Хирургическое лечение детей с обширными дефектами костной ткани (обзор литературы)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. Реконструкция обширных повреждений костной ткани является одной из актуальных проблем ортопедии и травматологии. Особенно остро стоит вопрос, связанный с восстановлением костной ткани в условиях ее дефицита у пациентов детского возраста.

Цель — проанализировать современные способы хирургического лечения детей с обширными повреждениями костной ткани на основе литературных данных.

Материалы и методы. В статье представлен обзор литературы, посвященный методам хирургического лечения обширных дефектов костной ткани. Поиск литературы осуществляли в базах данных PubMed, ScienceDirect, eLibrary, GoogleScholar за период с 2005 по 2020 г. по ключевым словам. Были выявлены 105 иностранных и 37 отечественных источников. После исключения проанализированы 56 статей, все представленные работы опубликованы в последние 15 лет.

Результаты. Золотым стандартом замещения костных дефектов по-прежнему остается использование аутотрансплантатов, в том числе с применением технологий на сосудистой ножке. Различные виды ксенотрансплантатов и аллотрансплантатов костной ткани все активнее вытесняются различного рода синтетическими имплантатами.

Заключение. На сегодняшний день не существует единого общепринятого стандарта хирургического лечения обширных дефектов костной ткани. Крайне интересным и перспективным представляется вариант хирургического лечения обширных дефектов костной ткани с использованием тканеинженерных костных имплантатов с осевым кровоснабжением.

Об авторах

Антон Сергеевич Шабунин

Национальный медицинский исследовательский центр детской травматологии и ортопедии имени Г.И. Турнера; Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого

Email: anton-shab@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-8883-0580
SPIN-код: 1260-5644
Scopus Author ID: 57191623923

научный сотрудник

Россия, 196603, Санкт-Петербург, Пушкин, ул. Парковая, д. 64–68; Санкт-Петербург

Марат Сергеевич Асадулаев

Национальный медицинский исследовательский центр детской травматологии и ортопедии имени Г.И. Турнера

Автор, ответственный за переписку.
Email: marat.asadulaev@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-1768-2402
SPIN-код: 3336-8996
Scopus Author ID: 0000-0002-1768-2402

аспирант

Россия, 196603, Санкт-Петербург, Пушкин, ул. Парковая, д. 64–68

Сергей Валентинович Виссарионов

Национальный медицинский исследовательский центр детской травматологии и ортопедии имени Г.И. Турнера

Email: vissarionovs@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-4235-5048
SPIN-код: 7125-4930
Scopus Author ID: 6504128319

д-р мед. наук, профессор, чл.-корр. РАН

Россия, 196603, Санкт-Петербург, Пушкин, ул. Парковая, д. 64–68

Андрей Михайлович Федюк

Национальный медицинский исследовательский центр детской травматологии и ортопедии имени Г.И. Турнера; Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет

Email: andrej.fedyuk@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-2378-2813
SPIN-код: 3477-0908

студент 5-го курса

Россия, 196603, Санкт-Петербург, Пушкин, ул. Парковая, д. 64–68; Санкт-Петербург

Тимофей Сергеевич Рыбинских

Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет

Email: timofey1999r@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4180-5353
SPIN-код: 7739-4321

студент 5-го курса

Россия, Санкт-Петербург

Александр Юрьевич Макаров

Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет

Email: makarov.alexandr97@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1546-8517
SPIN-код: 1039-1096

студент 5-го курса

Россия, Санкт-Петербург

Даниил Алексеевич Пушкарев

Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет

Email: dan2402@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1531-7310

студент 4-го курса

Россия, Санкт-Петербург

Марина Ваниковна Согоян

Национальный медицинский исследовательский центр детской травматологии и ортопедии имени Г.И. Турнера

Email: sogoyanmarina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5723-8851
SPIN-код: 2856-3854

научный сотрудник

Россия, 196603, Санкт-Петербург, Пушкин, ул. Парковая, д. 64–68

Екатерина Николаевна Маевская

Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого

Email: ma.eka@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-9316-7197
Scopus Author ID: 57203990196

аспирант

Россия, Санкт-Петербург

Наталья Борисовна Фомина

Национальный медицинский исследовательский центр детской травматологии и ортопедии имени Г.И. Турнера

Email: natal.fomi@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-6779-9740

научный сотрудник

Россия, 196603, Санкт-Петербург, Пушкин, ул. Парковая, д. 64–68

Список литературы

  1. Богосьян А.Б., Мусихина И.В., Тенилин Н.А., и др. Хирургическое лечение детей с патологией опорно-двигательного аппарата // Медицинский альманах. 2010. № 2. С. 201–204.
  2. Базаров Н.И., Нарзулоев В.А., Усмонов Х.С., Курбанов Д.М. Некоторые аспекты костной аутотрансплантации при костных новообразованиях и опухолеподобных процессах // Вестник Авиценны. 2009. № 4. doi: 10.25005/2074-0581-2009-11-4-34-40
  3. Roddy E., DeBaun M.R., Daoud-Gray A., et al. Treatment of critical-sized bone defects: clinical and tissue engineering perspectives // Eur. J. Orthop. Surg. Traumatol. 2018. Vol. 28. No. 3. P. 351–362. doi: 10.1007/s00590-017-2063-0
  4. Ананьева А.Ш., Бараева Л.М., Быков И.М., и др. Моделирование повреждений костных структур в экспериментах на животных // Инновационная медицина Кубани. 2021. № 1. С. 47–55. doi: 10.35401/2500-0268-2021-21-1-47-55
  5. Khalifeh J.M., Zohny Z., MacEwan M., et al. Electrical stimulation and bone healing: a review of current technology and clinical applications // IEEE Rev. Biomed. Eng. 2018. Vol. 11. P. 217–232. doi: 10.1109/RBME.2018.2799189
  6. Подгайский В.Н., Ладутько Д.Ю., Мечковский С.Ю., и др. Аутотрансплантация васкуляризованных костных лоскутов как метод лечения дефектов костей различной этиологии // Хирургия. Восточная Европа. 2012. № 2. С. 102–113.
  7. Khan S.N., Cammisa F.P. Jr, Sandhu H.S., et al. The biology of bone grafting // J. Am. Acad. Orthop. Surg. 2005. Vol. 13. No. 1. P. 77–86.
  8. Bracey D.N., Cignetti N.E., Jinnah A.H., et al. Bone xenotransplantation: A review of the history, orthopedic clinical literature, and a single-center case series // Xenotransplantation. 2020. Vol. 27. No. 5. P. e12600. doi: 10.1111/xen.12600
  9. Kubiak C.A., Etra J.W., Brandacher G., et al. Prosthetic rehabilitation and vascularized composite allotransplantation following upper limb loss // Plast. Reconstr. Surg. 2019. Vol. 143. No. 6. P. 1688–1701. doi: 10.1097/PRS.0000000000005638
  10. Виссарионов С.В., Асадулаев М.С., Шабунин А.С., и др. Экспериментальная оценка эффективности хитозановых матриц в условиях моделирования костного дефекта in vivo (предварительное сообщение) // Ортопедия, травматология и восстановительная хирургия детского возраста. 2020. Т. 8. № 1. C. 53–62. doi: 10.17816/PTORS16480
  11. Frosch K.H., Drengk A., Krause P., et al. Stem cell-coated titanium implants for the partial joint resurfacing of the knee // Biomaterials. 2006. Vol. 27. No. 12. P. 2542–2549. doi: 10.1016/j.biomaterials.2005.11.034
  12. Clem W.C., Chowdhury S., Catledge S.A., et al. Mesenchymal stem cell interaction with ultra-smooth nanostructured diamond for wear-resistant orthopaedic implants // Biomaterials. 2008. Vol. 29. No. 24–25. P. 3461–3468. doi: 10.1016/j.biomaterials.2008.04.045
  13. Dong Q.S., Shang H.T., Wu W., et al. Prefabrication of axial vascularized tissue engineering coral bone by an arteriovenous loop: a better model // Mater. Sci. Eng. C. Mater. Biol. Appl. 2012. Vol. 32. No. 6. P. 1536–1541. doi: 10.1016/j.msec.2012.04.039
  14. Kneser U., Polykandriotis E., Ohnolz J., et al. Engineering of vascularized transplantable bone tissues: induction of axial vascularization in an osteoconductive matrix using an arteriovenous loop // Tissue. Eng. 2006. Vol. 12. No. 7. P. 1721–1731. doi: 10.1089/ten.2006.12.1721
  15. Ma D., Ren L., Cao Z., et al. Prefabrication of axially vascularized bone by combining -tricalciumphosphate, arteriovenous loop, and cell sheet technique // Tissue. Eng. Regen. Med. 2016. Vol. 13. No. 5. P. 579–584. doi: 10.1007/s13770-016-9095-0
  16. Myeroff C., Archdeacon M. Autogenous bone graft: donor sites and techniques // J. Bone. Joint. Surg. Am. 2011. Vol. 93. No. 23. P. 2227–2236. doi: 10.2106/JBJS.J.01513
  17. Леонова С.Н., Данилов Д.Г., Рехов А.В. Применение костной аутотрансплантации при хроническом остеомиелите // Acta. Biomedica Scientifica. 2007. № 5. С. 125–126.
  18. Azi M.L., Aprato A., Santi I., et al. Autologous bone graft in the treatment of post-traumatic bone defects: a systematic review and meta-analysis // BMC Musculoskelet. Disord. 2016. Vol. 17. No. 1. P. 465. doi: 10.1186/s12891-016-1312-4
  19. Capanna R., Campanacci D.A., Belot N., et al. A new reconstructive technique for intercalary defects of long bones: the association of massive allograft with vascularized fibular autograft. Long-term results and comparison with alternative techniques // Orthop. Clin. North Am. 2007. Vol. 38. No. 1. P. 51-vi. doi: 10.1016/j.ocl.2006.10.008
  20. Estrella E.P., Wang E.H. A comparison of vascularized free fibular flaps and nonvascularized fibular grafts for reconstruction of long bone defects after tumor resection // J. Reconstr. Microsurg. 2017. Vol. 33. No. 3. P. 194–205. doi: 10.1055/s-0036-1594299
  21. Izadpanah A., Moran S.L. Pediatric microsurgery: A global overview // Clin. Plast. Surg. 2020. Vol. 47. No. 4. P. 561–572. doi: 10.1016/j.cps.2020.06.008
  22. Yildirim S., Calikapan G.T., Akoz T. Reconstructive microsurgery in pediatric population – a series of 25 patients // Microsurgery. 2008. Vol. 28. No. 2. P. 99–107. doi: 10.1002/micr.20458
  23. Aldekhayel S., Govshievich A., Neel O.F., Luc M. Vascularized proximal fibula epiphyseal transfer for distal radius reconstruction in children: A systematic review // Microsurgery. 2016. Vol. 36. No. 8. P. 705–711. doi: 10.1002/micr.22521
  24. Boyer M.I., Bowen C.V. Microvascular transplantation of epiphyseal plates: studies utilizing allograft donor material // Orthop. Clin. North Am. 2007. Vol. 38. No. 1. P. 103-vii. doi: 10.1016/j.ocl.2006.10.002
  25. McCullough M.C., Arkader A., Ariani R., et al. Surgical outcomes, complications, and long-term functionality for free vascularized fibula grafts in the pediatric population: A 17-year experience and systematic review of the literature // J. Reconstr. Microsurg. 2020. Vol. 36. No. 5. P. 386–396. doi: 10.1055/s-0040-1702147
  26. Schwarz G.S., Disa J.J., Mehrara B.J., et al. Reconstruction of oncologic tibial defects in children using vascularized fibula flaps // Plast. Reconstr. Surg. 2012. Vol. 129. No. 1. P. 195–206. doi: 10.1097/PRS.0b013e318230e463
  27. Konttila E., Koljonen V., Kauhanen S., et al. Microvascular reconstruction in children-a report of 46 cases // J. Trauma. 2010. Vol. 68. No. 3. P. 548–552. doi: 10.1097/TA.0b013e3181a5f42c
  28. Ozols D., Blums K., Krumins M., et al. Entire calcaneus reconstruction with pedicled composite fibular growth plate flap in a pediatric patient // Microsurgery. 2021. Vol. 41. No. 3. P. 280–285. doi: 10.1002/micr.30691
  29. Taylor G.I., Corlett R.J., Ashton M.W. The evolution of free vascularized bone transfer: A 40-Year experience // Plast. Reconstr. Surg. 2016. Vol. 137. No. 4. P. 1292–1305. doi: 10.1097/PRS.0000000000002040
  30. Allsopp B.J., Hunter-Smith D.J., Rozen W.M. Vascularized versus nonvascularized bone grafts: what Is the evidence? // Clin. Orthop. Relat. Res. 2016. Vol. 474. No. 5. P. 1319–1327. doi: 10.1007/s11999-016-4769-4
  31. Venkatesan J., Kim S.K. Nano-hydroxyapatite composite biomaterials for bone tissue engineering – a review // J. Biomed. Nanotechnol. 2014. Vol. 10. No. 10. P. 3124–3140. doi: 10.1166/jbn.2014.1893
  32. Wen Y., Xun S., Haoye M., et al. 3D printed porous ceramic scaffolds for bone tissue engineering: a review // Biomater. Sci. 2017. Vol. 5. No. 9. P. 1690–1698. doi: 10.1039/c7bm00315c
  33. Lokmic Z., Stillaert F., Morrison W.A., et al. An arteriovenous loop in a protected space generates a permanent, highly vascular, tissue-engineered construct // FASEB J. 2007. Vol. 21. No. 2. P. 511–522. doi: 10.1096/fj.06-6614com
  34. Santos M.I., Reis R.L. Vascularization in bone tissue engineering: physiology, current strategies, major hurdles and future challenges // Macromol. Biosci. 2010. Vol. 10. No. 1. P. 12–27. doi: 10.1002/mabi.200900107
  35. Zheng L., Lv X., Zhang J., et al. Deep circumflex iliac artery perforator flap with iliac crest for oromandibular reconstruction // J. Craniomaxillofac. Surg. 2018. Vol. 46. No. 8. P. 1263–1267. doi: 10.1016/j.jcms.2018.04.021
  36. Schreiber M., Dragu A. Free temporal fascia flap to cover soft tissue defects of the foot: a case report // GMS Interdiscip. Plast. Reconstr. Surg DGPW. 2015. Vol. 4. P. Doc01. doi: 10.3205/iprs000060
  37. Polykandriotis E., Arkudas A., Beier J.P., et al. Intrinsic axial vascularization of an osteoconductive bone matrix by means of an arteriovenous vascular bundle // Plast. Reconstr. Surg. 2007. Vol. 120. No. 4. P. 855–868. doi: 10.1097/01.prs.0000277664.89467.14
  38. Weigand A., Beier J.P., Hess A., et al. Acceleration of vascularized bone tissue-engineered constructs in a large animal model combining intrinsic and extrinsic vascularization // Tissue. Eng. Part. A. 2015. Vol. 21. No. 9–10. P. 1680–1694. doi: 10.1089/ten.TEA.2014.0568
  39. Tanaka Y., Sung K.C., Tsutsumi A., et al. Tissue engineering skin flaps: which vascular carrier, arteriovenous shunt loop or arteriovenous bundle, has more potential for angiogenesis and tissue generation? // Plast. Reconstr. Surg. 2003. Vol. 112. No. 6. P. 1636–1644. doi: 10.1097/01.PRS.0000086140.49022.AB
  40. Yuan Q., Arkudas A., Horch R.E., et al. Vascularization of the arteriovenous loop in a rat isolation chamber model-quantification of hypoxia and evaluation of its effects // Tissue. Eng. Part A. 2018. Vol. 24. No. 9–10. P. 719–728. doi: 10.1089/ten.TEA.2017.0262
  41. Schmidt V.J., Hilgert J.G., Covi J.M., et al. High flow conditions increase connexin 43 expression in a rat arteriovenous and angioinductive loop model // PLoS One. 2013. Vol. 8. No. 11. P. e78782. doi: 10.1371/journal.pone.0078782
  42. Arkudas A., Tjiawi J., Bleiziffer O., et al. Fibrin gel-immobilized VEGF and bFGF efficiently stimulate angiogenesis in the AV loop model // Mol. Med. 2007. Vol. 13. No. 9–10. P. 480–487. doi: 10.2119/2007-00057
  43. Arkudas A., Beier J.P., Heidner K., et al. Axial prevascularization of porous matrices using an arteriovenous loop promotes survival and differentiation of transplanted autologous osteoblasts // Tissue. Eng. 2007. Vol. 13. No. 7. P. 1549–1560. doi: 10.1089/ten.2006.0387
  44. Beier J.P., Horch R.E., Hess A., et al. Axial vascularization of a large volume calcium phosphate ceramic bone substitute in the sheep AV loop model // J. Tissue. Eng. Regen. Med. 2010. Vol. 4. No. 3. P. 216–223. doi: 10.1002/term.229
  45. Horch R.E., Beier J.P., Kneser U., Arkudas A. Successful human long-term application of in situ bone tissue engineering // J. Cell. Mol. Med. 2014. Vol. 18. No. 7. P. 1478–1485. doi: 10.1111/jcmm.12296
  46. Arkudas A., Lipp A., Buehrer G., et al. Pedicled transplantation of axially vascularized bone constructs in a critical size femoral defect // Tissue. Eng. Part A. 2018. Vol. 24. No. 5–6. P. 479–492. doi: 10.1089/ten.TEA.2017.0110
  47. Buehrer G., Balzer A., Arnold I., et al. Combination of BMP2 and MSCs significantly increases bone formation in the rat arterio-venous loop model // Tissue. Eng. Part A. 2015. Vol. 21. No. 1–2. P. 96–105. doi: 10.1089/ten.TEA.2014.0028
  48. Eweida A.M., Nabawi A.S., Abouarab M., et al. Enhancing mandibular bone regeneration and perfusion via axial vascularization of scaffolds // Clin. OralInvestig. 2014. Vol. 18. No. 6. P. 1671–1678. doi: 10.1007/s00784-013-1143-8
  49. Kim H.Y., Lee J.H., Lee H.A.R., et al. Sustained release of BMP-2 from porous particles with leaf-stacked structure for bone regeneration // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2018. Vol. 10. No. 25. P. 21091–21102. doi: 10.1021/acsami.8b02141
  50. Boos A.M., Loew J.S., Weigand A., et al. Engineering axially vascularized bone in the sheep arteriovenous-loop model // J. Tissue. Eng. Regen. Med. 2013. Vol. 7. No. 8. P. 654–664. doi: 10.1002/term.1457
  51. Jones A.L., Bucholz R.W., Bosse M.J., et al. Recombinant human BMP-2 and allograft compared with autogenous bone graft for reconstruction of diaphyseal tibial fractures with cortical defects. A randomized, controlled trial // J. Bone Joint Surg. Am. 2006. Vol. 88. No. 7. P. 1431–1441. doi: 10.2106/JBJS.E.00381
  52. Hokugo A., Sawada Y., Sugimoto K., et al. Preparation of prefabricated vascularized bone graft with neoangiogenesis by combination of autologous tissue and biodegradable materials // Int. J. Oral. Maxillofac. Surg. 2006. Vol. 35. No. 11. P. 1034–1040. doi: 10.1016/j.ijom.2006.06.003
  53. Eweida A., Fathi I., Eltawila A.M., et al. Pattern of bone generation after irradiation in vascularized tissue engineered constructs // J. Reconstr. Microsurg. 2018. Vol. 34. No. 2. P. 130–137. doi: 10.1055/s-0037-1607322
  54. Polykandriotis E., Drakotos D., Arkudas A., et al. Factors influencing successful outcome in the arteriovenous loop model: a retrospective study of 612 loop operations // J. Reconstr. Microsurg. 2011. Vol. 27. No. 1. P. 11–18. doi: 10.1055/s-0030-1267385
  55. Weigand A., Boos A.M., Ringwald J., et al. New aspects on efficient anticoagulation and antiplatelet strategies in sheep // BMC Vet. Res. 2013. Vol. 9. P. 192. doi: 10.1186/1746-6148-9-192
  56. Dong Q.S., Lin C., Shang H.T., et al. Modified approach to construct a vascularized coral bone in rabbit using an arteriovenous loop // J. Reconstr. Microsurg. 2010. Vol. 26. No. 2. P. 95–102. doi: 10.1055/s-0029-1243293

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Рентгенограммы васкуляризированного аутотрансплантата малоберцовой кости на месте дефекта бедренной кости сразу после операции и через 9 мес. (красной стрелкой указана линия, по которой происходила инкорпорация трансплантата) [29]

Скачать (76KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Камеры, применявшиеся в работе Weigand и соавт. [38]: а — васкуляризация трансплантата из артериовенозной петли в полностью изолированной камере; б — васкуляризация трансплантата из артериовенозной петли и из окружающих тканей в перфорированной камере; в — общий вид сплошной полимерной камеры из тефлона; г — общий вид матрикса из материала NanoBone; д — общий вид перфорированной камеры из титана; е — общий вид сплошной камеры с размещенным внутри матриксом и артериовенозной петлей (крышка открыта); ж — общий вид перфорированной камеры с размещенным внутри матриксом и артериовенозной петлей (крышка открыта); з — общий вид сплошной полимерной камеры с размещенным внутри матриксом и артериовенозной петлей (крышка закрыта, камера фиксирована швами к окружающим такням); и — общий вид перфорированной камеры с размещенным внутри матриксом и артериовенозной петлей (крышка закрыта, камера фиксирована швами к окружающим такням)

Скачать (318KB)
Метаданные

© Шабунин А.С., Асадулаев М.С., Виссарионов С.В., Федюк А.М., Рыбинских Т.С., Макаров А.Ю., Пушкарев Д.А., Согоян М.В., Маевская Е.Н., Фомина Н.Б., 2021

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
 


Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».