org/10.1007/978-981-15-7098-8_1
  80. Vaara M. // Microbiol. Rev. 1992. V. 56. № 3. P. 395–411.
  81. Rybal’chenko O.V. // Microbiology. 2006. V. 75. № 4. P. 476–480. https://doi.org/10.1134/S0026261706040187
  82. Ulvatne H.,Haukland H..,Olsvik Ø.,Vorland L. // FEBS Lett. 2001. V. 492. № 1–2. P. 62–65. https://doi.org/10.1016/S0014-5793(01)02233-5
  83. Geilich B.M.,van de Ven A.L.,Singleton G.L.,Sepúlveda L.J.,Sridhar S.,Webster T.J. // Nanoscale. 2015. V. 7. № 8. P. 3511–3519. https://doi.org/10.1039/C4NR05823B
  84. Skuredina A.A.,Kopnova T.Y.,Tychinina A.S.,Golyshev S.A.,Le-deygen I.M.,Belogurova N.G. et al. // Molecules. 2022. V. 27. P. 8026. https://doi.org/10.3390/molecules27228026
  85. Nicolosi D.,Scalia M.,Nicolosi V.M.,Pignatello R. // Int. J. Antimicrob. Agents. 2010. V. 35. № 6. P. 553–558. https://doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2010.01.015
  86. Song J.,Han B.,Song H.,Yang J.,Zhang L.,Ning P. et al. // J. Environ. Radioact. 2019. V. 208–209. P. 106027. https://doi.org/10.1016/j.jenvrad.2019.106027
  87. Kumar Tyagi A.,Bukvicki D.,Gottardi D.,Veljic M.,Guerzoni M.E.,Malik A. et al. // Evidence-Based Complement. Altern. Med. 2013. V. 2013. P. 1–7. https://doi.org/10.1155/2013/382927
  88. Jaiswal S.,Mishra P. // Med. Microbiol. Immunol. 2018. V. 207. № 1. P. 39–53. https://doi.org/10.1007/s00430-017-0525-y
  89. Fahimmunisha B.A.,Ishwarya R.,AlSalhi M.S.,Devanesan S.,Govindarajan M.,Vaseeharan B. // J. Drug Deliv. Sci. Technol. Elsevier, 2020. V. 55. № November 2019. P. 101465. https://doi.org/10.1016/j.jddst.2019.101465
  90. Ishwarya R.,Vaseeharan B.,Subbaiah S.,Nazar A.K.,Govindarajan M.,Alharbi N.S. et al. // J. Photochem. Photobiol. B Biol. 2018. V. 183. P. 318–330. https://doi.org/10.1016/j.jphotobiol.2018.04.049
  91. Dufrêne Y.F.,Viljoen A.,Mignolet J.,Mathelié-Guinlet M. // Cell. Microbiol. 2021. V. 23. № 7. https://doi.org/10.1111/cmi.13324
  92. Zamani E.,Johnson T.J.,Chatterjee S.,Immethun C.,Sarella A.,Saha R. et al. // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2020. V. 12. № 44. P. 49346–49361. https://doi.org/10.1021/acsami.0c12038
  93. Guo R.,Li K.,Qin J.,Niu S.,Hong W. // Nanoscale. 2020. V. 12. № 20. P. 11251–11266. https://doi.org/10.1039/D0NR01366H
  94. Kochan K.,Peleg A.Y.,Heraud P.,Wood B.R. // J. Vis. Exp. 2020. № 163. https://doi.org/10.3791/61728
  95. Duverger W.,Tsaka G.,Khodaparast L.,Khodaparast L.,Louros N.,Rousseau F. et al. // J. Nanobiotechnology. 2024. V. 22. № 1. P. 406. https://doi.org/10.1186/s12951-024-02674-3
  96. Gollwitzer H.,Ibrahim K.,Meyer H.,Mittelmeier W.,Busch R.,Stemberger A. // J. Antimicrob. Chemother. 2003. V. 51. № 3. P. 585–591. https://doi.org/10.1093/jac/dkg105
  97. Jeong Y. Il,Na H.S.,Seo D.H.,Kim D.G.,Lee H.C.,Jang M.K. et al. // Int. J. Pharm. 2008. V. 352. № 1–2. P. 317–323. https://doi.org/10.1016/j.ijpharm.2007.11.001
  98. Baghdan E.,Raschpichler M.,Lutfi W.,Pinnapireddy S.R.,Pourasghar M.,Schäfer J. et al. // Eur. J. Pharm. Biopharm. 2019. V. 139. P. 59–67. https://doi.org/10.1016/j.ejpb.2019.03.003
  99. Скуредина А.А.,Ле-Дейген И.М.,Кудряшова Е.В. // Коллоидный журнал. 2018. V. 80. № 3. P. 330–337. https://doi.org/10.7868/s0023291218030102
  100. Mousavian D.,Mohammadi Nafchi A.,Nouri L.,Abedinia A. // J. Food Meas. Charact. 2021. V. 15. № 1. P. 883–891. https://doi.org/10.1007/s11694-020-00690-z
  101. Wang H.,Hao L.,Wang P.,Chen M.,Jiang S.,Jiang S. // Food Hydrocoll. 2017. V. 63. P. 437–446. https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2016.09.028
  102. Banoee M.,Seif S.,Nazari Z.E.,Jafari-Fesharaki P.,Shahverdi H.R.,Moballegh A. et al. // J. Biomed. Mater. Res. Part B Appl. Biomater. 2010. V. 93B. № 2. P. 557–561. https://doi.org/10.1002/jbm.b.31615
  103. Chotitumnavee J.,Parakaw T.,Srisatjaluk R.L.,Pruksaniyom C.,Pisitpipattana S.,Thanathipanont C. et al. // J. Dent. Sci. 2019. V. 14. № 1. P. 7–14. https://doi.org/10.1016/j.jds.2018.08.010
  104. Queiroz V.M.,Kling I.C.S.,Eltom A.E.,Archanjo B.S.,Prado M.,Simão R.A. // Mater. Sci. Eng. Elsevier B.V. 2020. V. 112. P. 110852. https://doi.org/10.1016/j.msec.2020.110852

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».