NeuN-иммунопозитивные нейроны в субфорникальном органе у крыс линии SHR
- Авторы: Разенкова В.А.1
-
Учреждения:
- Институт экспериментальной медицины
- Выпуск: Том 23, № 2 (2023)
- Страницы: 101-108
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://ogarev-online.ru/MAJ/article/view/253875
- DOI: https://doi.org/10.17816/MAJ352521
- ID: 253875
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Артериальная гипертония — один из основных факторов риска развития ряда заболеваний сердечно-сосудистой и нервной систем. Особого внимания заслуживает исследование влияния стойкого повышения артериального давления на лишенные гематоэнцефалического барьера циркумвентрикулярные органы центральной нервной системы (к которым относится и субфорникальный орган), обеспечивающие ее реакцию на стресс или повреждение.
Цель — изучить расположение и функциональное состояние нейронов субфорникального органа спонтанно-гипертензивных крыс линии SHR.
Материалы и методы. Исследование проводили на парафиновых срезах головного мозга спонтанно-гипертензивных крыс линии SHR и крыс породы Вистар (n = 12). Для светооптического исследования использовали мышиные моноклональные антитела к NeuN. Для анализа изображений применяли программу Fiji.
Результаты. В результате исследования продемонстрировано, что пространственное распределение нейронов субфорникального органа крыс Вистар и SHR различно. На срезах головного мозга крыс Вистар отмечали компактную локализацию NeuN-положительных клеток. В противоположность этому, для нейронов субфорникального органа крыс SHR характерно формирование обособленных групп, что дополнительно подтверждено кластерным анализом. Между группами нейронов часто располагались пустоты, которые при подкраске гистологическими красителями идентифицированы как скопления глиальных клеток.
Заключение. Проведенное исследование показало, что нейроны субфорникального органа крыс SHR могут подвергаться реорганизации, которая, по-видимому, обусловлена гибелью части нервных клеток и глиозом.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Валерия Алексеевна Разенкова
Институт экспериментальной медицины
Автор, ответственный за переписку.
Email: valeriya.raz@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3997-2232
SPIN-код: 8877-8902
Scopus Author ID: 57219609984
ResearcherId: AAH-1333-2021
аспирант, младший научный сотрудник лаборатории функциональной морфологии центральной и периферической нервной системы отдела общей и частной морфологии
Россия, Санкт-ПетербургСписок литературы
- McKinley M.J., Clarke I.J., Oldfield B.J. Circumventricular organs // Mai J.K., Paxinos G., eds. The human nervous system: second edition. San Diego: Academic Press, 2004. P. 562–591. doi: 10.1016/B978-012547626-3/50020-X
- Pulman K.J., Fry W.M., Cottrell G.T., Ferguson A.V. The subfornical organ: a central target for circulating feeding signals // J. Neurosci. 2006. Vol. 26, No. 7. P. 2022–2030. doi: 10.1523/JNEUROSCI.3218-05.2006
- Zimmerman C.A., Huey E.L., Ahn J.S. et al. A gut-to-brain signal of fluid osmolarity controls thirst satiation // Nature. 2019. Vol. 568, No. 7750. P. 98–102. doi: 10.1038/s41586-019-1066-x
- Jeong J.K., Dow S.A., Young C.N. Sensory circumventricular organs, neuroendocrine control, and metabolic regulation // Metabolites. 2021. Vol. 11, No. 8. P. 1–16. doi: 10.3390/metabo11080494
- Morita-Takemura S., Nakahara K., Hasegawa-Ishii S. et al. Responses of perivascular macrophages to circulating lipopolysaccharides in the subfornical organ with special reference to endotoxin tolerance // J. Neuroinflammation. 2019. Vol. 16, No. 1. P. 39. doi: 10.1186/s12974-019-1431-6
- Ong W.Y., Satish R.L., Herr D.R. ACE2, circumventricular organs and the hypothalamus, and COVID-19 // Neuromolecular Med. 2022. Vol. 24, No. 4. P. 363–373. doi: 10.1007/S12017-022-08706-1
- Canavan M., O’Donnell M.J. Hypertension and cognitive impairment: a review of mechanisms and key concepts // Front. Neurol. 2022. Vol. 13. P. 821135. doi: 10.3389/FNEUR.2022.821135
- Youwakim J., Girouard H. Inflammation: a mediator between hypertension and neurodegenerative diseases // Am. J. Hypertens. 2021. Vol. 34, No. 10. P. 1014–1030. doi: 10.1093/AJH/HPAB094
- Кирик О.В., Цыба Д.Л., Алексеева О.С. и др. Изменения клеток Колмера у крыс линии SHR после ишемии головного мозга // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2021. Т. 107, № 2. С. 177–186. doi: 10.31857/S0869813921010052
- Caniffi C., Prentki Santos E., Cerniello F.M. et al. Cardiac morphological and functional changes induced by C-type natriuretic peptide are different in normotensive and spontaneously hypertensive rats // J. Hypertens. 2020. Vol. 38, No. 11. P. 2305–2317. doi: 10.1097/HJH.0000000000002570
- Arata Y., Geshi E., Nomizo A. et al. Alterations in sarcoplasmic reticulum and angiotensin II receptor type 1 gene expression in spontaneously hypertensive rat hearts // Jpn. Circ. J. 1999. Vol. 63, No. 5. P. 367–372. doi: 10.1253/jcj.63.36767
- Gusel’nikova V.V., Korzhevskiy D.E. NeuN as a neuronal nuclear antigen and neuron differentiation marker // Acta Naturae. 2015. Vol. 7, No. 2. P. 42–47. doi: 10.32607/20758251-2015-7-2-42-47
- Bendel O., Alkass K., Bueters T. et al. Reproducible loss of CA1 neurons following carotid artery occlusion combined with halothane-induced hypotension // Brain Res. 2005. Vol. 1033, No. 2. P. 135–142. doi: 10.1016/J.BRAINRES.2004.11.033
- Qiao L., Fu J., Xue X. et al. Neuronalinjury and roles of apoptosis and autophagy in a neonatal rat model of hypoxia-ischemia-induced periventricular leukomalacia // Mol. Med. Rep. 2018. Vol. 17, No. 4. P. 5940–5949. doi: 10.3892/MMR.2018.8570
- Du J., Liu J., Huang X. et al. Catalpol ameliorates neurotoxicity in N2a/APP695swe cells and APP/PS1 transgenic mice // Neurotox. Res. 2022. Vol. 40, No. 4. P. 961–972. doi: 10.1007/S12640-022-00524-4
- Xu X., Gao W., Cheng S. et al. Anti-inflammatory and immunomodulatory mechanisms of atorvastatin in a murine model of traumatic brain injury // J. Neuroinflammation. 2017. Vol. 14, No. 1. P. 167. doi: 10.1186/S12974-017-0934-2
- Korzhevskii D.E., Sukhorukova E.G., Kirik O.V., Grigorev I.P. Immunohistochemical demonstration of specific antigens in the human brain fixed in zinc-ethanolformaldehyde // Eur. J. Histochem. 2015. Vol. 59, No. 3. P. 2530. doi: 10.4081/ejh.2015.2530
- Schindelin J., Arganda-Carreras I., Frise E. et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis // Nat. Methods. 2012. Vol. 9, No. 7. P. 676–682. doi: 10.1038/nmeth.2019
- Greiner T., Manzhula K., Baumann L. et al. Morphology of the murine choroid plexus: Attachment regions and spatial relation to the subarachnoid space // Front. Neuroanat. 2022. Vol. 16. P. 1046017. doi: 10.3389/FNANA.2022.1046017/BIBTEX
- Hicks A.I., Kobrinsky S., Zhou S. et al. Anatomical organization of the rat subfornical organ // Front. Cell. Neurosci. 2021. Vol. 15. P. 691711. doi: 10.3389/FNCEL.2021.691711
- Dent M.A.R., Segura-Anaya E., Alva-Medina J., Aranda-Anzaldo A. NeuN/Fox-3 is an intrinsic component of the neuronal nuclear matrix // FEBS Lett. 2010. Vol. 584, No. 13. P. 2767–2771. doi: 10.1016/J.FEBSLET.2010.04.073
- Duan W., Zhang Y.P., Hou Z. et al. Novel insights into NeuN: from neuronal marker to splicing regulator // Mol. Neurobiol. 2016. Vol. 53, No. 3. P. 1637–1647. doi: 10.1007/S12035-015-9122-5
- Ester M., Kriegel H-P., Sander J., Xu X. A density-based algorithm for discovering clusters in large spatial databases with noise. Proceedings of the Second International Conference on Knowledge Discovery and Data Mining; 1996 Aug 2-4; Portland, US. Menlo Park: AAAI Press, 1996. P. 226–231.
- Crowley S.D., Gurley S.B., Herrera M.J. et al. Angiotensin II causes hypertension and cardiac hypertrophy through its receptors in the kidney // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2006. Vol. 103, No. 47. P. 17985–17990. doi: 10.1073/PNAS.0605545103
- Bajwa E., Klegeris A. Neuroinflammation as a mechanism linking hypertension with the increased risk of Alzheimer’s disease // Neural. Regen. Res. 2022. Vol. 17, No. 11. P. 2342–2346. doi: 10.4103/1673-5374.336869
- Sumners C., Alleyne A., Rodríguez V. et al. Brain angiotensin type-1 and type-2 receptors: cellular locations under normal and hypertensive conditions // Hypertens. Res. 2020. Vol. 43, No. 4. P. 281–295. doi: 10.1038/S41440-019-0374-8
- Mowry F.E., Biancardi V.C. Neuroinflammation in hypertension: the renin-angiotensin system versus pro-resolution pathways // Pharmacol. Res. 2019. Vol. 144. P. 279–291. doi: 10.1016/J.PHRS.2019.04.029
- Liao W., Wu J. The ACE2/Ang (1-7)/MasR axis as an emerging target for antihypertensive peptides // Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2021. Vol. 61, No. 15. P. 2572–2586. doi: 10.1080/10408398.2020.1781049
- Collombet J.M., Masqueliez C., Four E. et al. Early reduction of NeuN antigenicity induced by soman poisoning in mice can be used to predict delayed neuronal degeneration in the hippocampus // Neurosci. Lett. 2006. Vol. 398, No. 3. P. 337–342. doi: 10.1016/J.NEULET.2006.01.029
- Ogino Y., Bernas T., Greer J.E., Povlishock J.T. Axonal injury following mild traumatic brain injury is exacerbated by repetitive insult and is linked to the delayed attenuation of NeuN expression without concomitant neuronal death in the mouse // Brain Pathol. 2022. Vol. 32, No. 2. P. e13034. doi: 10.1111/BPA.13034
- Tagami M., Nara Y., Kubota A. et al. Ultrastructural changes in cerebral pericytes and astrocytes of stroke-prone spontaneously hypertensive rats // Stroke. 1990. Vol. 21, No. 7. P. 1064–1071. doi: 10.1161/01.STR.21.7.1064
- Айдарова В.С., Наумова О.В., Кудокоцева О.В. и др. Структура мозга крыс линии SHR с генетически детерминированной артериальной гипертензией // Мир медицины и биологии. 2018. Т. 14, № 2. С. 115–119. doi: 10.26724/2079-8334-2018-2-64-115-119
Дополнительные файлы
