Ультразвуковые и морфологические особенности плаценты при нарушениях роста плода у беременных с прегестационным сахарным диабетом

Обложка


Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. Нарушения темпов роста плода характерны для беременности, осложненной сахарным диабетом. Выявление связи между структурно-функциональными характеристиками плаценты и нарушениями роста плода важно для понимания механизмов формирования этих нарушений и возможности их прогнозирования.

Цель — провести сравнительный анализ морфологических особенностей строения плацент и их ультразвуковых маркеров при нарушениях роста плода у беременных с прегестационным сахарным диабетом.

Материалы и методы. В одноцентровом когортном исследовании проанализированы результаты морфологического исследования 1200 плацент, в том числе при нарушениях роста плода у беременных с прегестационным сахарным диабетом, а также данные ультразвуковой пренатальной фетометрии, плацентометрии и допплерометрии. Исследуемые плаценты взвешивали, оценивали их размеры, котиледонное строение. Гистологическое строение плаценты диагностировали с использованием стандартизированных критериев. Статистический анализ результатов проводили с использованием программы SPSS 23.0.

Результаты. В группы сравнения вошли пациентки с прегестационным сахарным диабетом 1-го и 2-го типов, нарушениями темпов роста (109 женщин с задержкой роста плода, 118 — с маловесным для гестационного срока плодом, 352 — с крупным для гестационного срока плодом) и без нарушений темпов роста плода (n=394). Контрольную группу (n=157) составили беременные без особенностей углеводного обмена и темпов роста плода. В плацентах беременных с прегестационным сахарным диабетом, вне зависимости от нарушений темпов роста плода, был выявлен ряд отличительных особенностей: несоответствие строения плацент сроку гестации с преобладанием диссоциированного созревания ворсин, наличие циркуляторных нарушений различной степени, наличие воспалительных изменений, отложение солей кальция и развитие хронической плацентарной недостаточности. При прегестационном сахарном диабете плаценты плодов с макросомическим и нормальным ростом показали схожие особенности морфологической структуры. При задержке роста плода в строении плацент преобладали признаки патологической незрелости, преждевременного и аномального созревания ворсин, чаще встречались склероз стромы ворсин, инфаркты плаценты и циркуляторные нарушения. Обнаружена достоверная связь нарушений гемодинамики II и III степеней при допплерометрии с особенностями созревания и строения ворсин и наличием плацентарной недостаточности. Критические нарушения кровотока в артерии пуповины были ассоциированы с выраженными циркуляторными нарушениями в плацентах.

Заключение. При анализе морфофункциональных и сонографических характеристик плаценты при прегестационном сахарном диабете и нарушениях роста плода выявлены изменения, связанные как с нарушениями углеводного обмена, так и с влиянием сопутствующих состояний. Некоторые особенности морфологии плаценты при прегестационном сахарном диабете, по-видимому, обусловлены морфофункциональной адаптацией. Выявлена связь нарушений плодово-плацентарной гемодинамики при допплерометрии с гистологическим строением плацент.

Об авторах

Елизавета Валерьевна Шелаева

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Автор, ответственный за переписку.
Email: eshelaeva@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-9608-467X
SPIN-код: 7440-0555

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Екатерина Вадимовна Коптеева

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: ekaterina_kopteeva@bk.ru
ORCID iD: 0000-0002-9328-8909
SPIN-код: 9421-6407

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Елена Николаевна Алексеенкова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: ealekseva@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0642-7924
SPIN-код: 3976-2540

MD

Россия, Санкт-Петербург

Станислава Владимировна Нагорнева

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: stanislava_n@bk.ru
ORCID iD: 0000-0003-0402-5304
SPIN-код: 5109-7613

канд. мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Татьяна Георгиевна Траль

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: ttg.tral@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-8948-4811
SPIN-код: 1244-9631

д-р мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Гулрухсор Хайбуллоевна Толибова

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: gulyatolibova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6216-6220
SPIN-код: 7544-4825

д-р мед. наук

Россия, Санкт-Петербург

Роман Викторович Капустин

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: kapustin.roman@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-2783-3032
SPIN-код: 7300-6260

д-р мед наук

Россия, Санкт-Петербург

Игорь Юрьевич Коган

Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта

Email: ikogan@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7351-6900
SPIN-код: 6572-6450

д-р мед. наук, профессор, чл.-корр. РАН

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Maltepe E, Fisher SJ. Placenta: the forgotten organ. Annu Rev Cell Dev Biol. 2015;31:523–552. EDN: VYEYAB doi: 10.1146/annurev-cellbio-100814-125620
  2. Tossetta G. Special issue “Physiology and pathophysiology of placenta 2.0”. Int J Mol Sci. 2024;25(9):4586. EDN: FACGRW doi: 10.3390/ijms25094586
  3. Staud F, Karahoda R. Trophoblast: the central unit of fetal growth, protection and programming. Int J Biochem Cell Biol. 2018;105:35–40. doi: 10.1016/j.biocel.2018.09.016
  4. Fowden AL, Camm EJ, Sferruzzi-Perri AN. Effects of maternal obesity on placental phenotype. Curr Vasc Pharmacol. 2021;19(2):113–131. EDN: NBIBPG doi: 10.2174/1570161118666200513115316
  5. Wang H, Li N, Chivese T, Werfalli M, et al.; IDF Diabetes Atlas Committee Hyperglycaemia in Pregnancy Special Interest Group. IDF diabetes atlas: estimation of global and regional gestational diabetes mellitus prevalence for 2021 by International Association of Diabetes in Pregnancy Study Group’s criteria. Diabetes Res Clin Pract. 2022;183:109050. EDN: EFSTRM doi: 10.1016/j.diabres.2021.109050
  6. Ogurtsova K, da Rocha Fernandes JD, Huang Y, et al. IDF diabetes atlas: global estimates for the prevalence of diabetes for 2015 and 2040. Diabetes Res Clin Pract. 2017;128:40–50. doi: 10.1016/j.diabres.2017.03.024
  7. Calvo MJ, Parra H, Santeliz R, et al. The placental role in gestational diabetes mellitus: a molecular perspective. touchREV Endocrinol. 2024;20(1):10–18. EDN: ZGSOFG doi: 10.17925/EE.2024.20.1.5
  8. Huynh J, Dawson D, Roberts D, et al. A systematic review of placental pathology in maternal diabetes mellitus. Placenta. 2015;36(2):101–114. EDN: URLNAN doi: 10.1016/j.placenta.2014.11.021
  9. Tral TG, Tolibova GKh, Musina EV, et al. Molecular and morphological peculiarities of chronic placental insufficiency formation caused by different types of diabetes mellitus. Diabetes mellitus. 2020;23(2):185–191. EDN: WMVKAO doi: 10.14341/DM10228
  10. Kapustin RV, Kopteyeva EV, Tral TG, et al. Placental morphology in different types of diabetes mellitus. Journal of Obstetrics and Women’s Diseases. 2021;70(2):13–26. EDN: FBLSJP doi: 10.17816/JOWD57149
  11. Fetal Growth Restriction: ACOG Practice Bulletin, Number 227. Obstet Gynecol. 2021;137(2):e16–e28. EDN: KIVYYU doi: 10.1097/AOG.0000000000004251
  12. Pretscher J, Kehl S, Stelzl P, et al. Influence of sonographic fetal weight estimation inaccuracies in macrosomia on perinatal outcome. Ultraschall Med. 2022;43(5):e56–e64. EDN: QUXAYJ doi: 10.1055/a-1205-0191
  13. Gordijn SJ, Beune IM, Thilaganathan B, et al. Consensus definition of fetal growth restriction: a Delphi procedure. Ultrasound Obstet Gynecol. 2016;48(3):333–339. doi: 10.1002/uog.15884
  14. Lees CC, Stampalija T, Baschat AA, et al. ISUOG Practice Guidelines: diagnosis and management of small-for-gestational-age fetus and fetal growth restriction. Ultrasound Obstet Gynecol. 2020;56(2):298–312. EDN: VEEENR doi: 10.1002/uog.22134
  15. Russian Society of Obstetricians and Gynecologists. Insufficient fetal growth requiring maternal medical care (fetal growth restriction). Ministry of Health of the Russian Federation; 2022. (In Russ.) [cited 2025 May 22]. Available from: https://roagportal.ru/recommendations_obstetrics#pdfcontent_17
  16. Damhuis SE, Ganzevoort W, Gordijn SJ. Abnormal fetal growth: small for gestational age, fetal growth restriction, large for gestational age: definitions and epidemiology. Obstet Gynecol Clin North Am. 2021;48(2):267–279. EDN: INYJIU doi: 10.1016/j.ogc.2021.02.002.
  17. Papageorghiou AT, Kennedy SH, Salomon LJ, et al. The INTERGROWTH-21st fetal growth standards: toward the global integration of pregnancy and pediatric care. Am J Obstet Gynecol. 2018; 218(2S):S630–S640. doi: 10.1016/j.ajog.2018.01.011
  18. Khong TY, Mooney EE, Ariel I, et al. Sampling and definitions of placental lesions: amsterdam placental workshop group consensus statement. Arch Pathol Lab Med. 2016;140(7):698–713. doi: 10.5858/arpa.2015-0225-CC
  19. Glukhovets BI, Glukhovets NG. Pathology of the placenta. Saint Petersburg: Grail; 2002. 448 p. (In Russ.)
  20. Schiffer V, van Haren A, De Cubber L, et al. Ultrasound evaluation of the placenta in healthy and placental syndrome pregnancies: a systematic review. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2021;262:45–56. EDN: GPRXKI doi: 10.1016/j.ejogrb.2021.04.042
  21. Redline RW, Boyd TK, Roberts DJ, editors. Placental and gestational pathology. Cambridge University Press; 2018. doi: 10.1017/9781316848616
  22. Strebeck R, Jensen B, Magann EF. Thick placenta in pregnancy: a review. Obstet Gynecol Surv. 2022;77(9):547–557. EDN: BXYXVN doi: 10.1097/OGX.000000000000105
  23. Sun X, Shen J, Wang L. Insights into the role of placenta thickness as a predictive marker of perinatal outcome. J Int Med Res. 2021;49(2):300060521990969. EDN: HRYAGG doi: 10.1177/0300060521990969
  24. Wan Masliza WD, Bajuri MY, Hassan MR, et al. Sonographically abnormal placenta: an association with an increased risk poor pregnancy outcomes. Clin Ter. 2017;168(5):e283–e289. doi: 10.7417/T.2017.2021
  25. Sharami SH, Milani F, Fallah Arzpeyma S, et al. The relationship between placental thickness and gestational age in pregnant women: a cross-sectional study. Health Sci Rep. 2023;6(5):e1228. doi: 10.1002/hsr2.1228
  26. Lee AJ, Bethune M, Hiscock RJ. Placental thickness in the second trimester: a pilot study to determine the normal range. J Ultrasound Med. 2012;31:213–218. doi: 10.7863/jum.2012.31.2.213
  27. Berceanu C, Tetileanu AV, Ofiţeru AM, et al. Morphological and ultrasound findings in the placenta of diabetic pregnancy. Rom J Morphol Embryol. 2018;59(1):175–186.
  28. Pásztor N, Sikovanyecz J, Keresztúri A, et al. Evaluation of the relation between placental weight and placental weight to foetal weight ratio and the causes of stillbirth: a retrospective comparative study. J Obstet Gynaecol. 2018;38(1):74–80. doi: 10.1080/01443615.2017.1349084
  29. Hayward CE, Lean S, Sibley CP, et al. Placental adaptation: what can we learn from birthweight: placental weight ratio? Front Physiol. 2016;7:28. doi: 10.3389/fphys.2016.00028
  30. Gloria-Bottini F, Neri A, Coppeta L, et al. Correlation between birth weight and placental weight in healthy and diabetic puerperae. Taiwan J Obstet Gynecol. 2016;55(5):697–699. doi: 10.1016/j.tjog.2015.03.013
  31. Carrasco-Wong I, Moller A, Giachini FR, et al. Placental structure in gestational diabetes mellitus. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 2020;1866(2):165535. EDN: XPXHTX doi: 10.1016/j.bbadis.2019.165535
  32. Torres-Torres J, Monroy-Muñoz IE, Perez-Duran J, et al. Cellular and molecular pathophysiology of gestational diabetes. Int J Mol Sci. 2024;25(21):11641. doi: 10.3390/ijms252111641
  33. Dall’Asta A, Melito C, Morganelli G, et al. Determinants of placental insufficiency in fetal growth restriction. Ultrasound Obstet Gynecol. 2023;61(2):152–157. EDN: UDDDGR doi: 10.1002/uog.26111
  34. Huynh J, Yamada J, Beauharnais C, et al. Type 1, type 2 and gestational diabetes mellitus differentially impact placental pathologic characteristics of uteroplacental malperfusion. Placenta. 2015;36(10):1161–1166. EDN: VFAGZH doi: 10.1016/j.placenta.2015.08.004
  35. Pietryga M, Biczysko W, Wender-Ozegowska E, et al. Ultrastructural examination of the placenta in pregnancy complicated by diabetes mellitus. Ginekol Pol. 2004;75(2):111–118. (In Polish)
  36. Sun C, Groom KM, Oyston C, et al. The placenta in fetal growth restriction: What is going wrong? Placenta. 2020;96:10–18. EDN: JKXJYK doi: 10.1016/j.placenta.2020.05.003
  37. Fasoulakis Z, Koutras A, Antsaklis P, et al. Intrauterine growth restriction due to gestational diabetes: from pathophysiology to diagnosis and management. Medicina (Kaunas). 2023;59(6):1139. EDN: GJHRZX doi: 10.3390/medicina59061139
  38. Dumolt JH, Powell TL, Jansson T. Placental function and the development of fetal overgrowth and fetal growth restriction. Obstet Gynecol Clin North Am. 2021;48(2):247–266. EDN: XEVUUH doi: 10.1016/j.ogc.2021.02.001
  39. Starikov R, Has P, Wu R, et al. Small-for-gestational age placentas associate with an increased risk of adverse outcomes in pregnancies complicated by either type I or type II pre-gestational diabetes mellitus. J Matern Fetal Neonatal Med. 2022;35(9):1677–1682. EDN: JREGNU doi: 10.1080/14767058.2020.1767572
  40. Aldahmash WM, Alwasel SH, Aljerian K. Gestational diabetes mellitus induces placental vasculopathies. Environ Sci Pollut Res Int. 2022;29(13):19860–19868. EDN: GYZYIN doi: 10.1007/s11356-021-17267-y
  41. Vafaei H, Karimi Z, Akbarzadeh-Jahromi M, et al. Association of placental chorangiosis with pregnancy complication and prenatal outcome: a case-control study. BMC Pregnancy Childbirth. 2021;21(1):99. EDN: SGGWJZ doi: 10.1186/s12884-021-03576-0
  42. Stanek J. Placental recent/on-going foetal vascular malperfusion with endothelial fragmentation is diagnostically equivalent to established distal villous lesions of foetal vascular malperfusion. Pol J Pathol. 2022;73(3):198–207. EDN: XERAXG doi: 10.5114/pjp.2022.124487
  43. Rossi R, Scillitani G, Vimercati A, et al. Diabetic placenta: ultrastructure and morphometry of the term villi. Anal Quant Cytopathol Histpathol. 2012;34(5):239–247. EDN: RKRULJ
  44. Ehlers E, Talton OO, Schust DJ, et al. Placental structural abnormalities in gestational diabetes and when they develop: a scoping review. Placenta. 2021;116:58–66. EDN: CANQOU doi: 10.1016/j.placenta.2021.04.005
  45. Thunbo MØ, Sinding M, Bogaard P, et al. Postpartum placental CT angiography in normal pregnancies and in those complicated by diabetes mellitus. Placenta. 2018;69:20–25. doi: 10.1016/j.placenta.2018.06.309
  46. Liang X, Zhang J, Wang Y, et al. Comparative study of microvascular structural changes in the gestational diabetic placenta. Diab Vasc Dis Res. 2023;20(3):14791641231173627. EDN: ENEDBJ doi: 10.1177/14791641231173627
  47. Jaiman S, Romero R, Pacora P, et al. Disorders of placental villous maturation in fetal death. J Perinat Med. 2020. EDN: EPTYCL doi: 10.1515/jpm-2020-0030
  48. Higgins M, Felle P, Mooney EE, et al. Stereology of the placenta in type 1 and type 2 diabetes. Placenta. 2011;32(8):564–569. doi: 10.1016/j.placenta.2011.04.015
  49. Augustine G, Pulikkathodi M, SR, TK J. A study of placental histological changes in gestational diabetes mellitus on account of fetal hypoxia. Int J Med Sci Public Health. 2016;5(12):2457–2460. doi: 10.5455/ijmsph.2016.29042016494
  50. Memon S, Goswami P, Lata H. Gross and histological alteration in the placenta of mothers suffering from gestational diabetes. J Liaquat Univ Med Hea. Sci. 2015;14(1):16–20.
  51. Ohmaru-Nakanishi T, Asanoma K, Fujikawa M, et al. Fibrosis in preeclamptic placentas is associated with stromal fibroblasts activated by the transforming growth factor-β1 signaling pathway. Am J Pathol. 2018;188(3):683–695. EDN: YENLPN doi: 10.1016/j.ajpath.2017.11.008
  52. Verma R, Mishra SK, Jagat M. Cellular changes in the placenta in pregnancies complicated with diabetes. Int. J Morphol. 2010;28(1):259–264. doi: 10.4067/S0717-95022010000100038
  53. Mirza FG, Ghulmiyyah LM, Tamim H, et al. To ignore or not to ignore placental calcifications on prenatal ultrasound: a systematic review and meta-analysis. J Matern Fetal Neonatal Med. 2018;31(6):797–804. doi: 10.1080/14767058.2017.1295443
  54. Chen KH, Chen LR, Lee YH. The role of preterm placental calcification in high-risk pregnancy as a predictor of poor uteroplacental blood flow and adverse pregnancy outcome. Ultrasound Med Biol. 2012;38(6):1011–1018. EDN: PINKXF doi: 10.1016/j.ultrasmedbio.2012.02.004
  55. Moran M, Higgins M, Zombori G, et al. Computerized assessment of placental calcification post-ultrasound: a novel software tool. Ultrasound Obstet Gynecol. 2013;41(5):545–549. doi: 10.1002/uog.12278
  56. Lei B, Yao Y, Chen S, et al. Discriminative learning for automatic staging of placental maturity via multi-layer fisher vector. Sci Rep. 2015;5:12818. doi: 10.1038/srep12818
  57. Paiker M, Khan K, Mishra D, et al. Morphological, morphometric, and histological evaluation of the placenta in cases of intrauterine fetal death. Cureus. 2024;16(6):e62871. doi: 10.7759/cureus.62871
  58. Goldstein JA, Nateghi R, Irmakci I, et al. Machine learning classification of placental villous infarction, perivillous fibrin deposition, and intervillous thrombus. Placenta. 2023;135:43–50. EDN: BLCXHC doi: 10.1016/j.placenta.2023.03.003
  59. Beauharnais CC, Roberts DJ, Wexler DJ. High rate of placental infarcts in type 2 compared with type 1 diabetes. J Clin Endocrinol Metab. 2012;97(7):E1160–E1164. doi: 10.1210/jc.2011-3326
  60. Aurioles-Garibay A, Hernandez-Andrade E, Romero R, et al. Prenatal diagnosis of a placental infarction hematoma associated with fetal growth restriction, preeclampsia and fetal death: clinicopathological correlation. Fetal Diagn Ther. 2014;36(2):154–161. doi: 10.1159/000357841
  61. Rais R, Starikov R, Robert W, et al. Clinicopathological correlation of large-for-gestational age placenta in pregnancies with pregestational diabetes. Pathol Res Pract. 2019;215(3):405–409. doi: 10.1016/j.prp.2018.12.029
  62. Istrate-Ofiţeru AM, Berceanu C, Berceanu S, et al. The influence of gestational diabetes mellitus (GDM) and gestational hypertension (GH) on placental morphological changes. Rom J Morphol Embryol. 2020;61(2):371–384. EDN: EKSKRZ doi: 10.47162/RJME.61.2.07
  63. Rahman A, Zhou Y-Q, Yee Y, et al. Ultrasound detection of altered placental vascular morphology based on hemodynamic pulse wave reflection. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2017;312:H1021e9. doi: 10.1152/ajpheart.00791.2016
  64. Mahalinga G, Rajasekhar KV, Venkateshwar Reddy M, et al. Morphometric Analysis of placenta and fetal doppler indices in normal and high-risk pregnancies. Cureus. 2024;16(6):e61663. EDN: UTFKNC doi: 10.7759/cureus.61663
  65. Audette MC, Kingdom JC. Screening for fetal growth restriction and placental insufficiency. Semin Fetal Neonatal Med. 2018;23(2):119–125. EDN: WAFXMP doi: 10.1016/j.siny.2017.11.004
  66. Altorjay ÁT, Surányi A, Nyári T, et al. Use of placental vascularization indices and uterine artery peak systolic velocity in early detection of pregnancies complicated by gestational diabetes, chronic or gestational hypertension, and preeclampsia at risk. Croat Med J. 2017;58(2):161–169. doi: 10.3325/cmj.2017.58.161
  67. Ashwal E, Ali-Gami J, Aviram A, et al. Contribution of second trimester sonographic placental morphology to uterine artery Doppler in the prediction of placenta-mediated pregnancy complications. J Clin Med. 2022;11(22):6759. EDN: HNGAIQ doi: 10.3390/jcm11226759
  68. Bochkareva LA, Nedosugova LV, Petunina NA, et al. Some mechanisms of inflammation development in type 2 diabetes mellitus. Diabetes mellitus. 2021;24(4):334–341. (In Russ.) doi: 10.14341/DM12746
  69. Pan X, Jin X, Wang J, et al. Placenta inflammation is closely associated with gestational diabetes mellitus. Am J Transl Res. 2021;13(5):4068–4079.
  70. Tauber Z, Burianova A, Koubova K, et al. The interplay of inflammation and placenta in maternal diabetes: insights into Hofbauer cell expression patterns. Front Immunol. 2024;15:1386528. doi: 10.3389/fimmu.2024.1386528
  71. Chittezhath M, Gunaseelan D, Zheng X, et al. Islet macrophages are associated with islet vascular remodeling and compensatory hyperinsulinemia during diabetes. Am J Physiol Metab. 2019;317(6):E1108–E1120. doi: 10.1152/ajpendo.00248.2019
  72. Musa E, Salazar-Petres E, Arowolo A, et al. Obesity and gestational diabetes independently and collectively induce specific effects on placental structure, inflammation and endocrine function in a cohort of South African women. J Physiol. 2023;601(7):1287–1306. doi: 10.1113/JP284139

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Плацентомегалия: a — ультразвуковая плацентометрия, толщина плаценты 65 мм; b — макроскопически увеличение размеров плаценты, масса плаценты 770 г; с — микроскопически хроническая плацентарная недостаточность с преобладанием промежуточных незрелых ворсин, гиперваскуляризация (хорангиоз), терминальные ворсины с увеличенным количеством капилляров до 7–11 (при норме 3–4 капилляра), застойное полнокровие. Клинические данные: беременность 38 нед., сахарный диабет 2-го типа, макросомия плода, масса новорожденного 4250 г.

Скачать (287KB)
3. Рис. 2. Гипоплазия плаценты: a — ультразвуковая плацентометрия, толщина плаценты 23 мм; b — макроскопически уменьшение размеров плаценты, масса плаценты 243 г; с — микроскопически гипопластическая форма хронической плацентарной недостаточности, уменьшение размера терминальных ворсин и количества капилляров, преобладание незрелых ворсин. Клинические данные: беременность 38 нед., сахарный диабет 2-го типа, задержка роста плода, масса новорожденного 2430 г.

Скачать (188KB)
4. Рис. 3. Краевой инфаркт плаценты: a — сонография, гиперэхогенные аваскулярные структуры по периферии плаценты небольших размеров, плацентомегалия, отсутствие нарушений гемодинамики при допплерометрии; b — макроскопически зона инфаркта имеет вид массы серо-желтого цвета, треугольной формы; с — микроскопически зона инфаркта представлена скоплением в межворсинчатом пространстве фибриноида с замурованными в нем ворсинами хориона со слабо выраженным кровотоком или без него. Клинические данные: беременность 38 нед., сахарный диабет 1-го типа, макросомия плода, масса новорожденного 4300 г.

Скачать (419KB)
5. Рис. 4. Инфаркт плаценты в парацентральной зоне: a — сонография, гипоплазия плаценты, гиперэхогенные аваскулярные структуры, поражение плацентарной ткани до 30%, критические нарушения гемодинамики при допплерометрии; b — макроскопически в парацентральной зоне определяется масса серо-желтого цвета, округой формы; с — микроскопически ворсины хориона находятся в окружении фибриноидных масс, дистрофические изменения ворсин, уплотнение стромы ворсин, ателектаз межворсинчатого пространства, спазм артерий. Клинические данные: беременность 35 нед., сахарный диабет 1-го типа, задержка роста плода, масса новорожденного 1980 г.

Скачать (349KB)

© Эко-Вектор, 2025



Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».