New applications of oocyte vitrification in assisted reproductive technology

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

Vitrification of oocytes is one of the most promising and rapidly developing areas of embryology and ART. Oocyte vitrification technology allows for cryopreservation of female gametes for the long term with the possibility of further use in IVF/ICSI cycles. The use of vitrification to extend the capabilities of ART programs, and high survival rates of oocytes after vitrification and the percentage of normal fertilization will contribute to further increase efficiency and improve IVF programs in the future.

About the authors

Viktoriya Vladislavovna Gabarayeva

I. I. Mechnikov North-Western State Medical University, Ministry of Public Health of Russian Federation

Email: reprodyktolog87@mail.ru
postgraduate, Department of women's reproductive health

Alla Stanislavovna Kalugina

I. I. Mechnikov North-Western State Medical University, Ministry of Public Health of Russian Federation

Email: Kalugina-AS@avaclinic.ru
M. D., Lecture at the Department of women's reproductive health

Yuliya Kazimirovna Kamenetskaya

AVA-PETER clinic

Email: Kamenetskaya-YK@avaclinic.ru
biologist of embryology department reproductive medicine

References

  1. Джамбор В. В. Усовершенствование программы экстракорпорального оплодотворения человека с помощью применения метода витрификации. Автореф. дис… канд. биол. наук. М.; 2005.
  2. Калугина А. С., Кравчук Я. Н., Шлыкова С. А. и др. Влияние качества полученных эмбрионов на исходы программ криоконсервации при сравнении методов медленного замораживания и витрификации в циклах ВРТ. Журнал акушерства и женских болезней. 2012; LXI (4): 48-53.
  3. Носкова Ю. О., Кривохарченко И. С., Захарова Е. Е., Залетова В. В. Мультипротекторная витрификация ооцитов. Создание и использование криобанка ооцитов доноров: опыт Клиники МАМА. Проблемы репродукции. 2011; № 6: 46-50.
  4. Смирнова А. А., Тур-Каспа И. Криоконсервация ооцитов человека: клинические исходы. Проблемы репродукции 2005; № 1: 14-8.
  5. Alikani M., Cohen J. Human oocyte and embryo cryopreservation. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 1990; 5 (2): 714-7.
  6. Almodin C. G., Minguetti-Camara V. C., Paixao C. L., Pereira P. C. Embryo development and gestation using fresh and vitrified oocytes. Hum. Reprod. 2010; 25: 1192-8
  7. Antinori M., Licata E., Dani G., Cerusico F., Versaci C., Antinori S. Cryotop vitrification of human oocytes results in high survival rate and healthy deliveries. Reprod Biomed Online. 2007; 14: 72-9.
  8. Balaban B. A randomized controlled study of human day 3 embryo cryopreservation by slow freezing or vitrification: vitrification is associated with higher survival, metabolish and blastocyst formation. Hum. Reprod. 2008; 23 (9): 1976-82.
  9. Bernard A., Fuller B. J. Cryopreservation of human oocytes: a review of current problems and perspectives. Hum. Reprod. Update. 1996; 3 (2): 193-207.
  10. Boiso I., Marti M., Santalo J. et al. A confocal microscopy analysis of the spindle and chromosome configurations of human oocytes cryopreserved at the germinal vesicle and metaphase II stage. Hum. Reprod. 2002; 17: 1885-91.
  11. Chen C. Pregnancy after human oocyte cryopreservation. Lancet. 1986; 1: 884-6.
  12. Chen C., Li W. Diffusion controlled ice growth with soft impingement inside biological cells during freezing. Cryo Letters 2008; 5 (29): 371-81.
  13. Chian R-C., Huang J. Y. J., Gilbert L., Son W-Y., Holzer H., Cui S. J. et al. Obstetric outcomes following vitrification of in vitro and in vivo matured oocytes. Fertil. Steril. 2009; 91: 2391-8.
  14. Cobo A. Oocyte vitrification: a useful perspective in assisted. Unit at IVI. Valencia; 2011.
  15. Cobo A., Bellver J., de los Santos M. J., Remohi J. Vireal screening of spent culture media and liquid nitrogen samples of oocytes and embryos from hepatitis B, hepatitis C, and human immunodeficiency virus chronically infected women undergoing in vitro fertilization cycels. Fertil. Steril. 2012; 97: 74-8.
  16. Cobo A., Castello D., Weiss B., Vivier C., de la Macorra A., Kramp F. Higest liquid nitrogen quality for vitrification process: micro bacteriological filtration of LN2. In book: 16th World Congress on In vitro fertilization; 6th World Congress on In Vitro Maturation.Tokyo; 2011: 286.
  17. Cobo A., Domingo J., Perez S., Crespo J., Remohi J., Pellicer A. Vitrification: an effective new approach to oocyte banking andpreserving fertility in cancer patients. Clin. Transl. Oncol. 2008; 10: 268-73.
  18. Cobo A., Meseguer M., Remohi J., Pellicer A. Use of cryo-banked oocytes in an ovum donation programme: a prospective, randomized, controlled, clinical trial. Hum. Reprod. 2010; 25: 2239-46.
  19. Cobo A., Remohi J., Chang C. C., Nagy Z. P. Oocyte cryopreservation for donor egg banking. Reprod. Biomed. Online. 2011; 23: 341-6.
  20. Cobo A., Romero J. L., Perz S., de los Santos M. J., Meseguer M., Remohi J. Storage of human oocytes in the vapor phase of nitrogen. Fertil. Steril. 2010; 94: 1903-7.
  21. Cobo A., Rubio C., Gerli S. et al. Use of fluorescence in situ hybridization to assess the chromosomal status of embryos obtained from cryopreserved oocytes. Fertil. Steril. 2001; 75: 354-60.
  22. Cobo A., Diaz C. Clinical application of oocyte vitrification: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Fertil Steril 2011;96:277-85.
  23. Coticchio G., Bromfield J. J., Sciajno R. et al. Vitrification ma increase the rate of chromosome misalignment in the metaphase I spindle of human mature oocytes. Reprod. Biomed. Online. 2009; 19 (Suppl. 3): 29-34.
  24. Gook D., Osborn S., Johnston W. Cryopreservation of mouse and human oocytes using 1,2-propanediol and the configuration of meiotic spindle. Hum. Reprod. 1993; 8: 1101-9.
  25. Isachenko E. F., Nayudu P. L. Vitrification of mouse germinal vesicle oocytes: effect of treatment temperature and egg yolk on chromatin and spindle normality and cumulus integrity. Hum. Reprod. 1999; 2 (14): 400-8.
  26. Jain J. et al. Oocyte cryopreservation. Fertil. Steril. 2005; 86 (4): 1037-46.
  27. Jelinkova L. Twin pregnancy after vitrification of 2-pronuclei human emryos. Fertil.Steril. 2002; 77: 412-4.
  28. Karlsson J. O. A theoretical model of intracellular devitrification. Cryobiology. 2001; 42: 154-69.
  29. Keskintepe L., Agca Y., Sher G., Keskkintepe M., Maasarani G. High survival rate of metaphase 2 human oocytes after first polar body biopsy and vitrification: determing the effect of previtrifacation conditions. Fertil. Steril. 2009; 92: 1706-15.
  30. Kim T. J., Hong S. W. Successful live birth from vitrified oocytes after 5 years of cryopreservation. Assist. Reprod. Genet. 2011; 28: 73-76.
  31. Kuleshova L., Gianaroli L., Magli C., Ferraretti A., Trounson A. Birth following vitrification of a small number of human oocytes. Hum. Reprod. 1999; 14: 3077-9.
  32. Kuleshova L. L., MacFlare D. R., Trouson A. O., Shaw J. M. Sugars exert a major influence on the vitrification properties of ethylene glycol-based solutions and have low toxicity to embryo cryopreservation. Cryobiology. 1999; 38: 119-30.
  33. Kuwayama M. et al. Comparison of open and closed methids for vitrification of human embryos and the elimination of potential contamination. Hum. Reprod. 2011; 4 (1): 23-8.
  34. Kuwayama M., Vajta G., Kato O., Leibo S. P. Highly efficient vitrification method for cryopreservation of human oocytes. Reprod. Biomed. Online. 2005; 3 (11): 300-8.
  35. Liebermann J., Nawroth F., Isachenko E., Rahimi G., Tucker M. J. Potential importance of vitrification in reproductive medicine. Biol. Reprod. 2002; 67: 1671-80.
  36. Lucena E., Bernal D. P., Lucena C., Rojas A., Moran A. Succesful ongoing pregnancies after vitrification of oocytes. Fertil. Steril. 2006; 85: 108-11.
  37. Mandelbaum J., Anastasiou O., Levy R. et al. Effects of cryopreservation on the meiotic spindle of human oocytes. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2004; 113 (Suppl.): S17-S23.
  38. Mandelbaum J., Junca A. M., Plachot M. et al. Cryopreservation of human embryos and oocytes. Hum. Reprod. 1988; 1 (3): 117-9.
  39. Maureen J. Wood.Vitrification of oocytes. Obstetrician Gynaecologist. 2012; 14: 45-9.
  40. Nagy Z. P., Chang C. C., Shapiro D. B., Bernal D. P., Elsner C. W., Mitchell-Leef D. et al. Clinical evaluion of the efficiency of an oocyte donation program using egg cryo-banking. Fertil. Steril 2009; 92: 520-6.
  41. Noyes N., Labella P. A., Grifo J., Knopman J. Oocyte cryopreservation: a feasible fertility preservation option for reproductive age cancer survivors. MJ. Ass. Reprod. Genet. 2010; 8 (27): 495-9.
  42. Noyes N., Porcu E., Borini A. Over 900 oocyte cryopreservation babies born with no apparent increase in congenital anomalies. Reprod. Biomed. Online. 2009; 6 (18): 769-76.
  43. Papis K., Shimizu M., Izaike Y. Factors affecting the survivability of bovine oocytes vitrified in droplets. The riogenology 2000; 54: 651-8.
  44. Park S. P. et al. Ultra-rapid freezing of human multipronuclaer zygotes using electron microscope grids. Hum. Reprod. 2000; 15: 1787-90.
  45. Pickering S. J., Johnson M. H. The influence of cooling on the organization of the meiotic spindle of the mouse oocyte. Hum. Reprod. 1987; 3 (2): 207-16.
  46. Polak de Fried E., Notrica J., Rubinstein M., Marazzi A., Gómez Gonzalez M. Pregnancy after human donor оocyte cryopreservation and thawing in association with intracytoplasmic sperm injection in a patient with ovarian failure. Fertil. Steril. 1998; 69 (3): 555-7.
  47. Porcu E. Freezing of oocytes. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 1999; 11: 297-300.
  48. Scaravelli G., Vigiliano V., Mayorga J. M. et al. Analysis of oocyte cryopreservation in assisted reproduction: the Italian National Register data from 2005 to 2007. Reprod. Biomed. Online. 2010; 4 (21): 496-500.
  49. Smith A. Biological effects of freezing and supercooling. № 20. London: Edward Arnold; 1961.
  50. Smith G. D., Serafini P., Fioravanti J., Yadid I., Coslovsky M., Hassun P. et al. Prospective randomized comparison of human oocyte cryopreservation with slow-rate freezing or vitrification. Fertil. Steril. 2010; 94: 2088-95.
  51. Stehlik E. J. Vitrification demonstrates significant omprovent versus slow freesing of human blastocysts. Reprod Biomed 2005; 11: 53-7.
  52. Tao T., Zhang W., Del Valle A. Human oocyte cryopreservation. Curr. Opin. Obstet. Gynecol. 2009; 3 (21): 247-52.
  53. Trounson A., MohrL. Human pregnancy following cryopreservation, thawing and transfer of an eight cell embryo. Nature. 1983; 305: 707-9.
  54. Thomas J. Kim, Seung Wook Hong. Successful live birth from vitrified oocytes after 5 years of cryopreservation. Assist. Reprod. Genet. 2011; Vol.28: 73-76.
  55. Vajta G., Kuwayama M., Improving cryopreservation systems. Theriogenology. 2006; 65: 236-44.
  56. Van den Abbeel E., Schneider U., Liu J., Agca Y., Critser J. K., Van Steirtherghem A. Osmotic responses and tolerance limits to changes in external osmolalities, and oolemma permeability characteristics, of human in vitro matured MII oocytes. Human Reproduction. 2007; 22: 1959-72.
  57. Vanderzwalmen P., Ectors F., Grobet L., Prapas Y., Panagiotidis Y., Vanderzwalmen S. et al. Septic vitrification of blastocyst from infertile patients, egg donors and after IVM. Reprod. Biomed. Online. 2009; 19: 700-7.
  58. Wikland M. Obstetric outcomes after transfer of vitrified blastocyst. Hum. Reprod. 2010; 25 (7): 1699-1707.
  59. Winslow K., Yang D., Blohm P. et al. Oocyte cryopreservation a three year follow up of sixteen births. Fertil. Steril. 2001; 76 (3): 120-1.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2014 Gabarayeva V.V., Kalugina A.S., Kamenetskaya Y.K.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».