Анализ влияния миом матки с различной локализацией и размерами на перфузионно-метаболические характеристики эндометрия
- Авторы: Поленов Н.И.1, Ярмолинская М.И.1, Закураева К.А.1, Крутикова В.Ю.2, Потапова Е.В.2, Коган И.Ю.1, Шенгелия Н.Д.3
-
Учреждения:
- Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
- Орловский государственный университет им. И.С. Тургенева
- Городская больница №38 им. Н.А. Семашко
- Выпуск: Том 72, № 2 (2023)
- Страницы: 51-62
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://ogarev-online.ru/jowd/article/view/131194
- DOI: https://doi.org/10.17816/JOWD120126
- ID: 131194
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Миома матки является наиболее распространенной доброкачественной опухолью женской репродуктивной системы. Существует ряд факторов, влияющих на рецептивность эндометрия при миоме матки, таких как факторы транскрипции, кодируемые генами HOXA10, HOXA11, цитокины (факторы роста и воспаления) и др. Негативное влияние миоматозных узлов, деформирующих полость матки, на рецептивность эндометрия достаточно хорошо изучено и не вызывает сомнений, в то время как воздействие на эндометрий миоматозных узлов с интрамуральной и интрамурально-субсерозной локализацией остается дискуссионным. Важно четко определять показания к миомэктомии у пациенток без клинических проявлений заболевания, планирующих беременность, в частности, в программах вспомогательных репродуктивных технологий. В настоящей статье представлены результаты исследований влияния миоматозных узлов с различной локализацией на состояние эндометрия (на основании зарубежных литературных источников электронных баз PubMed, CyberLeninka, Google Scholar в период с 2000 по 2022 г.), отражены основные аспекты федеральных клинических рекомендаций, а также продемонстрированы результаты собственных исследований.
Цель исследования — определить влияние интрамуральных и интрамурально-субмукозных миоматозных узлов на перфузионно-метаболические характеристики эндометрия.
Материалы и методы. Проведено комплексное обследование 20 пациенток репродуктивного возраста с миомой матки, проходивших хирургическое лечение в гинекологическом отделении I (с операционным блоком) НИИ АГиР им. Д.О. Отта и Городской больнице № 38 им. Н.А. Семашко. Сформированы две группы: I группу составили 10 пациенток с множественной миомой матки (типов 2 и 3 по FIGO), II группу — 10 пациенток с интрамурально-субсерозными и интрамуральными узлами (типов 4–6 по FIGO). Исследования перфузии и метаболизма в эндометрии проводили с помощью волоконно-оптической системы, реализующей методы флуоресцентной спектроскопии и лазерной допплеровской флоуметрии, включающей диагностический комплекс «ЛАКК-М» (ООО НПП «Лазма», Россия) и лапароскопический оптоволоконный зонд, с последующей регистрацией оптических сигналов.
Результаты. В группе пациенток с миоматозными узлами, деформирующими полость матки, выявлено статистически значимое снижение показателя микроциркуляции крови в тканях эндометрия, а также повышение уровня флуоресценции на длине волны 365 нм, что может свидетельствовать о гипоксических явлениях в тканях эндометрия у пациенток с миоматозными узлами типов 2 и 3 по FIGO и является одной из значимых патогенетических причин нарушений процессов имплантации и физиологического течения беременности в этой группе.
Заключение. Полученные результаты обосновывают необходимость продолжения исследований в данном направлении для разработки перфузионно-метаболических критериев, позволяющих оптимизировать показания для выбора тактики ведения пациенток с миомой матки.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Николай Игоревич Поленов
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: polenovdoc@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8575-7026
SPIN-код: 9387-1703
канд. мед. наук
Россия, Санкт-ПетербургМария Игоревна Ярмолинская
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: m.yarmolinskaya@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-6551-4147
SPIN-код: 3686-3605
Scopus Author ID: 7801562649
ResearcherId: P-2183-2014
д-р мед. наук, профессор, профессор РАН
Россия, Санкт-ПетербургКарина Анзоровна Закураева
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: kareen07kbr@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8128-306X
SPIN-код: 5215-7869
Scopus Author ID: 57197793723
Россия, Санкт-Петербург
Валентина Юрьевна Крутикова
Орловский государственный университет им. И.С. Тургенева
Email: krutikowa@bk.ru
ORCID iD: 0000-0002-5680-1574
SPIN-код: 6862-5861
Scopus Author ID: 58190824100
Россия, Орел
Елена Владимировна Потапова
Орловский государственный университет им. И.С. Тургенева
Автор, ответственный за переписку.
Email: potapova_ev_ogu@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9227-6308
SPIN-код: 9315-8770
Scopus Author ID: 57194048862
канд. техн. наук, доцент
Россия, ОрелИгорь Юрьевич Коган
Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта
Email: ikogan@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7351-6900
SPIN-код: 6572-6450
Scopus Author ID: 56895765600
ResearcherId: P-4357-2017
д-р мед. наук, профессор, чл.-корр. РАН
Россия, Санкт-ПетербургНодари Давидович Шенгелия
Городская больница №38 им. Н.А. Семашко
Email: nod802210@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-0677-494X
SPIN-код: 7495-9480
Россия, Санкт-Петербург
Список литературы
- El-Balat A., DeWilde R.L., Schmeil I., et al. Modern myoma treatment in the last 20 years: a review of the literature // Biomed. Res. Int. 2018. Vol. 2018. doi: 10.1155/2018/4593875
- Giuliani E., As-Sanie S., Marsh E.E. Epidemiology and management of uterine fibroids // Int. J. Gynaecol. Obstet. 2020. Vol. 149. No. 1. P. 3–9. doi: 10.1002/ijgo.13102
- Lewis T.D., Malik M., Britten J., et al. A comprehensive review of the pharmacologic management of uterine leiomyoma // Biomed. Res. Int. 2018. Vol. 2018. doi: 10.1155/2018/2414609
- Cardozo E.R., Clark A.D., Banks N.K. et al. The estimated annual cost of uterine leiomyomata in the United States // Am. J. Obstet. Gynecol. 2012. Vol. 206. No. 3. P. 211.e1–211.e2119. doi: 10.1016/j.ajog.2011.12.002
- Segars J.H., Parrott E.C., Nagel J.D.et al. Proceedings from the third national institutes of health international congress on advances in uterine leiomyoma research: comprehensive review, conference summary and future recommendations // Hum. Reprod. Update. 2014. Vol. 20. No. 3. P.309–333. doi: 10.1093/humupd/dmt058
- Ярмолинская М.И., Поленов Н.И., Куница В.В. Миома матки — роль сигнальных путей в патогенезе заболевания // Журнал акушерства и женских болезней. 2020. Т. 69. № 5. C. 113–124. doi: 10.17816/JOWD695113-124
- Российское общество акушеров-гинекологов. Миома матки. Клинические рекомендации. 2020 [дата обращения: 12.02.2023]. Доступ по ссылке: https://roag-portal.ru/recommendations_gynecology#pdfcontent_gin_2
- Цхай В.Б., Бадмаева С.Ж., Наркевич А.Н., и др. Прогностическая модель для расчета вероятности возникновения рецидива миомы матки после оперативного вмешательства // Фундаментальная и клиническая медицина. 2021. Т. 6. № 3. С. 64–70. doi: 10.23946/2500-0764-2021-6-3-64-70
- Paulson R.J. Introduction: endometrial receptivity: evaluation, induction and inhibition // Fertil. Steril. 2019. Vol. 111. No. 4. P. 609–610. doi: 10.1016/j.fertnstert.2019.02.029
- Dvořan M., Vodička J., Dostál J., et al. Implantation and diagnostics of endometrial receptivity. Implantace a diagnostika receptivity endometrial // Ceska Gynekol. 2018. Vol. 83. No. 4. P. 291–298.
- Fox C., Morin S., Jeong J.W., et al. Local and systemic factors and implantation: what is the evidence? // Fertil. Steril. 2016. Vol. 105. No. 4. P. 873–884. doi: 10.1016/j.fertnstert.2016.02.018
- Мороцкая А.В. Молекулярные факторы рецептивности эндометрия // Журнал акушерства и женских болезней. 2017. Т. 66. С. 128–129.
- Onogi S., Ezoe K., Nishihara S., et al. Endometrial thickness on the day of the LH surge: an effective predictor of pregnancy outcomes after modified natural cycle-frozen blastocyst transfer // Hum. Reprod. Open. 2020. Vol. 2020. No. 4. doi: 10.1093/hropen/hoaa060
- Bu Z., Hu L., Yang X., et al. Cumulative live birth rate in patients with thin endometrium: a real-world single-center experience // Front. Endocrinol. 2020. Vol. 11. P. 469. doi: 10.3389/fendo.2020.00469
- Gautray J.P. Métroses de réceptivité d’origine centrale [Uterine diseases of receptivity of central origin] // C. R. Soc. Fr. Gyncol. 1959. Vol. 29. No. 1. P. 46–53.
- Achache H., Revel A. Endometrial receptivity markers, the journey to successful embryo implantation // Hum. Reprod. Update. 2006;12(6):731–746. doi: 10.1093/humupd/dml004
- Pritts E.A., Parker W.H., Olive D.L. Fibroids and infertility: an updated systematic review of the evidence // Fertil Steril. 2009;91(4):1215–1223. doi: 10.1016/j.fertnstert.2008.01.051
- Dey S.K., Lim H., Das S.K., et al. Molecular cues to implantation // Endocr. Rev. 2004. Vol. 25. No. 3. P. 341–373. doi: 10.1210/er.2003-0020
- Taylor H.S. The role of HOX genes in human implantation // Hum. Reprod. Update. 2000. Vol. 6. No. 1. P. 75–79. doi: 10.1093/humupd/6.1.75
- Taylor H.S., Arici A., Olive D., et al. HOXA10 is expressed in response to sex steroids at the time of implantation in the human endometrium // J. Clin. Invest. 1998. Vol. 101. No. 7. P. 1379–1384. doi: 10.1172/JCI1057
- Cakmak H., Taylor H.S. Molecular mechanisms of treatment resistance in endometriosis: the role of progesterone-hox gene interactions // Semin. Reprod. Med. 2010. Vol. 28. No. 1. P.69–74. doi: 10.1055/s-0029-1242996
- Benson G.V., Lim H., Paria B.C., et al. Mechanisms of reduced fertility in Hoxa-10 mutant mice: uterine homeosis and loss of maternal Hoxa-10 expression // Development. 1996. Vol. 122. No. 9. P. 2687–2696. doi: 10.1242/dev.122.9.2687
- Das S.K., Lim H., Paria B.C., et al. Cyclin D3 in the mouse uterus is associated with the decidualization process during early pregnancy // J. Mol. Endocrinol. 1999. Vol. 22. No. 1. P. 91–101. doi: 10.1677/jme.0.0220091
- Rackow B.W., Taylor H.S. Submucosal uterine leiomyomas have a global effect on molecular determinants of endometrial receptivity // Fertil. Steril. 2010. Vol. 93. No. 6. P. 2027–2034. doi: 10.1016/j.fertnstert.2008.03.029
- Doherty L.F., Taylor H.S. Leiomyoma-derived transforming growth factor-β impairs bone morphogenetic protein-2-mediated endometrial receptivity // Fertil. Steril. 2015. Vol. 103, No. 3. P. 845–852. doi: 10.1016/j.fertnstert.2014.12.099
- Li Q., Kannan A., Das A., et al. WNT4 acts downstream of BMP2 and functions via β-catenin signaling pathway to regulate human endometrial stromal cell differentiation // Endocrinology. 2013. Vol. 154. No. 1. P. 446–457. doi: 10.1210/en.2012-1585
- Paria B.C., Ma W., Tan J., et al. Cellular and molecular responses of the uterus to embryo implantation can be elicited by locally applied growth factors // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2001. Vol. 98. No. 3. P. 1047–1052. doi: 10.1073/pnas.98.3.1047
- Li Q., Kannan A., Wang W., et al. Bone morphogenetic protein 2 functions via a conserved signaling pathway involving Wnt4 to regulate uterine decidualization in the mouse and the human // J. Biol. Chem. 2007. Vol. 282. No. 43. P. 31725–31732. doi: 10.1074/jbc.M704723200
- Speroff L., Fritz M.A. Clinical gynecologic endocrinology and infertility. 8th ed. Lippincott: Williams Wilkins, 2005.
- Stewart C.L., Kaspar P., Brunet L.J., et al. Blastocyst implantation depends on maternal expression of leukaemia inhibitory factor // Nature. 1992. Vol. 359. No. 6390. P. 76–79. doi: 10.1038/359076a0
- Hasegawa E., Ito H., Hasegawa F., et al. Expression of leukemia inhibitory factor in the endometrium in abnormal uterine cavities during the implantation window // Fertil. Steril. 2012 Vol. 97. No. 4. P. 953–958. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.01.113
- Unlu C., Celik O., Celik N., et al. Expression of endometrial receptivity genes increase after myomectomy of intramural leiomyomas not distorting the endometrial cavity // Reprod. Sci. 2016. Vol. 23. No. 1. P. 31–41. doi: 10.1177/1933719115612929
- Dimitriadis E., Stoikos C., Baca M., et al. Relaxin and prostaglandin E(2) regulate interleukin 11 during human endometrial stromal cell decidualization // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2005. Vol. 90. No. 6. P. 3458–3465. doi: 10.1210/jc.2004-1014
- Karpovich N., Klemmt P., Hwang J.H., et al. The production of interleukin-11 and decidualization are compromised in endometrial stromal cells derived from patients with infertility // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2005. Vol. 90. No. 3. P. 1607–1612. doi: 10.1210/jc.2004-0868
- Gellersen B., Brosens J.J. Cyclic decidualization of the human endometrium in reproductive health and failure // Endocr. Rev. 2014. Vol. 35. No. 6. P. 851–905. doi: 10.1210/er.2014-1045
- Zenclussen A.C., Hämmerling G.J. Cellular regulation of the uterine microenvironment that enables embryo implantation // Front. Immunol. 2015. Vol. 6. P. 321. doi: 10.3389/fimmu.2015.00321
- Paiva P., Salamonsen L.A., Manuelpillai U., et al. Interleukin 11 inhibits human trophoblast invasion indicating a likely role in the decidual restraint of trophoblast invasion during placentation // Biol. Reprod. 2009. Vol. 80. No. 2. P. 302–310. doi: 10.1095/biolreprod.108.071415
- Ernst M., Inglese M., Waring P., et al. Defective gp130-mediated signal transducer and activator of transcription (STAT) signaling results in degenerative joint disease, gastrointestinal ulceration, and failure of uterine implantation // J. Exp. Med. 2001. Vol. 194. No. 2. P. 189–203. doi: 10.1084/jem.194.2.189
- Fabi F., Grenier K., Parent S., et al. Regulation of the PI3K/Akt pathway during decidualization of endometrial stromal cells // PLoS One. 2017. Vol. 12. No. 5. doi: 10.1371/journal.pone.0177387
- Avellaira C., Villavicencio A., Bacallao K., et al. Expression of molecules associated with tissue homeostasis in secretory endometria from untreated women with polycystic ovary syndrome // Hum. Reprod. 2006. Vol. 21. No. 12. P. 3116–3121. doi: 10.1093/humrep/del183
- Ujvari D., Hulchiy M., Calaby A., et al. Lifestyle intervention up-regulates gene and protein levels of molecules involved in insulin signaling in the endometrium of overweight/obese women with polycystic ovary syndrome // Hum. Reprod. 2014. Vol. 29. No. 7. P. 1526–1535. doi: 10.1093/humrep/deu114
- Zhang Y., Sun X., Sun X., et al. Molecular characterization of insulin resistance and glycolytic metabolism in the rat uterus // Sci. Rep. 2016. Vol. 6. doi: 10.1038/srep30679
- Miura S., Khan K.N., Kitajima M., et al. Differential infiltration of macrophages and prostaglandin production by different uterine leiomyomas // Hum. Reprod. 2006. Vol. 21. No. 10. P. 2545–2554. doi: 10.1093/humrep/del205
- Klatsky P.C., Lane D.E., Ryan I.P, et al. The effect of fibroids without cavity involvement on ART outcomes independent of ovarian age // Hum. Reprod. 2007. Vol. 22. No. 2. P. 521–526. doi: 10.1093/humrep/del370
- Somigliana E., Vercellini P., Daguati R., et al. Fibroids and female reproduction: a critical analysis of the evidence // Hum. Reprod. Update. 2007. Vol. 13. No. 5. P. 465–476. doi: 10.1093/humupd/dmm013
- Baranov V.S., Osinovskaya N.S., Yarmolinskaya M.I. Pathogenomics of uterine fibroids development // Int. J. Mol. Sci. 2019. Vol. 20. No. 24. doi: 10.3390/ijms20246151
- Sunkara S.K., Khairy M., El-Toukhy T., et al. The effect of intramural fibroids without uterine cavity involvement on the outcome of IVF treatment: a systematic review and meta-analysis // Hum. Reprod. 2010. Vol. 25. No. 2. P. 418–429. doi: 10.1093/humrep/dep396
- Eldar-Geva T., Meagher S., Healy D.L., et al. Effect of intramural, subserosal, and submucosal uterine fibroids on the outcome of assisted reproductive technology treatment // Fertil. Steril. 1998. Vol. 70. No. 4. P. 687–691. doi: 10.1016/s0015-0282(98)00265-9
- Christopoulos G., Vlismas A., Salim R., et al. Fibroids that do not distort the uterine cavity and IVF success rates: an observational study using extensive matching criteria // BJOG. 2017. Vol. 124. No. 4. P. 615–621. doi: 10.1111/1471-0528.14362
- Healy D.L. Impact of uterine fibroids on ART outcome // Environ. Health Perspect. 2000. Vol. 108. P. 845–847. doi: 10.1289/ehp.00108s5845
- Hart R., Khalaf Y., Yeong C.T., et al. A prospective controlled study of the effect of intramural uterine fibroids on the outcome of assisted conception // Hum. Reprod. 2001. Vol. 16. No. 11. P. 2411–2417. doi: 10.1093/humrep/16.11.2411
- Khalaf Y., Ross C., El-Toukhy T., et al. The effect of small intramural uterine fibroids on the cumulative outcome of assisted conception // Hum. Reprod. 2006. Vol. 21. No. 10. P. 2640–2644. doi: 10.1093/humrep/del218
- Guven S., Kart C., Unsal M.A., et al. Intramural leoimyoma without endometrial cavity distortion may negatively affect the ICSI - ET outcome // Reprod. Biol. Endocrinol. 2013. Vol. 11. P. 102. doi: 10.1186/1477-7827-11-102
- Seoud M.A., Patterson R., Muasher S.J., et al. Effects of myomas or prior myomectomy on in vitro fertilization (IVF) performance // J. Assist. Reprod. Genet. 1992. Vol. 9. No. 3. P. 217–221. doi: 10.1007/BF01203816
- Sagi-Dain L., Ojha K., Bider D., et al. Pregnancy outcomes in oocyte recipients with fibroids not impinging uterine cavity // Arch. Gynecol. Obstet. 2017. Vol. 295. No. 2. P. 497–502. doi: 10.1007/s00404-016-4273-9
- Ng E.H., Chan C.C., Tang O.S., et al. Endometrial and subendometrial blood flow measured by three-dimensional power Doppler ultrasound in patients with small intramural uterine fibroids during IVF treatment // Hum. Reprod. 2005. Vol. 20. No. 2. P. 501–506. doi: 10.1093/humrep/deh594
- Kandurova K., Dremin V., Zherebtsov E., et al. Fiber-optic system for intraoperative study of abdominal organs during minimally invasive surgical interventions // Applied Sciences. 2019. Vol. 9. No. 2. P. 217. doi: 10.3390/app9020217
- Кандурова К.Ю., Дрёмин В.В., Жеребцов Е.А., и др. Методы оптической биопсии и их перспективы применения для интраоперационного анализа тканевого метаболизма и микроциркуляции крови в миниинвазивной хирургии // Регионарное кровообращение и микроциркуляция. 2018. Т. 17. № 3. С. 71–79. doi: 10.24884/1682-6655-2018-17-3-71-79
- Дунаев А.В. Мультимодальная оптическая диагностика микроциркуляторно-тканевых систем организма человека. Старый Оскол: ТНТ, 2023 [дата обращения 12.02.2023]. Доступно по ссылке: https://www.tnt-ebook.ru/library/book/746
- Жеребцов Е.А., Дрёмин В.В., Жеребцова А.И., и др. Флуоресцентная диагностика митохондриальной. Орел: ОГУ им. И.С. Тургенева, 2018 [дата обращения 12.02.2023]. Доступно по ссылке: https://bmecenter.ru/sites/default/files/publications/Monografia_Zherebtsov_2018.pdf
- Hickey M., Krikun G., Kodaman P., et al. Long-term progestin-only contraceptives result in reduced endometrial blood flow and oxidative stress // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2006. Vol. 91. No. 9. P. 3633–3638. doi: 10.1210/jc.2006-0724
- Bungum L., Kullander S., Maltau J.M. Laser doppler flowmetry of human endometrial microvasculature. a preliminary communication // Acta Obstet. Gynecol. Scand. 1996. Vol. 75. No. 2. P. 178–181. doi: 10.3109/00016349609033314
- Дамиров М.М., Муртузалиева З.З., Полетова Т.Н., и др. Применение лазерной допплеровской флоуметрии для оценки состояния микроциркуляции у больных с гиперпластическими процессами эндометрия // Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2006. Т. 5. №. 5. С. 40–44.
- Aplin J.D., Charlton A.K., Ayad S. An immunohistochemical study of human endometrial extracellular matrix during the menstrual cycle and first trimester of pregnancy // Cell Tissue Res. 1988. Vol. 253. No. 1. P. 231–240. doi: 10.1007/BF00221758
- Mayevsky A., Rogatsky G.G. Mitochondrial function in vivo evaluated by NADH fluorescence: from animal models to human studies // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2007. Vol. 292. No. 2. P. C615–C640. doi: 10.1152/ajpcell.00249.2006
Дополнительные файлы
