Особенности микроокружения онкоурологических опухолей
- Авторы: Молчанов О.Е.1, Майстренко Д.Н.1, Гранов Д.А.1, Лисицын И.Ю.1, Романов А.А.1,2
-
Учреждения:
- Российский научный центр радиологии и хирургических технологий им. акад. А.М. Гранова
- Сортавальская центральная районная больница
- Выпуск: Том 12, № 4 (2022)
- Страницы: 313-331
- Раздел: Обзоры литературы
- URL: https://ogarev-online.ru/uroved/article/view/134234
- DOI: https://doi.org/10.17816/uroved112576
- ID: 134234
Цитировать
Аннотация
Взаимодействие опухолевых клеток, особенно если они представляют собой стволовые или покоящиеся, с миелоидными и лимфоидными компонентами, а также продуцентами экстрацеллюлярного матрикса, приводит к формированию патологического микроокружения, обусловливающего резистентность ко многим вариантам системного лечения. Цель работы — представить современные литературные и собственные данные, касающиеся особенностей состава и структуры микроокружения при опухолях почки, предстательной железы и мочевого пузыря.
В статье представлены данные о составе и взаимодействии различных субпопуляций клеток в микроокружении опухоли, а также о роли стволовых опухолевых клеток в его формировании. Описаны дефекты сигнальных путей и потенциальные мишени для создания препаратов, направленных на стволовые опухолевые клетки, а также механизм взаимодействия опухоли и иммунной системы в процессе канцерогенеза. Подробно разобраны подходы к оценке типа микроокружения с целью индивидуализации лечения. Приведены собственные данные о характере распределения субпопуляций лимфоцитов и супрессорных клеток миелоидного происхождения у больных с метастатическими формами опухолей мочеполового тракта. Обозначены варианты использования данных о структуре микроокружения с целью оптимизации лечебной тактики у онкологических больных.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Олег Евгеньевич Молчанов
Российский научный центр радиологии и хирургических технологий им. акад. А.М. Гранова
Автор, ответственный за переписку.
Email: molchanovo@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3882-1720
SPIN-код: 5557-6468
Scopus Author ID: 25637650600
ResearcherId: AAX-2364-2020
д-р мед. наук, руководитель отдела фундаментальных исследований
Россия, Санкт-ПетербургДмитрий Николаевич Майстренко
Российский научный центр радиологии и хирургических технологий им. акад. А.М. Гранова
Email: may64@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8174-7461
SPIN-код: 7363-4840
Scopus Author ID: 57193120885
ResearcherId: AAA-9446-2020
д-р мед. наук, директор
Россия, Санкт-ПетербургДмитрий Анатольевич Гранов
Российский научный центр радиологии и хирургических технологий им. акад. А.М. Гранова
Email: da_granov@rrcrst.ru
ORCID iD: 0000-0002-8746-8452
SPIN-код: 5256-2744
д-р мед. наук, профессор, академик РАН, научный руководитель
Россия, Санкт-ПетербургИгорь Юрьевич Лисицын
Российский научный центр радиологии и хирургических технологий им. акад. А.М. Гранова
Email: urologlis@mail.ru
канд. мед. наук, врач-уролог, руководитель амбулаторно-консультативным центром
Россия, Санкт-ПетербургАлександр Анатольевич Романов
Российский научный центр радиологии и хирургических технологий им. акад. А.М. Гранова; Сортавальская центральная районная больница
Email: tiffozi@mail.ru
научн. сотр.; главный врач
Россия, Санкт-Петербург; Сортавала Республика, КарелияСписок литературы
- Sung H., Ferlay J., Siegel R.L., et al. Global cancer statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries // CA: A Cancer J Clin. 2021. Vol. 71, No. 3. P. 209–249. doi: 10.3322/caac.21660
- Состояние онкологической помощи населению России в 2019 году / под ред. А.Д. Каприна, В.В. Старинского, А.О. Шахзадовой. Москва: МНИОИ им. П.А. Герцена — филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России, 2020. 239 с.
- Hanahan D., Coussens L.M. Accessories to the crime: functions of cells recruited to the tumor microenvironment // Cancer Cell. 2012. Vol. 21, No. 3. P. 309–322. doi: 10.1016/j.ccr.2012.02.022
- Yang L., Lin P.S. Mechanisms that drive inflammatory tumor microenvironment, tumor heterogeneity, and metastatic progression // Semin Cancer Biol. 2017. Vol. 47. P. 185–195. doi: 10.1016/j.semcancer.2017.08.001
- Dunn G.P., Old L.J., Schreiber R.D. The three Es of cancer immunoediting // Annu Rev Immunol. 2004. Vol. 22, No. 1. P. 329–360. doi: 10.1146/annurev.immunol.22.012703.104803
- Deshmukh A., Deshpande K., Arfuso F., et al. Cancer stem cell metabolism: a potential target for cancer therapy // Mol Cancer. 2016. Vol. 15, No. 1. ID 69. doi: 10.1186/s12943-016-0555-x
- Buoncervello M., Gabriele L., Toschi E. The Janus face of tumor microenvironment targeted by immunotherapy // Int J Mol Sci. 2019. Vol. 20, No. 17. ID 4320. doi: 10.3390/ijms20174320
- Jarosz-Biej M., Smolarczyk R., Cihon T., Kulach N. Tumor microenvironment as a “Game Changer” in cancer radiotherapy // Int J Mol Sci. 2019. Vol. 20, No. 13. ID 3212. doi: 10.3390/ijms20133212
- Giusturini G., Pavesi A., Adriani G. Nanoparticle-based therapies for turning cold tumors hot: how to treat an immunosuppressive tumor microenvironement // Front Bioeng Biotechnol. 2021. Vol. 9. ID 689245 doi: 10.3389/fbioe.2021.689245
- Mier J.W. The tumor microenvironement in renal cell cancer // Curr Opin Oncol. 2019. Vol. 31, No. 3. P. 194–199. doi: 10.1097/cco.0000000000000512
- Movassaghi M., Chung R., Anderson C.B., et al. Overcoming immune resistance in prostate cancer: challenges and advances // Cancers. 2021. Vol. 13, No. 19. ID 4757. doi: 10.3390/cancers13194757
- Vitkin N., Nersesian S., Siemens D.R., Koti M. The tumor immune contexture of prostate cancer // Front Immunol. 2019. Vol. 10. ID 603. doi: 10.3389/fimmu.2019.00603
- Annels N.E., Simpson G.R., Pandha H. Modifying the non-muscle invasive bladder cancer immune microenvironment for optimal therapeutic response // Front Oncol. 2020. Vol. 10. ID 175. doi: 10.3389/fonc.2020.00175
- Joseph M., Enting D. Immune responses in bladder cancer — role of immune cell populations, prognostic factors and therapeutic implications // Front Oncol. 2019. Vol. 9. ID 1270. doi: 10.3389/fonc.2019.01270
- Talukdar S., Bhoopathi P., Emdad L., et al. Dormancy and cancer stem cells: an enigma for cancer therapeutic targeting // Adv Cancer Res. 2019. Vol. 141. P. 43–84. doi: 10.1016/bs.acr.2018.12.002
- Katoh M., Katoh M. Precision medicine for human cancers with Notch signaling dysregulation (Review) // Int J Mol Med. 2020. Vol. 45, No. 2. P. 279–297. doi: 10.3892/ijmm.2019.4418
- Zhang Y., Wang X. Targeting the Wnt/β-catenin signaling pathway in cancer // J Hematol Oncol. 2020. Vol. 13, No. 1. ID 165. doi: 10.1186/s13045-020-00990-3
- Garbalo G.B., Honorato J.R., de Lopes G.P., de Sampaio e Spohr T.C.L. A highlight on Sonic hedgehog pathway // Cell Commun Signal. 2018. Vol. 16. ID 11. doi: 10.1186/s12964-018-0220-7
- Battle E., Massaque J. Transforming grown factor-β signaling in immunity and cancer // Immunity. 2019. Vol. 50, No. 4. P. 924–940. doi: 10.1016/j.immuni.2019.03.024
- Owen K.L., Brockwel N.K., Parker B.S. JAK-STAT Signaling: a double-edged sword of immune regulation and cancer progression // Cancers. 2019. Vol. 11, No. 12. ID 2002. doi: 10.3390/cancers11122002
- Yang L., Zhang Y. Tumor-associated macrophages: from basic research to clinical application // J Hematol Oncol. 2017. Vol. 10, No. 1. ID 58. doi: 10.1186/s13045-017-0430-2
- Conejo-Garcia J.R., Rutkowski M.R., Cubillos-Ruiz J.R. State-of-the-art of regulatory dendritic cells in cancer // Pharmacol Ther. 2016. Vol. 164. P. 97–104. doi: 10.1016/j.pharmthera.2016.04.003
- Collin M., Bigley V. Human dendritic cell subsets: an apdate // Immunology. 2013. Vol. 154, No. 1. P. 3–20. doi: 10.1111/imm.12888
- Fridlender Z.G., Sun G., Kim S., et al. Polarization of tumor-associated neutrophil phenotype by TGF-beta: “N1” versus “N2” TAN // Cancer Cell. 2009. Vol. 16, No. 3. P. 183–194. doi: 10.1016/j.ccr.2009.06.017
- Stabile H., Fionda C., Gismondi A., Santoni A. Role of distinct natural killer cell subsets in anticancer response // Front Immunol. 2017. Vol. 8. ID 293. doi: 10.3389/fimmu.2017.00293
- Cicco P.D., Ercolano G., Lanaro A. The new era of cancer immunotherapy: targeting myeloid-derived suppressor cells to overcome immune evasion // Front Immunol. 2020. Vol. 11. ID 1680. doi: 10.3389/fimmu.2020.01680
- Ducimetiere L., Vermeer M., Tugues S. The interplay between innate lymphoid cells and the tumor microenvironment // Front Immunol. 2019. Vol. 10. ID 2895. doi: 10.3389/fimmu.2019.02895
- Hung C.-H., Chen F.-M., Lin Y.-C., et al. Altered monocyte differentiation and macrophage polarization patterns in patients with breast cancer // BMC Cancer. 2018. Vol. 18, No. 1. ID 366. doi: 10.1186/s12885-018-4284-y
- Locati M., Curtale G., Mantovani A. Diversity, mechanisms and significance of macrophage plasticity // Annu Rev Pathol: Mechanisms of Disease. 2020. Vol. 15. P. 123–147. doi: 10.1146/annurev-pathmechdis-012418-012718
- Wculek S.K., Cueto F.J., Mujal A.M., et al. Dendritic cells in cancer immunology and immunotherapy // Nat Rev Immunol. 2019. Vol. 20, No. 1. P. 7–24. doi: 10.1038/s41577-019-0210-z
- Sakaguchi S., Sakaguchi N., Asano M., et al. Immunologic self-tolerance maintained by activated T cells expressing IL-2 receptor alpha-chains (CD25). Breakdown of a single mechanism of self-tolerance causes various autoimmune diseases // J Immunol. 1995. Vol. 155. No. 3: P. 1151–1164. doi: 10.4049/jimmunol.155.3.1151
- Chiossone L., Dumas P.Y., Vienne M., Vivier E. Natural killer cells and other innate lymphoid cells in cancer // Nat Rev Immunol. 2018. Vol. 18, No. 11. P. 671–688. doi: 10.1038/s41577-018-0061-z
- Ostroumov D., Fekete-Drimusz N., Saborowski M., et al. CD4 and CD8 T lymphocyte interplay in controlling tumor growth // Cell Mol Life Sci. 2018. Vol. 75, No. 4. P. 689–713. doi: 10.1007/s00018-017-2686-7
- Ye J., Su X., Hsueh E.C., et al. Human tumor-infiltrating Th17 cells have the capacity to differentiate into IFN-γ+ and FOXP3+ T cells with potent suppressive function // Eur J Immunol. 2011. Vol. 41, No. 4. P. 936–951. doi: 10.1002/eji.201040682
- Kuen D.S., Kim B.S., Chung Y. IL-17 — producing cells in tumor immunity: friends or foes? // Immune Network. 2020. Vol. 20, No. 1. ID e6. doi: 10.4110/in.2020.20.e6
- Wu Z., Zheng Y., Han Y., et al. CD3+CD4+CD8– (double-negative) T cells in inflammation, immune disorders and cancer // Front Immunol. 2022. Vol. 13. ID 816005. doi: 10.3389/fimmu.2022.816005
- Catakovic K., Klieser E., Neureiter D., Geisberger R. T cell exhaustion: from pathophysiological basics to tumor immunotherapy // Cell Commun Signal. 2017. Vol. 15. ID 1. doi: 10.1186/s12964-016-0160-z
- Michaud D., Steward C.R., Mirlekar B., Pylayeva-Gupta Y. Regulatory B cells in cancer // Immunol Rev. 2020. Vol. 299, No. 1. P. 74–92. doi: 10.1111/imr.12939
- Bruchard M., Ghiringhelli F. Deciphering the roles of innate lymphoid cells in cancer // Front Immunol. 2019. Vol. 10. ID 656. doi: 10.3389/fimmu.2019.00656
- DeBerardinis R.J. Tumor microenvironment, metabolism, and immunotherapy // N Eng J Med. 2020. Vol. 382, No. 9. P. 869–871. doi: 10.1056/nejmcibr1914890
- Lin L., Hu X., Zhang H., Hu H. Tertiary lymphoid organs in cancer immunology: mechanisms and the new strategies for immunotherapy // Front Immunol. 2019. Vol. 10. ID 1398. doi: 10.3389/fimmu.2019.01398
- Yu X., Zhang Z., Wang Z., et al. Prognostic and predictive value of tumor-infiltrating lymphocytes in breast cancer: a systematic review and meta-analysis // Clin Transl Oncol. 2016. Vol. 18, No. 5. P. 497–506. doi: 10.1007/s12094-015-1391-y
- Galon J., Mlecnik B., Bindea G., et al. Towards the introduction of the “immunoscore” in the classification of malignant tumors // J Pathol. 2014. Vol. 232, No. 2. P. 199–209. doi: 10.1002/path.4287
- Galon J., Bruni D. Approaches to treat immune hot, altered and cold tumors with combination immunotherapies // Nat Rev Drug Discov. 2019. Vol. 18, No. 3. P. 197–218. doi: 10.1038/s41573-018-0007-y
- Vuong L., Kotecha R.R., Voss M.H., Hakimi A.A. Tumor microenvironment dynamics in clear cell renal cell carcinoma // Cancer Discov. 2019. Vol. 9. No. 10. P. 1349–1357. doi: 10.1158/2159-8290.cd-19-0499
- Lin E., Liu X., Liu Y., et al. Roles of the dynamic tumor immune microenvironment in the individualized treatment of advanced clear cell renal cell carcinoma // Front Immunol. 2021. Vol. 12. ID 653358. doi: 10.3389/fimmu.2021.653358
- Adekoya T.O., Richardson R.M. Cytokines and chemokines as mediators of prostate cancer metastasis // Int J Mol Sci. 2020. Vol. 21, No. 12. ID 4449. doi: 10.3390/ijms21124449
- Ge R., Wang Z., Cheng L. Tumor microenvironment heterogeneity an important mediator of prostate cancer progression and therapeutic resistance // Precis Oncol. 2022. Vol. 6. ID 31. doi: 10.1038/s41698-022-00272-w
- Song D., Powles T., Shi L., et al. Bladder cancer, a unique model to understand cancer immunity and develop immunotherapy approaches // J Pathol. 2019. Vol. 249, No. 2. P. 151–165. doi: 10.1002/path.5306
- van Dijk N., Gil-Jimenez A., Silina K., et al. The tumor immune landscape and architecture of tertiary lymphoid structures in urothelial cancer // Front Immunol. 2021. Vol. 12. ID 793964. doi: 10.3389/fimmu.2021.793964
- Jian Y., Yang K., Sun X., et al. Current advance of immune evasion mechanisms and emerging immunotherapies in renal cell carcinoma // Front Immunol. 2021. Vol. 12. ID 639636. doi: 10.3389/fimmu.2021.639636
- Mennito A., Huber V., Ratta R., et al. Angiogenesis and immunity in renal carcinoma: can we turn an unhappy relationship into a happy marriage? // J Clin Med. 2020. Vol. 9, No. 4. ID 930. doi: 10.3390/jcm9040930
- Shi J., Wang K., Xiong Z., et al. Impact of inflammation and immunotherapy in renal cell carcinoma (review) // Oncol Letters. 2020. Vol. 20, No. 5. P. 1. doi: 10.3892/ol.2020.12135
- Stultz J., Fong L. How to turn up the heat on the cold immune microenvironment of metastatic prostate cancer // Prostate Cancer Prostatic Diseas. 2021. Vol. 24, No. 3. P. 151–165. doi: 10.1038/s41391-021-00340-5
- Jansen C.S., Prokhnevska N., Kissick H.T. The requirement for immune infiltration and organization in the tumor microenvironment for successful immunotherapy in prostate cancer // Urol Oncol Semin Original Investig. 2019. Vol. 37, No. 8. P. 543–555. doi: 10.1016/j.urolonc.2018.10.011
- Matos A., Carvalho M., Bicho M., Ribeiro R. Arginine and arginases modulate metabolism, tumor microenvironment and prostate cancer progression // Nutrients. 2021. Vol. 13, No. 12. ID 4503. doi: 10.3390/nu13124503
- van Dijk N., Funt S.A., Blank C.U., et al. The cancer immunogram as a framework for personalized immunotherapy in urothelial cancer // Eur Urol. 2019. Vol. 7, No. 53. P. 435–444. doi: 10.1016/j.eururo.2018.09.022
- Nassif E.F., Thibault C., Oudard S., Galon G. Precision immunity: immunoscore and neoadjuvant treatment in bladder cancer // Oncoimmunology. 2021. Vol. 10, No. 1. ID 1888488. doi: 10.1080/2162402x.2021.1888488
- Bonaventura P., Shekarian T., Alkazer V., et al. Cold tumors: a therapeutic challenge for immunotherapy // Front Immunol. 2019. Vol. 10. ID 168. doi: 10.3389/fimmu.2019.00168
Дополнительные файлы
