Влияние различных световых режимов на некоторые циркадные ритмы трансплантируемой меланомы В16

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. На сегодняшний день известно, что нарушение режима освещения, выражающееся как удлинением светового периода, так и его сокращением, не только может повлиять на регуляцию циркадных ритмов организма, но и способствует инициированию роста новообразований.

Цель — изучение циркадной ритмичности уровня мелатонина, некоторых микроморфометрических показателей клеток опухоли и экспрессии в них генов Bmal1, Clock и Per2 у мышей с трансплантированной меланомой В16.

Материалы и методы. Исследование проведено на 75 мышах с трансплантируемой подкожно меланомой В16, разделенных на 3 группы: контрольную, в которой животных содержали при фиксированном световом режиме (свет/темнота 10/14 ч с включением света в 8:00 и выключением в 18:00); группу, находящуюся в условиях темновой депривации, с содержанием животных при постоянном освещении 24 ч/сут; группу, в которой животные пребывали в постоянной темноте. Длительность эксперимента составляла 2 нед.

Результаты. Показано, что в условиях фиксированного освещения достоверные циркадные ритмы присутствуют у всех изученных показателей, за исключением ядерно-цитоплазматического отношения, циркадных ритмов которого не выявлено ни в одной группе. Постоянная темнота приводит к перестройке всех выявленных ритмов, а постоянный свет вызывает разрушение всех циркадных ритмов, кроме ритма экспрессии Clock.

Заключение. Проведенное исследование показало, что нарушения режима освещения, будь то постоянное освещение или постоянная темнота, приводят к значительным изменениям в структуре изученных циркадных ритмов.

Об авторах

Давид Александрович Арешидзе

Научно-исследовательский институт морфологии человека им. акад. А.П. Авцына Российского научного центра хирургии им. акад. Б.В. Петровского

Автор, ответственный за переписку.
Email: labcelpat@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3006-6281
SPIN-код: 4348-6781

канд. биол. наук, заведующий лабораторией патологии клетки

Россия, 117418, Москва, ул. Цюрупы, д. 3

Мария Александровна Козлова

Научно-исследовательский институт морфологии человека им. акад. А.П. Авцына Российского научного центра хирургии им. акад. Б.В. Петровского

Email: ma.kozlova2021@outlook.com
ORCID iD: 0000-0001-6251-2560
SPIN-код: 5647-1372

канд. биол. наук, старший научный сотрудник лаборатории патологии клетки

Россия, 117418, Москва, ул. Цюрупы, д. 3

Денис Валерьевич Мищенко

Федеральный исследовательский центр проблем химической физики и медицинской химии Российской академии наук

Email: mdv@icp.ac.ru
ORCID iD: 0000-0003-3779-3211
SPIN-код: 4213-3318

канд. биол. наук, ведущий научный сотрудник группы экспериментальной химиотерапии опухолей

Россия, Черноголовка

Валерий Петрович Черников

Научно-исследовательский институт морфологии человека им. акад. А.П. Авцына Российского научного центра хирургии им. акад. Б.В. Петровского

Email: 1200555@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3253-6729
SPIN-код: 3125-7837

канд. мед. наук, ведущий научный сотрудник лаборатории патологии клетки

Россия, 117418, Москва, ул. Цюрупы, д. 3

Татьяна Васильевна Безуглова

Научно-исследовательский институт морфологии человека им. акад. А.П. Авцына Российского научного центра хирургии им. акад. Б.В. Петровского

Email: bezuglovat@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7792-1594
SPIN-код: 3943-4400

канд. биол. наук, заместитель директора по научной работе

Россия, 117418, Москва, ул. Цюрупы, д. 3

Максим Валерьевич Мнихович

Научно-исследовательский институт морфологии человека им. акад. А.П. Авцына Российского научного центра хирургии им. акад. Б.В. Петровского

Email: mnichmaxim@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-7147-7912
SPIN-код: 6975-6677

канд. мед. наук, ведущий научный сотрудник центральной патологоанатомической лаборатории

Россия, 117418, Москва, ул. Цюрупы, д. 3

Зарина Владиславовна Гиоева

Научно-исследовательский институт морфологии человека им. акад. А.П. Авцына Российского научного центра хирургии им. акад. Б.В. Петровского

Email: gioeva_z@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5456-8692
SPIN-код: 9210-9726

канд. мед. наук, заведующая центральной патологоанатомической лабораторией

Россия, 117418, Москва, ул. Цюрупы, д. 3

Угульжан Юлдашовна Аллаярова

Федеральный исследовательский центр проблем химической физики и медицинской химии Российской академии наук

Email: bezuglovat@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-8264-0997
SPIN-код: 4996-3473

младший научный сотрудник группы экспериментальной химиотерапии опухолей

Россия, Черноголовка

Анна Игоревна Ануркина

Федеральный исследовательский центр проблем химической физики и медицинской химии Российской академии наук

Email: anyaaai1925@gmail.com
ORCID iD: 0009-0003-0011-1114
SPIN-код: 9812-3412

лаборант-исследователь лаборатории патологии клетки

Россия, Черноголовка

Список литературы

  1. Panda S. Circadian physiology of metabolism // Science. 2016. Vol. 354, No. 6315. P. 1008–1015. doi: 10.1126/science.aah4967
  2. Zimmet P., Alberti K.G.M.M., Stern N. et al. The circadian syndrome: is the metabolic syndrome and much more! // J. Intern. Med. 2019. Vol. 286, No. 2. P. 181–191. doi: 10.1111/joim.12924
  3. Fagiani F., Di Marino D., Romagnoli A. et al. Molecular regulations of circadian rhythm and implications for physiology and diseases // Signal Transduct. Target. Ther. 2022. Vol. 7, No. 1. P. 41. doi: 10.1038/s41392-022-00899-y
  4. Fekry B., Eckel-Mahan K. The circadian clock and cancer: links between circadian disruption and disease pathology // J. Biochem. 2022. Vol. 171, No. 5. P. 477–486. doi: 10.1093/jb/mvac017
  5. Miki T., Matsumoto T., Zhao Z., Lee C.C. p53 regulates Period2 expression and the circadian clock // Nat. Commun. 2013. Vol. 4. P. 2444. doi: 10.1038/ncomms3444
  6. Zhou R., Chen X., Liang J. et al. A circadian rhythm-related gene signature associated with tumor immunity, cisplatin efficacy, and prognosis in bladder cancer // Aging (Albany NY). 2021. Vol. 13, No. 23. P. 25153–25179. doi: 10.18632/aging.203733
  7. Gaddameedhi S., Sancar A. Melanoma and DNA damage from a distance (farstander effect) // Pigment Cell Melanoma Res. 2011. Vol. 24, No. 1. P. 3–4. doi: 10.1111/j.1755-148X.2010.00805.x
  8. Geyfman M., Gordon W., Paus R., Andersen B. Identification of telogen markers underscores that telogen is far from a quiescent hair cycle phase // J. Invest. Dermatol. 2012. Vol. 132, No. 3 Pt 1. P. 721–724. doi: 10.1038/jid.2011.367
  9. Gaddameedhi S., Selby C.P., Kaufmann W.K. et al. Control of skin cancer by the circadian rhythm // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2011. Vol. 108, No. 46. P. 18790–18795. doi: 10.1073/pnas.1115249108
  10. Klionsky D.J., Abdel-Aziz A.K., Abdelfatah S. et al. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy (4th edition) // Autophagy. 2021. Vol. 17, No. 1. P. 1–382. doi: 10.1080/15548627.2020.1797280
  11. Deng F., Yang K., Zheng G. Period family of clock genes as novel predictors of survival in human cancer: a systematic review and meta-analysis // Dis Markers. 2020. Vol. 2020. P. 6486238. doi: 10.1155/2020/6486238
  12. Sulli G., Lam M.T.Y., Panda S. Interplay between circadian clock and cancer: New frontiers for cancer treatment // Trends Cancer. 2019. Vol. 5, No. 8. P. 475–494. doi: 10.1016/j.trecan.2019.07.002
  13. Bumgarner J.R., Nelson R.J. Light at night and disrupted circadian rhythms alter physiology and behavior // Integr. Comp. Biol. 2021. Vol. 61, No. 3. P. 1160–1169. doi: 10.1093/icb/icab017
  14. Vasey C., McBride J., Penta K. Circadian rhythm dysregulation and restoration: The role of melatonin // Nutrients. 2021. Vol. 13, No. 10. P. 3480. doi: 10.3390/nu13103480
  15. Fárková E., Schneider J., Šmotek M. et al. Weight loss in conservative treatment of obesity in women is associated with physical activity and circadian phenotype: a longitudinal observational study // Biopsychosoc. Med. 2019. Vol. 13. P. 24. doi: 10.1186/s13030-019-0163-2
  16. Yu H.S., Reiter R.J. Melatonin: biosynthesis, physiological effects, and clinical applications. Boca Raton, FL: CRC Press, 1992.
  17. van den Heiligenberg S., Deprés-Brummer P., Barbason H. et al. The tumor promoting effect of constant light exposure on diethylnitrosamine-induced hepatocarcinogenesis in rats // Life Sci. 1999. Vol. 64, No. 26. P. 2523–2534. doi: 10.1016/s0024-3205(99)00210-6
  18. Li J.C., Xu F. Influences of light-dark shifting on the immune system, tumor growth and life span of rats, mice and fruit flies as well as on the counteraction of melatonin // Biol. Signals. 1997. Vol. 6, No. 2. P. 77–89. doi: 10.1159/000109112
  19. Li Y., Li S., Zhou Y. et al. Melatonin for the prevention and treatment of cancer // Oncotarget. 2017. Vol. 8, No. 24. P. 39896–39921. doi: 10.18632/oncotarget.16379
  20. Areshidze D.A., Kozlova M.A., Mnikhovich M.V. et al. Influence of various light regimes on morphofunctional condition of transplantable melanoma B16 // Biomedicines. 2023. Vol. 11, No. 4. P. 1135. doi: 10.3390/biomedicines11041135
  21. Areshidze D.A., Kozlova M.A., Chernikov V.P. et al. Characteristic of ultrastructure of mice B16 melanoma cells under the influence of different lighting regimes // Clocks Sleep. 2022. Vol. 4, No. 4. P. 745–760. doi: 10.3390/clockssleep4040056
  22. Трещалина Е.М., Жукова О.С., Герасимова Г.К. и др. Методические рекомендации по доклиническому изучению противоопухолевой активности лекарственных средств // Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств / отв. ред. А.Н. Миронов. Часть первая. Москва: Гриф и К, 2012. C. 642–657.
  23. Fischer A.H., Jacobson K.A., Rose J., Zeller R. Hematoxylin and eosin staining of tissue and cell sections // CSH Protoc. 2008. Vol. 2008. P. pdb.prot4986. doi: 10.1101/pdb.prot4986
  24. Broeke J., Pérez J.M.M., Pascau J. Image Processing with Image. Second edition. Packt Publishing, 2015.
  25. Smitha T., Sharada P., Girish H. Morphometry of the basal cell layer of oral leukoplakia and oral squamous cell carcinoma using computer-aided image analysis // J. Oral Maxillofac. Pathol. 2011. Vol. 15, No. 1. P. 26–33. doi: 10.4103/0973-029X.80034
  26. Rubin Grandis J., Melhem M.F., Barnes E.L., Tweardy DJ. Quantitative immunohistochemical analysis of transforming growth factor-alpha and epidermal growth factor receptor in patients with squamous cell carcinoma of the head and neck // Cancer. 1996. Vol. 78, No. 6. P. 1284–1292. doi: 10.1002/(SICI)1097-0142(19960915)78:6<1284::AID-CNCR17>3.0.CO;2-X
  27. Cornelissen G. Cosinor-based rhythmometry // Theor. Biol. Med. Model. 2014. Vol. 11. P. 16. doi: 10.1186/1742-4682-11-16
  28. Claustrat B., Leston J. Melatonin: Physiological effects in humans // Neurochirurgie. 2015. Vol. 61, No. 2–3. P. 77–84. doi: 10.1016/j.neuchi.2015.03.002
  29. Reppert S.M., Weaver D.R. Comparing clockworks: mouse versus fly // J. Biol. Rhythms. 2000. Vol. 15, No. 5. P. 357–364. doi: 10.1177/074873000129001459
  30. Sugden D., Davidson K., Hough K.A. et al. Melatonin, melatonin receptors and melanophores: a moving story // Pigment Cell Res. 2004. Vol. 17, No. 5. P. 454–460. doi: 10.1111/j.1600-0749.2004.00185.x
  31. Vriend J., Reiter R.J. Melatonin feedback on clock genes: a theory involving the proteasome // J. Pineal Res. 2015. Vol. 58, No. 1. P. 1–11. doi: 10.1111/jpi.12189
  32. Rodríguez-Santana C., Florido J., Martínez-Ruiz L. et al. Role of melatonin in cancer: Effect on clock genes // Int. J. Mol. Sci. 2023. Vol. 24, No. 3. P. 1919. doi: 10.3390/ijms24031919
  33. References
  34. Panda S. Circadian physiology of metabolism. Science. 2016;354(6315):1008–1015. doi: 10.1126/science.aah4967
  35. Zimmet P, Alberti KGMM, Stern N, et al. The circadian syndrome: is the metabolic syndrome and much more! J Intern Med. 2019;286(2):181–191. doi: 10.1111/joim.12924
  36. Fagiani F, Di Marino D, Romagnoli A, et al. Molecular regulations of circadian rhythm and implications for physiology and diseases. Signal Transduct Target Ther. 2022;7(1):41. doi: 10.1038/s41392-022-00899-y
  37. Fekry B, Eckel-Mahan K. The circadian clock and cancer: links between circadian disruption and disease Pathology. J Biochem. 2022;171(5):477–486. doi: 10.1093/jb/mvac017
  38. Miki T, Matsumoto T, Zhao Z, Lee CC. p53 regulates Period2 expression and the circadian clock. Nat Commun. 2013;4:2444. doi: 10.1038/ncomms3444
  39. Zhou R, Chen X, Liang J, et al. A circadian rhythm-related gene signature associated with tumor immunity, cisplatin efficacy, and prognosis in bladder cancer. Aging (Albany NY). 2021;13(23):25153–25179. doi: 10.18632/aging.203733
  40. Gaddameedhi S, Sancar A. Melanoma and DNA damage from a distance (farstander effect). Pigment Cell Melanoma Res. 2011;24(1):3–4. doi: 10.1111/j.1755-148X.2010.00805.x
  41. Geyfman M, Gordon W, Paus R, Andersen B. Identification of telogen markers underscores that telogen is far from a quiescent hair cycle phase. J Invest Dermatol. 2012;132(3 Pt 1):721–724. doi: 10.1038/jid.2011.367
  42. Gaddameedhi S, Selby CP, Kaufmann WK, et al. Control of skin cancer by the circadian rhythm. Proc Natl Acad Sci USA. 2011;108(46):18790–18795. doi: 10.1073/pnas.1115249108
  43. Klionsky DJ, Abdel-Aziz AK, Abdelfatah S, et al. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy (4th edition). Autophagy. 2021;17(1):1–382. doi: 10.1080/15548627.2020.1797280
  44. Deng F, Yang K, Zheng G. Period family of clock genes as novel predictors of survival in human cancer: a systematic review and meta-analysis. Dis Markers. 2020;2020:6486238. doi: 10.1155/2020/6486238
  45. Sulli G, Lam MTY, Panda S. Interplay between circadian clock and cancer: New frontiers for cancer treatment. Trends Cancer. 2019;5(8):475–494. doi: 10.1016/j.trecan.2019.07.002
  46. Bumgarner JR, Nelson RJ. Light at night and disrupted circadian rhythms alter physiology and behavior. Integr Comp Biol. 2021;61(3):1160–1169. doi: 10.1093/icb/icab017
  47. Vasey C, McBride J, Penta K. Circadian rhythm dysregulation and restoration: The role of melatonin. Nutrients. 2021;13(10):3480. doi: 10.3390/nu13103480
  48. Fárková E, Schneider J, Šmotek M, et al. Weight loss in conservative treatment of obesity in women is associated with physical activity and circadian phenotype: a longitudinal observational study. Biopsychosoc Med. 2019;13:24. doi: 10.1186/s13030-019-0163-2
  49. Yu HS, Reiter RJ. Melatonin: biosynthesis, physiological effects, and clinical applications. Boca Raton, FL: CRC Press; 1992.
  50. van den Heiligenberg S, Deprés-Brummer P, Barbason H, et al. The tumor promoting effect of constant light exposure on diethylnitrosamine-induced hepatocarcinogenesis in rats. Life Sci. 1999;64(26):2523–2534. doi: 10.1016/s0024-3205(99)00210-6
  51. Li JC, Xu F. Influences of light-dark shifting on the immune system, tumor growth and life span of rats, mice and fruit flies as well as on the counteraction of melatonin. Biol Signals. 1997;6(2):77–89. doi: 10.1159/000109112
  52. Li Y, Li S, Zhou Y, et al. Melatonin for the prevention and treatment of cancer. Oncotarget. 2017;8(24):39896–39921. doi: 10.18632/oncotarget.16379
  53. Areshidze DA, Kozlova MA, Mnikhovich MV, et al. Influence of various light regimes on morphofunctional condition of transplantable melanoma B16. Biomedicines. 2023;11(4):1135. doi: 10.3390/biomedicines11041135
  54. Areshidze DA, Kozlova MA, Chernikov VP, et al. Characteristic of ultrastructure of mice B16 melanoma cells under the influence of different lighting regimes. Clocks Sleep. 2022;4(4):745–760. doi: 10.3390/clockssleep4040056
  55. Treshchalina EM, Zhukova OS, Gerasimova GK, et al. Metodicheskie rekomendatsii po doklinicheskomu izucheniyu protivoopukholevoi aktivnosti lekarstvennykh sredstv. In: Rukovodstvo po provedeniyu doklinicheskikh issledovanii lekarstvennykh sredstv. Ed. by A.N. Mironov. Part I. Moscow: Grif i K, 2012. P. 642–657. (In Russ.)
  56. Fischer AH, Jacobson KA, Rose J, Zeller R. Hematoxylin and eosin staining of tissue and cell sections. CSH Protoc. 2008;2008:pdb.prot4986. doi: 10.1101/pdb.prot4986
  57. Broeke J, Pérez JMM, Pascau J. Image Processing with Image. Second edition. Packt Publishing; 2015.
  58. Smitha T, Sharada P, Girish H. Morphometry of the basal cell layer of oral leukoplakia and oral squamous cell carcinoma using computer-aided image analysis. J Oral Maxillofac Pathol. 2011;15(1):26–33. doi: 10.4103/0973-029X.80034
  59. Rubin Grandis J, Melhem MF, Barnes EL, Tweardy DJ. Quantitative immunohistochemical analysis of transforming growth factor-alpha and epidermal growth factor receptor in patients with squamous cell carcinoma of the head and neck. Cancer. 1996;78(6):1284–1292. doi: 10.1002/(SICI)1097-0142(19960915)78:6<1284::AID-CNCR17>3.0.CO;2-X
  60. Cornelissen G. Cosinor-based rhythmometry. Theor Biol Med Model. 2014;11:16. doi: 10.1186/1742-4682-11-16
  61. Claustrat B, Leston J. Melatonin: Physiological effects in humans. Neurochirurgie. 2015;61(2–3):77–84. doi: 10.1016/j.neuchi.2015.03.002
  62. Reppert SM, Weaver DR. Comparing clockworks: mouse versus fly. J Biol Rhythms. 2000;15(5):357–364. doi: 10.1177/074873000129001459
  63. Sugden D, Davidson K, Hough KA, et al. Melatonin, melatonin receptors and melanophores: a moving story. Pigment Cell Res. 2004;17(5):454–460. doi: 10.1111/j.1600-0749.2004.00185.x
  64. Vriend J, Reiter RJ. Melatonin feedback on clock genes: a theory involving the proteasome. J Pineal Res. 2015;58(1):1–11. doi: 10.1111/jpi.12189
  65. Rodríguez-Santana C, Florido J, Martínez-Ruiz L, et al. Role of melatonin in cancer: Effect on clock genes. Int J Mol Sci. 2023;24(3):1919. doi: 10.3390/ijms24031919

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Суточная динамика содержания мелатонина в крови мышей. *** р ≤ 0,0005 в сравнении с показателями в 9:00; ### р ≤ 0,0005 в сравнении с показателями в предыдущую временную точку. Здесь и далее: СС — I опытная группа; ТТ — II опытная группа; Контроль — животные контрольной группы

Скачать (55KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Результаты косинор-анализа суточной динамики содержания мелатонина в крови мышей

Скачать (140KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Суточная динамика изучаемых микроморфометрических показателей клеток меланомы B16: а — площадь ядер; b — площадь клеток; с — ядерно-цитоплазматическое отношение. * р ≤ 0,05, ** р ≤ 0,005, *** р ≤ 0,0005 в сравнении с показателями в 9:00; # р ≤ 0,05, ## р ≤ 0,005, ### р ≤ 0,0005 в сравнении с показателями в предыдущую временную точку

Скачать (138KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Результаты косинор-анализа суточной динамики площади ядра (a), клетки (b) и ядерно-цитоплазматическое отношение (c) клеток меланомы B16

Скачать (330KB)
Метаданные
6. Рис. 5. Суточная динамика экспрессии изученных генов в клетках меланомы B16: а — Bmal1; b — Clock; с — Per2. * р ≤ 0,05, ** р ≤ 0,005, *** р ≤ 0,0005 в сравнении с показателями в 9:00; # р ≤ 0,05, ## р ≤ 0,005, ### р ≤ 0,0005 в сравнении с показателями в предыдущую временную точку

Скачать (135KB)
Метаданные
7. Рис. 6. Результаты косинор-анализа суточной динамики экспрессии Bmal1 (а), Clock (b) и Per2 (c) клеток меланомы B16

Скачать (302KB)
Метаданные

© Эко-Вектор, 2023



Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».