Влияние мутаций в генах Sym7, Sym19 и Sym34 на взаимодействие гороха (Pisum sativum L.) с арбускулярно-микоризным грибом Rhizophagus irregularis
- Авторы: Штарк О.Ю.1, Жернаков А.И.1, Кичигина Н.Е.1, Ахтемова Г.А.1, Сулима А.С.1, Зорин Е.А.1, Жуков В.А.1
-
Учреждения:
- Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии
- Выпуск: Том 22, № 3 (2024)
- Страницы: 225-242
- Раздел: Генетические основы эволюции экосистем
- URL: https://ogarev-online.ru/ecolgenet/article/view/271610
- DOI: https://doi.org/10.17816/ecogen624607
- ID: 271610
Цитировать
Аннотация
В пределах вида горох посевной (Pisum sativum L.) можно выделить генотипы с высокой и низкой отзывчивостью на инокуляцию арбускулярно-микоризными грибами. Цель данного исследования — проверка предположения о том, что отзывчивость гороха на инокуляцию арбускулярно-микоризными грибами может иметь обратную корреляцию с уровнем колонизации корней. В работе использована линия дикого типа Finale с невысокой отзывчивостью на инокуляцию арбускулярно-микоризными грибами и полученные на ее основе симбиотические мутанты. Растения выращивали в контролируемых климатических условиях при дефиците доступного фосфора; для инокуляции использовали гриб Rhizophagus irregularis. Параметры роста растений и развития репродуктивных органов определяли через 52 и 71 день после инокуляции, что соответствовало стадиям цветения и наполнения бобов соответственно. Все мутантные линии в условиях без инокуляции имели, в основном, пониженные параметры по сравнению с исходной линией Finale. Инокуляция привела к снижению многих параметров у этой линии. Мутации в генах Sym7 и Sym34, приводящие к снижению или замедлению начала микоризации, соответственно, способствовали проявлению положительной реакции растений на инокуляцию. У мутанта по гену Sym19 практически полностью отсутствовала внутрикорневая колонизация, при этом инокуляция не оказала влияния на рост и развитие надземных органов. Результаты исследования подтверждают идею, что снижение уровня микоризации может иметь положительное влияние на растения гороха.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Оксана Юрьевна Штарк
Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии
Email: oshtark@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3656-4559
SPIN-код: 4934-4465
Scopus Author ID: 21935113900
ResearcherId: J-4063-2018
канд. биол. наук
Россия, Санкт-ПетербургАлександр Игоревич Жернаков
Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии
Email: azhernakov@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-8961-9317
Россия, Санкт-Петербург
Наталья Евгеньевна Кичигина
Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии
Email: n.kichigina@arriam.ru
ORCID iD: 0000-0002-6568-7988
Россия, Санкт-Петербург
Гульнара Асановна Ахтемова
Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии
Email: ahgulya@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-7957-3693
SPIN-код: 1714-8554
канд. биол. наук
Россия, Санкт-ПетербургАнтон Сергеевич Сулима
Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии
Email: asulima@arriam.ru
ORCID iD: 0000-0002-2300-857X
SPIN-код: 4906-1159
канд. биол. наук
Россия, Санкт-ПетербургЕвгений Андреевич Зорин
Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии
Email: kjokkjok8@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-5666-3020
SPIN-код: 5048-0203
канд. биол. наук
Россия, Санкт-ПетербургВладимир Александрович Жуков
Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной микробиологии
Автор, ответственный за переписку.
Email: vzhukov@arriam.ru
ORCID iD: 0000-0002-2411-9191
SPIN-код: 2610-3670
Scopus Author ID: 35325957900
Кандидат биологических наук, заведующий лабораторией генетики растительно-микробных взаимодействий
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- Smith S.E., Read D.J. Mycorrhizal symbiosis. 3rd edition. San Diego, London: Academic Press, 2008. doi: 10.1016/B978-0-12-370526-6.X5001-6
- Keymer A., Gutjahr C. Cross-kingdom lipid transfer in arbuscular mycorrhiza symbiosis and beyond // Curr Opin Plant Biol. 2018. Vol. 44. P. 137–144. doi: 10.1016/j.pbi.2018.04.005
- Salmeron-Santiago I.A., Martínez-Trujillo M., Valdez-Alarcón J.J., et al. An updated review on the modulation of carbon partitioning and allocation in arbuscular mycorrhizal plants // Microorganisms. 2022. Vol. 10, N 1. ID 75. doi: 10.3390/microorganisms10010075
- Nadal M., Paszkowski U. Polyphony in the rhizosphere: presymbiotic communication in arbuscular mycorrhizal symbiosis // Curr Opin Plant Biol. 2013. Vol. 16, N 4. P. 473–479. doi: 10.1016/j.pbi.2013.06.005
- Luginbuehl L.H., Oldroyd G.E.D. Understanding the arbuscule at the heart of endomycorrhizal symbioses in plants // Curr Biol. 2017. Vol. 27, N 17. P. R952–R963. doi: 10.1016/j.cub.2017.06.042
- Fester T., Sawers R. Progress and challenges in agricultural applications of arbuscular mycorrhizal fungi // CRC Crit Rev Plant Sci. 2011. Vol. 30, N 5. P. 459–470. doi: 10.1080/07352689.2011.605741
- Ahanger M.A., Hashem A., Abd-Allah E.F., Ahmad P. Chapter 3. Arbuscular mycorrhiza in crop improvement under environmental stress. В кн.: Emerging technologies and management of crop stress tolerance. Vol. 2. Academic Press, 2014. P. 69–95. doi: 10.1016/B978-0-12-800875-1.00003-X
- Latef A.A.H.A., Hashem A., Rasool S., et al. Arbuscular mycorrhizal symbiosis and abiotic stress in plants: A review // J Plant Biology. 2016. Vol. 59, N 5. P. 407–426. doi: 10.1007/s12374-016-0237-7
- Rivero J., Álvarez D., Flors V., et al. Root metabolic plasticity underlies functional diversity in mycorrhiza-enhanced stress tolerance in tomato // New Phytologist. 2018. Vol. 220, N 4. P. 1322–1336. doi: 10.1111/nph.15295
- Jakobsen I., Smith S.E., Smith F.A. Function and diversity of arbuscular mycorrhizae in carbon and mineral nutrition. В кн.: Mycorrhizal ecology. Ecological studies. Vol. 157 / M.G.A. van der Heijden, I.R. Sanders, editors. Berlin: Springer, Heidelberg, 2003. P. 75–92. doi: 10.1007/978-3-540-38364-2_3
- Van Der Heijden M.G.A. Arbuscular mycorrhizal fungi as a determinant of plant diversity: in search of underlying mechanisms and general principles. В кн.: Mycorrhizal ecology. Ecological studies. Vol. 157 / M.G.A. van der Heijden, I.R. Sanders, editors. Berlin: Springer, Heidelberg, 2003. P. 243–265. doi: 10.1007/978-3-540-38364-2_10
- Klironomos J.N. Variation in plant response to native and exotic arbuscular mycorrhizal fungi // Ecology. 2003. Vol. 84, N 9. P. 2292–2301. doi: 10.1890/02-0413
- Konvalinková T., Jansa J. Lights off for arbuscular mycorrhiza: On its symbiotic functioning under light deprivation // Front Plant Science. 2016. Vol. 7. ID 782. doi: 10.3389/fpls.2016.00782
- Костерин О.Э. При царе горохе (Pisum sativum L.): непростая судьба первого генетического объекта // Вавиловский журнал генетики и селекции. 2015. Т. 19, № 1. С. 13–26. EDN: TWQXOZ
- Синюшин А.А., Гостимский С.А. Достижения и перспективы использования гороха посевного (Pisum sativum) в качестве модельного объекта в генетике развития растений // Успехи современной биологии. 2008. Т. 128, № 6. С. 531–541. EDN: JUPCZN
- Якоби Л.М., Кукалев А.С., Ушаков К.В., и др. Полиморфизм форм гороха посевного по эффективности симбиоза с эндомикоризным грибом Glomus sp. в условиях инокуляции ризобиями // Сельскохозяйственная биология. 2000. № 3. С. 94–102. EDN: YLBAPD
- Zhukov V.A., Zhernakov A.I., Sulima A.S., et al. Association study of symbiotic genes in pea (Pisum sativum L.) cultivars grown in symbiotic conditions // Agronomy. 2021. Vol. 11, N 11. ID 2368. doi: 0.3390/agronomy11112368
- Rivera-Becerril F., Calantzis C., Turnau K., et al. Cadmium accumulation and buffering of cadmium-induced stress by arbuscular mycorrhiza in three Pisum sativum L. genotypes // J Exp Bot. 2002. Vol. 53, N 371. P. 1177–1185. doi: 10.1093/jexbot/53.371.1177
- Xavier L.J.C., Germida J.J. Selective interactions between arbuscular mycorrhizal fungi and Rhizobium leguminosarum bv. viceae enhance pea yield and nutrition // Biol Fertil Soils. 2003. Vol. 37, N 5. P. 161–167. doi: 10.1007/s00374-003-0605-6
- Борисов А.Ю., Наумкина Т.С., Штарк О.Ю., и др. Эффективность использования совместной инокуляции гороха посевного грибами арбускулярной микоризы и клубеньковыми бактериями // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. 2004. № 2. С. 12–13. EDN: PKBJBD
- Schweiger R., Baier M.C., Persicke M., Müller C. High specificity in plant leaf metabolic responses to arbuscular mycorrhiza // Nat Commun. 2014. Vol. 5. ID 3886. doi: 10.1038/ncomms4886
- Desalegn G., Turetschek R., Kaul H.-P., Wienkoop S. Microbial symbionts affect Pisum sativum proteome and metabolome under Didymella pinodes infection // J Proteomics. 2016. Vol. 143. P. 173–187. doi: 10.1016/j.jprot.2016.03.018
- Жуков В.А., Ахтемова Г.А., Жернаков А.И., и др. Симбиотическая эффективность генотипов гороха посевного (Pisum sativum L.) при моделировании в вегетационном эксперименте // Сельскохозяйственная биология. 2017. Т. 52, № 3. С. 607–614. EDN: YZKVLX doi: 10.15389/agrobiology.2017.3.607eng
- Shtark O.Y., Puzanskiy R.K., Avdeeva G.S., et al. Metabolic alterations in pea leaves during arbuscular mycorrhiza development // PeerJ. 2019. Vol. 7. ID e7495. doi: 10.7717/peerj.7495
- Юрков А.П., Лактионов Ю.В., Кожемяков А.П., Степанова Г.В. Анализ симбиотической эффективности бактериальных и грибных препаратов на кормовых культурах по данным урожайности семян // Кормопроизводство. 2017. № 3. С. 16–21. EDN: YGUNSX
- Müller L.M., Harrison M.J. Phytohormones, miRNAs, and peptide signals integrate plant phosphorus status with arbuscular mycorrhizal symbiosis // Curr Opin Plant Biol. 2019. Vol. 50. P. 132–139. doi: 10.1016/j.pbi.2019.05.004
- Engvild K.C. Nodulation and nitrogen fixation mutants of pea, Pisum sativum // Theor Appl Genet. 1987. Vol. 74, N 6. P. 711–713. doi: 10.1007/BF00247546
- Borisov A.Y., Danilova T.N., Koroleva T.A., Naumkina T.S. Pea (Pisum sativum L.) regulatory genes controlling development of nitrogen-fixing nodule and arbuscular mycorrhiza: fundamentals and application // Biologia (Bratisl). 2004. Vol. 59, N S13. P. 137–144.
- Kistner C., Winzer T., Pitzschke A., et al. Seven Lotus japonicus genes required for transcriptional reprogramming of the root during fungal and bacterial symbiosis // Plant Cell. 2005. Vol. 17, N 8. P. 2217–2229. doi: 10.1105/tpc.105.032714
- Shtark O.Y., Zhukov V.A., Provorov N.A., et al. Intimate associations of beneficial soil microbes with host plants. В кн.: Soil microbiology and sustainable crop production / G. Dixon, E. Tilston, editors. Springer, 2010. P. 119–196. EDN: SLALLN doi: 10.1007/978-90-481-9479-7_5
- Kaló P., Gleason C., Edwards A., et al. Nodulation signaling in legumes requires NSP2, a member of the GRAS family of transcriptional regulators // Science. 2005. Vol. 308, N 5729. P. 1786–1789. doi: 10.1126/science.1110951
- Dolgikh E.A., Leppyanen I.V., Osipova M.A., et al. Genetic dissection of Rhizobium-induced infection and nodule organogenesis in pea based on ENOD12A and ENOD5 expression analysis // Plant Biol. 2011. Vol. 13, N 2. P. 285–296. doi: 10.1111/j.1438-8677.2010.00372.x
- Shtark O.Y., Sulima A.S., Zhernakov A.I., et al. Arbuscular mycorrhiza development in pea (Pisum sativum L.) mutants impaired in five early nodulation genes including putative orthologs of NSP1 and NSP2 // Symbiosis. 2016. Vol. 68, N 1–3. P. 129–144. doi: 10.1007/s13199-016-0382-2
- Liu W., Kohlen W., Lillo A., et al. Strigolactone biosynthesis in Medicago truncatula and rice requires the symbiotic GRAS-type transcription factors NSP1 and NSP2 // Plant Cell. 2011. Vol. 23, N 10. P. 3853–3865. doi: 10.1105/tpc.111.089771
- Maillet F., Poinsot V., André O., et al. Fungal lipochitooligosaccharide symbiotic signals in arbuscular mycorrhiza // Nature. 2011. Vol. 469, N 7328. P. 58–63. doi: 10.1038/nature09622
- Delaux P.-M., Bécard G., Combier J.-P. NSP 1 is a component of the Myc signaling pathway // New Phytologist. 2013. Vol. 199, N 1. P. 59–65. doi: 10.1111/nph.12340
- Endre G., Kereszt A., Kevei Z., et al. A receptor kinase gene regulating symbiotic nodule development // Nature. 2002. Vol. 417, N 6892. P. 962–966. doi: 10.1038/nature00842
- Stracke S., Kistner C., Yoshida S., et al. A plant receptor-like kinase required for both bacterial and fungal symbiosis // Nature. 2002. Vol. 417, N 6892. P. 959–962. doi: 10.1038/nature00841
- Marsh J.F., Schultze M. Analysis of arbuscular mycorrhizas using symbiosis-defective plant mutants // New Phytologist. 2001. Vol. 150, N 3. P. 525–532. doi: 10.1046/j.1469-8137.2001.00140.x
- Demchenko K., Winzer T., Stougaard J., et al. Distinct roles of Lotus japonicus SYMRK and SYM15 in root colonization and arbuscule formation // New Phytologist. 2004. Vol. 163, N 2. P. 381–392. doi: 10.1111/j.1469-8137.2004.01123.x
- Муромцев Г.С., Маршунова Г.А., Якоби Л.М. Авторское свидетельство № 1501509 на изобретение: «Штамм эндомикоризного гриба Glomus mosseae Nic. & Gerd., повышающий урожай cельскохозяйственных растений и улучшающий их минеральное питание».
- Knott C.M. A key for stages of development of the pea (Pisum sativum) // Ann Appl Biol. 1987. Vol. 111, N 1. P. 233–245. doi: 10.1111/j.1744-7348.1987.tb01450.x
- Fox J. Applied regression analysis and generalized linear models. Sage Publications, 2015. 816 p.
- Vierheilig H., Coughlan A.P., Wyss U., Piché Y. Ink and vinegar, a simple staining technique for arbuscular-mycorrhizal fungi // Appl Environ Microbiol Am Soc Microbiol. 1998. Vol. 64, N 12. P. 5004–5007. doi: 10.1128/AEM.64.12.5004-5007.1998
- Trouvelot A., Kough J.L., Gianinazzi-Pearson V. Mesure du taux de mycorhization VA d’un système radiculaire. Recherche de méthodes d’estimation ayant une signification fonctionnelle. В кн.: Gianinazzi-Pearson V., Gianinazzi S., editors. Physiological and genetical aspects of mycorrhizae. Paris: INRA, 1986. P. 217–221.
- Little T.M., Hills F.J. Agricultural experimentation. Design and analysis. New York: John Wiley and Sons United States, 1978. 350 p.
- Kuznetsova E., Seddas-Dozolme P.M.A., Arnould C., et al. Symbiosis-related pea genes modulate fungal and plant gene expression during the arbuscule stage of mycorrhiza with Glomus intraradices // Mycorrhiza. 2010. Vol. 20, N 6. P. 427–443. doi: 10.1007/s00572-009-0292-8
- Nagae M., Takeda N., Kawaguchi M. Common symbiosis genes CERBERUS and NSP1 provide additional insight into the establishment of arbuscular mycorrhizal and root nodule symbioses in Lotus japonicus // Plant Signal Behav. 2014. Vol. 9, N 5. ID e28544. doi: 10.4161/psb.28544
- Штарк O.Ю., Шишова М.Ф., Повыдыш М.Н., и др. Стриголактоны — регуляторы симбиотрофии растений и микроорганизмов // Физиология растений. 2018. Т. 65, № 2. С. 83–100. EDN: YSSSHV doi: 10.7868/S001533031802001X
- Smith S.E., Jakobsen I., Grønlund M., Smith F.A. Roles of arbuscular mycorrhizas in plant phosphorus nutrition: interactions between pathways of phosphorus uptake in arbuscular mycorrhizal roots have important implications for understanding and manipulating plant phosphorus acquisition // Plant Physiol Am Soc Plant Biol. 2011. Vol. 156, N 3. P. 1050–1057. doi: 10.1104/pp.111.174581
Дополнительные файлы
