Биохимические факторы гипоксии и их роль в оценке функционального состояния плода
- Авторы: Рождественская О.В.1, Кокая А.А.2,3, Беженарь В.Ф.1
-
Учреждения:
- Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова
- Родильный дом № 16
- Государственный научно-исследовательский институт прикладных проблем
- Выпуск: Том 70, № 6 (2021)
- Страницы: 117-126
- Раздел: Научные обзоры
- URL: https://ogarev-online.ru/jowd/article/view/71300
- DOI: https://doi.org/10.17816/JOWD71300
- ID: 71300
Цитировать
Аннотация
Неизменная частота случаев гипоксии плода во время беременности и родов остается ведущей нерешенной проблемой современного практического акушерства. Путем своевременного отслеживания нарушений функционального состояния плода в ряде случаев удается рано диагностировать патологический процесс. Однако существующие методы не позволяют выявлять компенсаторно-приспособительные возможности плода, не ведут к углубленному пониманию патофизиологических основ данного состояния и внедрению терапии. Целью обзора стали обобщение современных знаний о диагностике функционального состояния плода, анализ возможных способов оценки адаптационно-приспособительных механизмов плода в ответ на воздействие стресс-факторов при беременности и в родах. В статье показано развитие биохимических методов диагностики функционального состояния плода и представлены предполагаемые биохимические маркеры для оценки компенсаторных возможностей плода во время беременности и родов.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Ольга Викторовна Рождественская
Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова
Email: olgamish@inbox.ru
ORCID iD: 0000-0003-2280-9196
Россия, Санкт-Петербург
Анна Александровна Кокая
Родильный дом № 16; Государственный научно-исследовательский институт прикладных проблем
Email: kann9998@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-7324-5947
канд. мед. наук
Россия, Санкт-ПетербургВиталий Федорович Беженарь
Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова
Автор, ответственный за переписку.
Email: vitaliy@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-7807-4929
SPIN-код: 8626-7555
Scopus Author ID: 57191963583
ResearcherId: R-7055-2017
д-р мед. наук, профессор
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Перепелица С.А., Голубев А.М., Мороз В.В. и др. Причины острой интранатальной и постнатальной гипоксии у новорожденных // Общая реаниматология. 2012. T. VIII. № 6. C. 17–22.
- Гунин А.Г., Милованов М.М., Денисова Т.Г. Методы оценки состояния плода в родах // Здравоохранение Чувашии. 2014. Т. 3. № 3. C. 39–48.
- Кузнецов П.А., Козлов П.В. Гипоксия плода и асфиксия новорожденного // Лечебное дело. 2017. № 4. С. 9–15.
- Malin G.L., Morris R.K., Khan K.S. Strength of association between umbilical cord pH and perinatal and long term outcomes: Systematic review and meta-analysis // BMJ. 2010. Vol. 340 (7756). P. 1121. doi: 10.1136/bmj.c1471
- Goodwin T.M., Belai I., Hernandez P. et al. Asphyxial complications in the term newborn with severe umbilical acidemia // Am. J. Obstet. Gynecol. 1992. Vol. 167. No. 6. P. 1506−1512. doi: 10.1016/0002-9378(92)91728-s
- Rubak S.L. Lactate measurement in umbilical cord blood in neonates // Ugeskr Laeger. 2010. Vol. 172. No. 1. P. 364–368.
- East C.E., Leader L.R., Sheehan P. et al. Intrapartum fetal scalp lactate sampling for fetal assessment in the presence of a non-reassuring fetal heart rate trace // Cochrane Database Syst. Rev. 2015. No. 5. P. CD006174. doi: 10.1002/14651858.CD006174.pub3
- Wiberg-Itzel E. Determination of pH or lactate in fetal scalp blood in management of intrapartum fetal distress: randomised controlled multicenter trial // Br. Med. J. 2008. Vol. 336. P. 1284–1287. doi: 10.1136/bmj.39553.406991.25
- Nordström L., Achanna S., Naka K., Arulkumaran S. Fetal and maternal lactate increase during active second stage of labour // BJOG. 2001. Vol. 108. No. 3. P. 263–268. doi: 10.1136/10.1111/j.1471-0528.2001.00034.x
- Wiberg N., Källén K. Fetal scalp blood lactate during second stage of labor: determination of reference values and impact of obstetrical interventions // J. Matern. Fetal. Neonatal. Med. 2017. Vol. 30. No. 5. P. 612−617. doi: 10.1080/14767058.2016.1181167
- Orsonneau J.-L., Fraissinet F., Sébille-Rivain V. et al. Suitability of POC lactate methods for fetal and perinatal lactate testing: considerations for accuracy, specificity and decision making criteria // Clin. Chem. Lab. Med. 2013. Vol. 51. No. 2. P. 397–404. doi: 10.1515/cclm-2012-0201
- Wiberg N., Klausen T.W., Tyrberg T. et al. Infant outcome at four years of age after intrapartum sampling of scalp blood lactate for fetal assessment. A cohort study // PLoS One. 2018. Vol. 13. No. 3. P. e0193887. doi: 10.1371/journal.pone.0193887
- Ремнева О.В., Фадеева Н.И., Фильчакова О.Н. и др. Интранатальная гипоксия плода: возможности диагностики, резервы снижения частоты церебральных расстройств у доношенных новорожденных // Российский вестник педиатрии. 2015. Т. 5. № 5. С. 61–66.
- Погорелова Т.М., Гунько В.О., Друккер Н.А., Линде В.А. Белки-маркеры плацентарной недостаточности // Биомедицинская химия. 2010. Т. 56. № 5. С. 616–620.
- Loukovaara M., Teramo K., Alfthan H. et al. Amniotic fluid S100B protein and erythropoietin in pregnancies at risk for fetal hypoxia // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2009. Vol. 142. No. 2. P. 115−118. doi: 10.1016/j.ejogrb.2008.10.008
- Summanen M., Seikku L., Rahkonen P. et al. Comparison of umbilical serum copeptin relative to erythropoietin and S100B as asphyxia biomarkers at birth // Neonatology. 2017. Vol. 112. No. 1. P. 60−66. doi: 10.1159/000456063
- Irmak K., Tüten N., Karaoglu G. et al. Evaluation of cord blood creatine kinase (CK), cardiac troponin T (cTnT), N-terminal-pro-B-type natriuretic peptide (NT-proBNP), and s100B levels in nonreassuring foetal heart rate // J. Matern. Fetal Neonatal. Med. 2021. Vol. 34. No. 8. P. 1249−1254. doi: 10.1080/14767058.2019.1632285
- Trevisanuto D., Picco G., Golin R. et al. Cardiac troponin I in asphyxiated neonates // Biol. Neonate. 2006. Vol. 89. No. 3. P. 190–193. doi: 10.1159/000089795
- Stefanović V., Loukovaara M. Amniotic fluid cardiac troponin T in pathological pregnancies with evidence of chronic fetal hypoxia // Croat. Med. J. 2005. Vol. 46. No. 5. P. 801–807.
- Joseph S., Kumar S., Ahamed M.Z., Lakshmi S. Cardiac troponin-T as a marker of myocardial dysfunction in term neonates with perinatal asphyxia // Indian J. Pediatr. 2018. Vol. 85. No. 10. P. 877–884. doi: 10.1007/s12098-018-2667-3
- Asrani P., Aly A.M., Jiwani A.K. et al. High-sensitivity troponin T in preterm infants with a hemodynamically significant patent ductus arteriosus // J. Perinatol. 2018. Vol. 38. No. 11. P. 1483−1489. doi: 10.1038/s41372-018-0192-x
- Whitehead C., Teh W.T., Walker S.P. et al. Quantifying circulating hypoxia-induced RNA transcripts in maternal blood to determine in utero fetal hypoxic status // BMC Med. 2013. Vol. 11. No. 1. P. 1–12. doi: 10.1186/1741-7015-11-25
- Turrini I., Sorbi F., Ghizzoni V. et al. Severe fetal distress and placental damage might be associated with high troponin i (cTnI) levels in mothers // Am. J. Case Rep. 2018. Vol. 19. P. 194–198. doi: 10.12659/AJCR.906617
- Fleming S.M., O’Gorman T., Finn J. et al. Cardiac troponin I in pre-eclampsia and gestational hypertension // BJOG. 2000. Vol. 107. No. 11. P. 1417–1420. doi: 10.1111/j.1471-0528.2000.tb11658.x
- Joyal D., Leya F., Koh M. et al. Troponin I levels in patients with preeclampsia // Am. J. Med. 2007. Vol. 120. No. 9. P. 819. doi: 10.1016/j.amjmed.2006.05.068
- Whitehead C.L., Teh W.T., Walker S.P. et al. Circulating MicroRNAs in maternal blood as potential biomarkers for fetal hypoxia in-utero // PLoS One. 2013. Vol. 8. No. 11. P. e78487. doi: 10.1371/journal.pone.0078487
- Human reproductive and prenatal genetics. Ed. by P.C.K. Leung, J. Qiao. London: Academic Press; 2019.
- Looney A.M., Walsh B.H., Moloney G. et al. Downregulation of umbilical cord blood levels of mir-374a in neonatal hypoxic ischemic encephalopathy // J. Pediatr. 2015. Vol. 167. No. 2. P. 269–273. doi: 10.1016/j.jpeds.2015.04.060
- Shi J.-P., Li Y.-W., Sang G.-M. et al. Expression and significance of serum miRNA-21 expression in neonates with HIE // Pr. Prev. Med. 2018. Vol. 25. P. 655–658. doi: 10.3969/j.issn.1006-3110.2018.06.005
- Ponnusamy V., Yip P.K. The role of microRNAs in newborn brain development and hypoxic ischaemic encephalopathy // Neuropharmacology. 2019. Vol. 149. P. 55–65. doi: 10.1016/j.neuropharm.2018.11.041
- Tissot van Patot M.C., Murray A.J., Beckey V. et al. Human placental metabolic adaptation to chronic hypoxia, high altitude: hypoxic preconditioning // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2010. Vol. 298. No. 1. P. R166−172. doi: 10.1152/ajpregu.00383.2009
- Nuñez A., Benavente I., Blanco D. et al. Oxidative stress in perinatal asphyxia and hypoxic-ischaemic encephalopathy // An. Pediatr. (Barc). 2018. Vol. 88. No. 4. P. 228.e1−228.e9. doi: 10.1016/j.anpedi.2017.05.005
- Митрошина Е.В., Абогессименгане Б.Ж., Уразов М.Д. и др. Адаптационная роль глиального нейротрофического фактора при ишемии головного мозга // Современные технологии в медицине. 2017. Т. 9. № 1. С. 68–76.
- Turovsky E.A., Zinchenko V.P., Gaidin S.G., Turovskaya M.V. Calcium-binding proteins protect gabaergic neurons of the hippocampus from hypoxia and ischemia in vitro // Biol. Membr. 2017. Vol. 34. No. 5. P. 68–80. doi: 10.1134/S1990747818010105
- Coimbra-Costa D., Alva N., Duran M. et al. Oxidative stress and apoptosis after acute respiratory hypoxia and reoxygenation in rat brain // Redox. Biol. 2017. Vol. 12. P. 216–225. doi: 10.1016/j.redox.2017.02.014
- Grow J., Barks J.D. Pathogenesis of hypoxic-ischemic cerebral injury in the term infant: current concepts // Clin. Perinatol. 2002. Vol. 29. No. 4. P. 585–602. doi: 10.1016/s0095-5108(02)00059-3
- Острова И.В., Аврущенко М.Ш. Экспрессия мозгового нейротрофического фактора (BDNF) повышает устойчивость нейронов к гибели в постреанимационном периоде // Общая реаниматология. 2015. Т. 11. № 3. С. 45−53. doi: 10.15360/1813-9779-2015-3-45-53
- Ikeda T., Xia X.Y., Xia Y.X. et al. Glial cell line-derived neurotrophic factor protects against ischemia/hypoxia-induced brain injury in neonatal rat // Acta Neuropathol. 2000. Vol. 100. No. 2. P. 161–167. doi: 10.1007/s004019900162
- Морозова А.Ю., Арутюнян А.В., Милютина Ю.П. и др. Динамика изменения содержания нейротрофических факторов в структурах головного мозга крыс в раннем онтогенезе после пренатальной гипоксии // Нейрохимия. 2018. Т. 35. № 3. С. 256–263. doi: 10.1134/S1027813318030081
- Морозова А.Ю., Арутюнян, А.В., Милютина, Ю.П. и др. Влияние пренатальной гипоксии на содержание нейронспецифической енолазы в структурах головного мозга и сыворотке крови крыс в раннем онтогенезе // Нейрохимия. 2020. Т. 37. № 3. С. 233–239. doi: 10.31857/S1027813320030085
- Щелчкова Н.А., Кокая А.А., Беженарь В.Ф. и др. Роль мозгового и глиального нейротрофических факторов при хронической внутриутробной кислородной депривации плода // Современные технологии в медицине. 2020. Т. 12. № 1. С. 25–33. doi: 10.17691/stm2020.12.1.03
- Cheng H., Fu Y.-S., Guo J.-W. Ability of GDNF to diminish free radical production leads to protection against kainate-induced excitotoxicity in hippocampus // Hippocampus. 2004. Vol. 14. No. 1. P. 77–86. doi: 10.1002/hipo.10145
- Shang J., Deguchi K., Yamashita T. et al. Antiapoptotic and antiautophagic effects of glial cell line-derived neurotrophic factor and hepatocyte growth factor after transient middle cerebral artery occlusion in rats // J. Neurosci. Res. 2010. Vol. 88. No. 10. P. 2197–206. doi: 10.1002/jnr.22373
- Szydlowska K., Tymianski M. Calcium, ischemia and excitotoxicity // Cell Calcium. 2010. Vol. 47. No. 2. P. 122–129. doi: 10.1016/j.ceca.2010.01.003
- Ahn S.Y., Chang Y.S., Sung D.K. et al. Pivotal role of brain-derived neurotrophic factor secreted by mesenchymal stem cells in severe intraventricular hemorrhage in newborn rats // Cell. Transplant. 2017. Vol. 26. No. 1. P. 145–56. doi: 10.3727/096368916X692861
- Feng N., Hao G., Yang F. et al. Transplantation of mesenchymal stem cells promotes the functional recovery of the central nervous system following cerebral ischemia by inhibiting myelin-associated inhibitor expression and neural apoptosis // Exp. Ther. Med. 2016. Vol. 11. No. 5. P. 1595–1600. doi: 10.3892/etm.2016.3089
- Mitkari B., Nitzsche F., Kerkelä E. et al. Human bone marrow mesenchymal stem/stromal cells produce efficient localization in the brain and enhanced angiogenesis after intra-arterial delivery in rats with cerebral ischemia, but this is not translated to behavioral recovery // Behav. Brain Res. 2014. Vol. 259. P. 50–59. doi: 10.1016/j.bbr.2013.10.030
- Zhang R., Liu Y., Yan K. et al. Anti-inflammatory and immunomodulatory mechanisms of mesenchymal stem cell transplantation in experimental traumatic brain injury // J. Neuroinflammation. 2013. Vol. 10. P. 106. doi: 10.1186/1742-2094-10-106
- Lee N.M., Chae S.A., Lee H.J. Effects of neural stem cell media on hypoxic injury in rat hippocampal slice cultures // Brain Res. 2017. Vol. 1677. P. 20–25. doi: 10.1016/j.brainres.2017.09.018
- Liu X., Wang X., Li A., Jiao X. Effect of mesenchymal stem cell transplantation on brain-derived neurotrophic factor expression in rats with Tourette syndrome // Exp. Ther. Med. 2016. Vol. 11. No. 4. P. 1211–1216. doi: 10.3892/etm.2016.3059
- Zheng Z., Zhang L., Qu Y. et al. Mesenchymal stem cells protect against hypoxia-ischemia brain damage by enhancing autophagy through brain derived neurotrophic factor/mammalin target of rapamycin signaling pathway // Stem. Cells. 2018. Vol. 36. No. 7. P. 1109–1121. doi: 10.1002/stem.2808
- Sheng S., Huang J., Ren Y. et al. Neuroprotection against hypoxic/ischemic injury: δ-opioid receptors and BDNF-TrkB pathway // Cell. Physiol. Biochem. 2018. Vol. 47. No. 1. P. 302–315.
- Ведунова М.В., Сахарнова Т.А., Митрошина Е.В. и др. Антигипоксические и нейропротективные свойства нейротрофических факторов BDNF и GDNF при гипоксии in vitro и in vivo // Современные технологии в медицине. 2014. Т. 6. № 4. С. 48−47.
- Duarte E.P., Curcio M., Canzoniero L.M., Duarte C.B. Neuroprotection by GDNF in the ischemic brain // Growth Factors. 2012. Vol. 30. No. 4. P. 242–257. doi: 10.3109/08977194.2012.691478
- Шишкина Т.В. Антигипоксическое и нейропротекторное действие глиального нейротрофического фактора при моделировании факторов ишемии: автореф. … дис. канд. биол. наук. Санкт-Петербург, 2017 [дата обращения: 22.08.2021]. Доступ по ссылке: http://www.dslib.net/fiziologia/antigipoksicheskoe-i-nejroprotektornoe-dejstvie-glialnogo-nejrotroficheskogo.html
- Shishkina T.V., Mishchenko T.A., Mitroshina E.V. et al. Glial cell line-derived neurotrophic factor (GDNF) counteracts hypoxic damage to hippocampal neural network function in vitro // Brain Res. 2018. Vol. 1678. P. 310–321. doi: 10.1016/j.brainres.2017.10.023
- Щелчкова Н.А., Кокая А.А., Ведунова М.В. Роль нейротрофических факторов при гипоксии новорожденных // VI Балтийский конгресс по детской неврологии: сборник тезисов / под ред. В.И. Гузева. Санкт-Петербург, 2016. С. 409–410.
- Голосная Г.С., Котий С.А. Васкулоэндотелиальный фактор роста (VEGF) и нейротрофический фактор головного мозга (BDNF) у новорожденных с перинатальными гипоксическими поражениями ЦНС // Вопросы современной педиатрии. 2006. Т. 5. № 1. С. 149.
- Морозова А.Ю., Милютина Ю.П., Ковальчук-Ковалевская О.В. и др. Содержание нейронспецифической енолазы и мозгового нейротрофического фактора в пуповинной крови доношенных новорожденных с задержкой внутриутробного развития // Журнал акушерства и женских болезней. 2019. Т. 68. № 1. C. 29−36. doi: 10.17816/JOWD68129-36
- Vedunova M.V., Mishchenko T.A., Mitroshina E.V., Mukhina I.V. TrkB-mediated neuroprotective and antihypoxic properties of brain-derived neurotrophic factor // Oxid. Med. Cell Longev. 2015. Vol. 2015. P. 453901. doi: 10.1155/2015/453901
Дополнительные файлы
