Опыт применения стволовых клеток при лечении ожогов кожи

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Приведены результаты трехлетних исследований по применению аллогенных мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани (МСК ЖТ) при лечении ожогов кожи II–III степеней, в том числе в комплексе с раневыми покрытиями из нановолокон хитозана и сополиамида, гиалуроновой кислоты. Экспериментальная часть исследования выполнена с участием 48 крыс-самцов линии Wistar-Kyoto массой 230–250 г. Установлено, что при хирургической некрэктомии, введении МСК ЖТ и аппликации на поверхность дефектов покрытий из природных полимеров сроки заживления сокращаются на 89 % (p < 0,05). Изолированное введение МСК ЖТ способствует сокращению периода заживления не более чем на 5 % (p > 0,05). Совместное использование раневых покрытий из нановолокон хитозана и сополиамида с МСК ЖТ ускоряет процессы регенерации на 26 % (p < 0,05), при этом введение МСК ЖТ ускоряет развитие грануляционной ткани на 83 % (p < 0,01). Совместное использование раневых покрытий на основе гиалуроновой кислоты с МСК ЖТ сопровождается увеличением числа сосудов микроциркуляторного русла в области дефекта на 185 % (p < 0,01). Клиническая оценка эффективности препаратов со стволовыми клетками — геля для местного применения и суспензии МСК ЖК для инъекционного введения — демонстрирует их способность стимулировать регенерацию в зоне ожога. Аппликация геля с МСК ЖТ ускоряет эпителизацию пограничных (дермальных) ожогов в 2,2–2,4 раза, при этом окончательный срок заживления сокращается на 59 % (p < 0,01) и частота нагноения снижается на 30 % (p < 0,05). В области введения МСК ЖК уровень перфузии и амплитуда колебания кровотока в два раза выше величины показателей в зонах без введения клеток. Наряду с этим введение суспензии МСК ЖТ в зону глубокого ожога повышает частоту приживления аутотрансплантатов, стимулирует ангиогенез и пролиферацию фибробластов в поверхностных и глубоких слоях дермы. К 7-м сутками после инъекции МСК ЖТ экспрессия маркеров пролиферации эпителиальных и соединительнотканных клеточных линий достигает 460 % (p < 0,05) по сравнению с нормой, при этом экспрессии маркеров программированной клеточной гибели (апоптоза) не выявлено.

Об авторах

Евгений Владимирович Зиновьев

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: evz@list.ru

д-р мед. наук, профессор, профессор, кафедра госпитальной хирургии с курсами травматологии и ВПХ

Россия, Санкт-Петербург

Владимир Евгеньевич Юдин

ФГАОУ ВО «Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого»

Email: yudinve@gmail.com

д-р физ.-мат. наук, профессор, заведующий лабораторией, кафедра медицинской физики, лаборатория полимерных материалов для тканевой инженерии и трансплантологии

Россия, Санкт-Петербург

Марат Сергеевич Асадулаев

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Email: marat.asadulaev@yandex.ru

лаборант-исследователь, научно-исследовательский центр, лаборатория экспериментальной хирургии

Россия, Санкт-Петербург

Василий Николаевич Цыган

ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова» Минобороны России

Email: vn-t@mail.ru

д-р мед. наук, профессор, заведующий, кафедра патологической физиологии

Россия, Санкт-Петербург

Денис Валерьевич Костяков

ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова» Минобороны России

Email: kosdv@list.ru

канд. мед. наук, ассистент, кафедра патологической физиологии

Россия, Санкт-Петербург

Антон Сергеевич Шабунин

ФГАОУ ВО «Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого»

Email: anton-shab@yandex.ru

лаборант-исследователь, кафедра медицинской физики, лаборатория полимерных материалов для тканевой инженерии и трансплантологии

Россия, Санкт-Петербург

Наталья Владимировна Смирнова

ФГАОУ ВО «Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого»

Email: nvsmirnoff@yandex.ru

канд. биол. наук, научный сотрудник, кафедра медицинской физики, лаборатория полимерных материалов для тканевой инженерии и трансплантологии

Россия, Санкт-Петербург

Артем Евгеньевич Крюков

ФГАОУ ВО «Санкт-Петербургский политехнический университет Петра Великого»

Email: kryukov14@gmail.com

лаборант-исследователь, кафедра медицинской физики, лаборатория полимерных материалов для тканевой инженерии и трансплантологии

Россия, Санкт-Петербург

Моисей Бениаминович Панеях

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Email: moisey031190@gmail.com

ассистент, кафедра патологической анатомии с курсом судебной медицины

Россия, Санкт-Петербург

Сергей Андреевич Лукьянов

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Email: Sergey.lukyanov95@yandex.ru

лаборант-исследователь, научно-исследовательский центр, лаборатория экспериментальной хирургии

Россия, Санкт-Петербург

Илья Валерьевич Арцимович

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Email: enerdgezer@yandex.ru

лаборант-исследователь, научно-исследовательский центр, лаборатория экспериментальной хирургии

Россия, Санкт-Петербург

Иван Михайлович Лопатин

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Email: forlopatin@yandex.ru

лаборант-исследователь, научно-исследовательский центр, лаборатория экспериментальной хирургии

Россия, Санкт-Петербург

Виктор Владимирович Зубов

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Email: viktorzubo@mail.ru

лаборант-исследователь, научно-исследовательский центр, лаборатория экспериментальной хирургии

Россия, Санкт-Петербург

Павел Константинович Крылов

ГБУ «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт скорой помощи им. И.И. Джанелидзе»

Email: krilov_pk@mail.ru

канд. мед. наук, заведующий, ожоговое отделение

Россия, Санкт-Петербург

Денис Олегович Вагнер

ГБУ «Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт скорой помощи им. И.И. Джанелидзе»

Email: 77wagner77@mail.ru

канд. мед. наук, хирург, ожоговое отделение

Россия, Санкт-Петербург

Камил Фахрутдинович Османов

ФГБВОУ ВО «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова» Минобороны России

Email: ikamilo26@gmail.com

лаборант-исследователь, кафедра патологической физиологии

Россия, Санкт-Петербург

Георгий Отариевич Багатурия

ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Минздрава России

Email: geobag@mail.ru

д-р мед. наук, профессор, заведующий, кафедра оперативной хирургии и топографической анатомии

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Аканов Ж.А. Перспективы применения стволовых клеточных технологий в медицине // Медицина и экология. - 2010. - № 2. [Akanov ZA. Perspectives of stem cell techniques application in medicine. Meditsina i ekologiya. 2010;(2). (In Russ.)]
  2. Алексеев А.А. Организация медицинской помощи пострадавшим от ожогов в Российской Федерации // Сборник тезисов IX съезда травматологов-ортопедов России; Саратов, 15-17 сентября 2010 г. - Саратов, 2010. - C. 15-16. [Alekseev AA. Organizatsiya meditsinskoy pomoshchi postradavshim ot ozhogov v rossiyskoy federatsii. In: Proceedings of the 9th congress of traumatologists-orthopedists of Russia; Saratov, 15-17 Sep 2010. Saratov; 2010. P. 15-16. (In Russ.)]
  3. Алексеева И.С., Волков А.В., Кулаков А.А., Гольдштейн Д.В. Клинико-экспериментальное обоснование использования комбинированного клеточного трансплантата на основе мультипотентных мезенхимных стромальных клеток жировой ткани у пациентов с выраженным дефицитом костной ткани челюстей // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. - 2012. - Т. 7. - № 1. - С. 97-105. [Alekseeva IS, Volkov AV, Kulakov AA, Goldshtein DV. Clinical and experimental study on the use of combined cell transplant on the basis of multipotent mesenchymal stromal cells of adipose tissue in patients with severe deficiency of jaws bone tissue. Cellular transplantology and tissue engineering. 2012;7(1):97-105. (In Russ.)]
  4. Баранов Е.В., Третьяк С.И., Василевич И.Б., и др. Клинические возможности применения аутогенных мультипотентных мезенхимных стромальных клеток жировой ткани при лечении пациентов с трофическими язвами нижних конечностей // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. - 2013. - Т. 8. - № 2. - С. 79-84. [Baranov EV, Tretyak SI, Vasilevich IB, et al. The clinical application of autologous mesenchimal stem cells isolated from fat tissue for the treatment of patients with trophic ulcers of lower extremities. Cellular transplantology and tissue engineering. 2013;8(2):79-84. (In Russ.)]
  5. Бондаренко Н.А., Лыков А.П., Казаков О.В., и др. Изменения функциональных свойств мезенхимальных стволовых клеток под влиянием эритропоэтина // Современные проблемы науки и образования. - 2017. - № 6. [Bondarenko NA, Lykov AP, Kazakov OV, et al. Changes in functional properties of mesenchymal stem cells under the influence of erythropoietin. Modern problems of science and education. 2017;(6). (In Russ.)]
  6. Брюховецкий И.С., Брюховецкий А.С., Мищенко П.В., Хотимченко Ю.С. Роль системных механизмов миграции и хоуминга стволовых клеток в развитии злокачественных опухолей центральной нервной системы и разработке новых методов противоопухолевой терапии // Российский биотерапевтический журнал. - 2013. - Т. 12. - № 4. - С. 3-12. [Bryukhovetskyi IS, Bryukhovetskyi AS, Mischenko PV, Khotimchenko YS. The role of systemic migration and homing mechanisms of stem cells in the development of malignant tumors of the central nervous system and the development of new cancer therapies. Rossiiskii bioterapevticheskii zhurnal. 2013;12(4):3-12. (In Russ.)]
  7. Венгерович Н.Г., Хрипунов А.К., Рузанова Э.А., и др. Регенеративная терапия тканевыми протекторными цитокинами в составе раневых покрытий на основе бактериальной целлюлозы // Вестник Санкт-Петербургского университета. Серия 11 «Медицина». - 2016. - Т. 11. - № 1. - С. 36-46. [Vengerovich NG, Khripunov AK, Ruzanova EA, et al. Regenerative therapy by tissue-protective cytokines as a component of bacterial cellulose based wound dressings. Vestnik Sankt-Peterburgskogo universiteta. Seriia 11 “Meditsina”. 2016;11(1):36-46. (In Russ.)]
  8. Зиновьев Е.В., Цыган В.Н., Асадулаев М.С., и др. Экспериментальная оценка эффективности применения адипогенных мезенхимальных стволовых клеток для лечения ожогов кожи III степени // Вестник Российской военно-медицинской академии. - 2017. - № 1. - С. 137-141. [Zinovev EV, Tsygan VN, Asadulaev MS, et al. Experimental evaluation of the effectiveness of adipogenic mesenchymal stem cells for the treatment of skin burns of III degree. Vestnik Rossiiskoi voenno-meditsinskoi akademii. 2017;(1):137-141. (In Russ.)]
  9. Киселева Е.П., Гаин М.Ю. Эффективность применения мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани в восстановлении дефектов кожи в эксперименте // Вестник Национальной академии наук Белоруссии. Серия «Медицинские науки». - 2013. - № 2. - C. 75-81. [Kiseleva EP, Gain MY. Effectiveness of use of mesenchymal stem cells of the adipose tissue for skin defect restoration in experiment. Vestnik Natsional’noy akademii nauk Belorussii. Seriya “Meditsinskie nauki”. 2013;(2):75-81. (In Russ.)]
  10. Котенко К.В., Еремин И.И., Мороз Б.Б., и др. Клеточные технологии в лечении радиационных ожогов: опыт ФМБЦ им. А.И. Бурназяна // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. - 2012. - Т. 7. - № 2. - С. 97-102. [Kotenko KV, Eremin II, Moroz BB, et al. Cell technologies in the treatment of radiation burns: experience Burnasyan Federal Medical Biophysical Centre. Cellular transplantology and tissue engineering. 2012;7(2):97-102. (In Russ.)]
  11. Никольский Н.Н., Габай И.А., Сомова Н.В. Эмбриональные стволовые клетки человека. Проблемы и перспективы // Цитология. - 2007. - Т. 49. - № 7. - С. 529-537. [Nikolskiy NN, Gabay IA, Somova NV. Human embryonic stem cells problems and perspectives. Cell and tissue biology. 2007;49(7):529-537. (In Russ.)]
  12. Подойницына М.Г., Цепелев В.Л., Степанов А.В. Применение физических методов при лечении ожогов // Современные проблемы науки и образования. - 2015. - № 5. [Podoynitsyna MG, Tsepelev VL, Stepanov AV. The use of physical methods in the treatment of the skin burn. Modern problems of science and education. 2015;(5). (In Russ.)]
  13. Bassi EJ, Moraes-Vieira PM, Moreira-Sa CS, et al. Immune regulatory properties of allogeneic adipose-derived mesenchymal stem cells in the treatment of experimental autoimmune diabetes. Diabetes. 2012;61(10):2534-2545. doi: 10.2337/db11-0844.
  14. Cavallari G, Olivi E, Bianchi F, et al. Mesenchymal stem cells and islet cotransplantation in diabetic rats: improved islet graft revascularization and function by human adipose tissue-derived stem cells preconditioned with natural molecules. Cell Transplant. 2012;21(12):2771-2781. doi: 10.3727/096368912X637046.
  15. Cui L, Yin S, Liu W, et al. Expanded adipose-derived stem cells suppress mixed lymphocyte reaction by secretion of prostaglandin E2. Tissue Eng. 2007;13(6): 1185-1195. doi: 10.1089/ten.2006.0315.
  16. Gimble JM, Katz AJ, Bunnell BA. Adipose-derived stem cells for regenerative medicine. Circ Res. 2007;100(9):1249-1260. doi: 10.1161/01.RES.0000265074.83288.09.
  17. Gonzalez-Rey E, Gonzalez MA, Varela N, et al. Human adipose-derived mesenchymal stem cells reduce inflammatory and T cell responses and induce regulatory T cells in vitro in rheumatoid arthritis. Ann Rheum Dis. 2010;69(1):241-248. doi: 10.1136/ard.2008.101881.
  18. Kang Y, Park C, Kim D, et al. Unsorted human adipose tissue-derived stem cells promote angiogenesis and myogenesis in murine ischemic hindlimb model. Microvasc Res. 2010;80(3):310-316. doi: 10.1016/j.mvr.2010.05.006.
  19. Kim Y, Kim H, Cho H, et al. Direct comparison of human mesenchymal stem cells derived from adipose tissues and bone marrow in mediating neovascularization in response to vascular ischemia. Cell Physiol Biochem. 2007;20(6):867-876. doi: 10.1159/000110447.
  20. Kucerova L, Altanerova V, Matuskova M, et al. Adipose tissue-derived human mesenchymal stem cells mediated prodrug cancer gene therapy. Cancer Res. 2007;67(13):6304-6313. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-06-4024.
  21. Kuo YR, Chen CC, Goto S, et al. Modulation of immune response and T-cell regulation by donor adipose-derived stem cells in a rodent hind-limb allotransplant model. Plast Reconstr Surg. 2011;128(6):661e-672e. doi: 10.1097/PRS.0b013e318230c60b.
  22. Xue L, Xu YB, Xie JL, et al. Effects of human bone marrow mesenchymal stem cells on burn injury healing in a mouse model. Int J Clin Exp Pathol. 2013;6(7): 1327-1336.
  23. Meza-Zepeda LA, Noer A, Dahl JA, et al. High-resolution analysis of genetic stability of human adipose tissue stem cells cultured to senescence. J Cell Mol Med. 2008;12(2):553-563. doi: 10.1111/j.1582-4934.2007. 00146.x.
  24. Mitchell JB, McIntosh K, Zvonic S, et al. Immunophenotype of human adipose-derived cells: temporal changes in stromal-associated and stem cell-associated markers. Stem Cells. 2006;24(2):376-385. doi: 10.1634/stemcells.2005-0234.
  25. Muehlberg FL, Song YH, Krohn A, et al. Tissue-resident stem cells promote breast cancer growth and metastasis. Carcinogenesis. 2009;30(4):589-597. doi: 10.1093/carcin/bgp036.
  26. Advances in Stem Cell Therapy. Bench to Bedside. Ed by E. Nagwa. Cham: Humana Press; 2017. doi: 10.1007/978-3-319-29149-9.
  27. Niemeyer P, Vohrer J, Schmal H, et al. Survival of human mesenchymal stromal cells from bone marrow and adipose tissue after xenogenic transplantation in immunocompetent mice. Cytotherapy. 2008;10(8): 784-795. doi: 10.1080/14653240802419302.
  28. Liu P, Deng Z, Han S, et al. Tissue-engineered skin containing mesenchymal stem cells improves burn wounds. Artif Organs. 2008;32(12):925-931. doi: 10.1111/j.1525-1594.2008.00654.x.
  29. Pittenger MF. Multilineage Potential of Adult Human Mesenchymal Stem Cells. Science. 1999;284(5411): 143-147. doi: 10.1126/science.284.5411.143.
  30. Planat-Benard V, Silvestre JS, Cousin B, et al. Plasticity of human adipose lineage cells toward endothelial cells: physiological and therapeutic perspectives. Circulation. 2004;109(5):656-663. doi: 10.1161/01.CIR.0000114522.38265.61.
  31. Puissant B, Barreau C, Bourin P, et al. Immunomodulatory effect of human adipose tissue-derived adult stem cells: comparison with bone marrow mesenchymal stem cells. Br J Haematol. 2005;129(1):118-129. doi: 10.1111/j.1365-2141.2005.05409.x.
  32. Safford KM, Hicok KC, Safford SD, et al. Neurogenic differentiation of murine and human adipose-derived stromal cells. Biochem Biophys Res Commun. 2002;294(2):371-379. doi: 10.1016/s0006-291x(02)00469-2.
  33. Seo MJ, Suh SY, Bae YC, Jung JS. Differentiation of human adipose stromal cells into hepatic lineage in vitro and in vivo. Biochem Biophys Res Commun. 2005;328(1): 258-264. doi: 10.1016/j.bbrc.2004.12.158.
  34. Timper K, Seboek D, Eberhardt M, et al. Human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells differentiate into insulin, somatostatin, and glucagon expressing cells. Biochem Biophys Res Commun. 2006;341(4): 1135-1140. doi: 10.1016/j.bbrc.2006.01.072.
  35. Tse WT, Pendleton JD, Beyer WM, et al. Suppression of allogeneic T-cell proliferation by human marrow stromal cells: implications in transplantation. Transplantation. 2003;75(3):389-397. doi: 10.1097/01.TP.0000045055.63901.A9.
  36. Yanez R, Lamana ML, Garcia-Castro J, et al. Adipose tissue-derived mesenchymal stem cells have in vivo immunosuppressive properties applicable for the control of the graft-versus-host disease. Stem Cells. 2006;24(11):2582-2591. doi: 10.1634/stemcells.2006-0228.
  37. Zhu X, Shi W, Tai W, Liu F. The comparition of biological characteristics and multilineage differentiation of bone marrow and adipose derived Mesenchymal stem cells. Cell Tissue Res. 2012;350(2):277-287. doi: 10.1007/s00441-012-1453-1.
  38. Zuk PA, Zhu M, Ashjian P, et al. Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells. Mol Biol Cell. 2002;13(12):4279-95. doi: 10.1091/mbc.e02-02-0105.
  39. Zuk PA, Zhu M, Mizuno H, et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell-based therapies. Tissue Eng. 2001;7(2):211-228. doi: 10.1089/107632701300062859.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Этап введения суспензии адипогенных мезенхимных стволовых клеток субфасциально в область ожога кожи III степени

Скачать (115KB)
3. Рис. 2. Частота развития гнойного воспаления при применении геля с адипогенными мезенхимальными стволовыми клетками: КККП — коллаген-клеточный комплексный продукт

Скачать (23KB)
4. Рис. 3. Пациент А., 49 лет, ожог пламенем 6 % (5,5 %)/IIIа, б степени правого бедра, голени, коленного сустава: а — третьи сутки после ожога, перед операцией; b — интраоперационное введение мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани после некрэктомии и аутодермопластики; c — трансплантат на первой перевязке

Скачать (194KB)
5. Рис. 4. Пациент Б., 37 лет, ожог пламенем 78 % (67 %)/IIIа, б степени головы, туловища, конечностей: a — третьи сутки после ожога, перед операцией; b — интраоперационное введение мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани после некрэктомии и аутодермопластики; c — трансплантат на первой перевязке

Скачать (183KB)
6. Рис. 5. Пациент В., 46 лет, ожог пламенем 36 % (16 %)/IIIа, б степени головы, шеи, туловища, верхних конечностей: a — третьи сутки после ожога, ранней хирургической некрэктомии; b — интраоперационное введение мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани после некрэктомии и аутодермопластики; c — трансплантат на первой перевязке

Скачать (196KB)
7. Рис. 6. Пациент Г., 34 года, 5-е сутки наблюдения. Активная краевая эпителизация. Широкая полоса формирующегося эпидермального слоя. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×400

Скачать (117KB)
8. Рис. 7. Пациент Д., 49 лет, 5-е сутки наблюдения. Новообразованные сосуды с перифокальной пролиферацией фибробластов. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение ×400

Скачать (121KB)
9. Рис. 8. Пациент Г., 34 года. Выраженная экспрессия маркера пролиферации Ki-67 клетками аутологичного кожного трансплантата на 5-е сутки после введения мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани. Увеличение ×600

Скачать (124KB)
10. Рис. 9. Пациент Д., 49 лет. Выраженная экспрессия маркера пролиферации Ki-67 клетками аутологичного кожного трансплантата на 5-е сутки после введения мезенхимальных стволовых клеток жировой ткани. Увеличение ×600

Скачать (118KB)

© Зиновьев Е.В., Юдин В.Е., Асадулаев М.С., Цыган В.Н., Костяков Д.В., Шабунин А.С., Смирнова Н.В., Крюков А.Е., Панеях М.Б., Лукьянов С.А., Арцимович И.В., Лопатин И.М., Зубов В.В., Крылов П.К., Вагнер Д.О., Османов К.Ф., Багатурия Г.О., 2018

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
 


Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».