Фотолюминесцентный контроль спелости семян зерновых в процессе созревания

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Введение. Объективное определение спелости семян растений является одним из направлений развития сельскохозяйственных электротехнологий. Оптические методы и средства диагностики, исследованные в статье, являются высокоточными, селективными и экспрессными, а также могут легко интегрироваться в действующие современные сельскохозяйственные машины и аппараты.
Материалы и методы. Проведены поисковые исследования оптических спектральных люминесцентных свойств семян зерновых растений различной степени спелости. Отобраны партии семян овса и пшеницы в фазах молочной, молочно-восковой и восковой спелости, а также спелые семена. Исследование проведено на спектрофлуориметре «Флюорат-02-Панорама». Измерены спектры возбуждения при синхронном сканировании, и на их основе – спектры люминесценции. Вычислены интегральные параметры спектров.
Результаты исследования. Семена молочной спелости имеют наибольший пик возбуждения на длине волны около 362 нм и существенно меньший – на 424 нм. У спелых семян коротковолновый пик (λmax = 362 нм) отсутствует; остаются пики 424 нм и 485 нм, причем длинноволновый пик повышается с увеличением срока спелости. Кроме того, с увеличением спелости семян возрастает отношение длинноволнового потока к коротковолновому. Зависимости могут быть статистически достоверно линейно аппроксимированы. Полученные зависимости можно использовать для определения степени физиологической зрелости семян. Предложена методика определения спелости семян зерновых растений при созревании, включающая пробоподготовку, возбуждение люминесценции в коротковолновом и длинноволновом диапазонах, ее регистрацию, усиление и обработку полученного фотоэлектрического сигнала. Для реализации методики разработана конструкция прибора объективного экспресс-анализа степени физиологической зрелости семян.
Обсуждение и заключение. В ходе созревания семян зерновых растений меняется соотношение их уровней возбуждения и потоков люминесценции: для незрелых семян характерна коротковолновая люминесценция, а в спелых семенах преобладает длинноволновая. Зависимости соотношения потоков фотолюминесценции от времени созревания являются возрастающими. Разработан прибор для определения уровня спелости семян, позволяющий определить, на какой стадии созревания находится семя.

Полный текст

Введение

В современных условиях развитие сельского хозяйства во многом зависит от результатов научно-технического прогресса, интенсивного внедрения достижений науки и техники, постоянного совершенствования методов и технологий производства продукции. Объективное определение спелости семян растений является одним из направлений развития сельскохозяйственных электротехнологий с целью внедрения современных методов контроля в растениеводстве. Оптические методы и средства диагностики и контроля являются высокоточными, селективными, экспрессными, а также дистанционными и неразрушающими. Другими достоинствами оптических и оптико-электронных приборов являются простота и безопасность эксплуатации, минимум субъективных факторов и возможность интеграции в действующие современные сельскохозяйственные машины и аппараты.

Оптические спектральные и цветовые характеристики используют для сортировки семян, плодов, корнеплодов и другой продукции1 [1]. Также оптическое излучение применяют в сельскохозяйственном производстве для уничтожения вредителей и обеззараживания зерна. Излучение в ближней инфракрасной области используют для контроля влажности, оценки содержания белков, жира, крахмала, клетчатки, сахаров в размолах, жидкостях или пастах2.

Совокупность методов анализа, основанных на явлении люминесценции, называется люминесцентным анализом. Наибольшее распространение получил вид анализа, основанный на фотолюминесценции исследуемого вещества, возбуждаемой ультрафиолетовым излучением. Подобный анализ может быть как качественным, так и количественным. Первый проводится по спектрам люминесценции и используется для обнаружения следов люминесцирующих органических и неорганических веществ в различных объектах; второй основан на зависимости интенсивности люминесценции от количества люминесцирующего вещества. Исследование фотолюминесценции может дать информацию о состоянии живых и неживых систем без их повреждения и отбора большого объема пробы.

Обзор литературы

Оптические характеристики биотканей несут информацию о количественном содержании и пространственном распределении различных
биологических компонентов в ней, что дает потенциальные возможности диагностики [2–6]. К настоящему времени созданы методики и установки оптической диагностики биологических объектов медицинского назначения [7–12]. Флуоресцентные спектрометры для диагностики in vivo [13] обычно используют волоконно-оптические системы [14–17].

Микроскопические наблюдения, произведенные над созревающими семенами, показали, что по мере их созревания происходит постепенное превращение крахмала в жир («ожирение» крахмальных зерен). Вопрос о накоплении веществ в созревающем зерне имеет важное практическое значение в связи с необходимостью определения оптимальных сроков уборки урожая и снижения потерь зерна при уборке3.

К данному времени известно несколько методов определения спелости семян.

  1. Определение спелости семян по внешним признакам и консистенции. Метод является субъективным и наименее точным, хотя и широко распространен в сельскохозяйственной практике. Чаще всего применяется при плохой погоде в период созревания, но при его использовании требуются серьезный опыт и навык.
  2. Определение спелости семян по массе сырых зерен. Метод предполагает мониторинг массы 1 000 сырых семян.
  3. Определение спелости зерна по удельной массе. Метод предполагает расчет процентного содержания зерен молочной и восковой спелости при погружении средней пробы в солевой раствор4.

Также существуют методы с использованием различных технических устройств, например, инфракрасного термометра [18]. Недостатком данного метода является невозможность получить информацию о температуре с определенной поверхности, т. к. инфракрасный термометр предназначен для измерения температуры в конкретной точке; кроме того, существенным оказывается влияние посторонних помех.

Предложен прибор тепловизионного контроля семян до и после обработки электромагнитным полем высокой частоты; вслед за обработкой проводят сравнение температуры каждого семени до и после воздействия [19]. Недостатками данного способа являются трудоемкость и продолжительность воздействия электромагнитного поля.

Таким образом, используемые в данное время методы определения спелости семян имеют недостатки, связанные с их субъективностью или длительностью, либо являются разрушающими. Альтернатива имеющимся методам – оптический люминесцентный метод, широко применяемый в настоящий момент в биомедицинских технологиях.

В сельскохозяйственных электротехнологиях созданы фотолюминесцентные методы и приборы контроля влажности [20; 21] и всхожести [22; 23].

Материалы и методы

Разработка методики предусматривает поисковые исследования оптических спектральных люминесцентных свойств семян зерновых растений различной степени спелости. Ранее автором было установлено сходство оптических люминесцентных свойств спелых семян большинства зерновых (пшеница, рожь, тритикале, гречиха, овес), зернобобовых (горох, фасоль) и овощных (перец, томат) растений [24]. Данные свойства можно считать типовыми и использовать при проектировании методики и приборов контроля спелости.

Для получения опытных образцов были посеяны и выращены семена овса «скакун» и пшеницы МИС. По мере их созревания отбирались партии семян различной степени спелости: для овса – молочной, молочно-восковой и восковой степени, а также спелые семена (4 срок); для пшеницы – молочной, молочно-восковой и восковой степени, а также 4-го и 5-го сроков спелости. Пробы отбиралась в следующие сроки: молочная (1-й срок) – 95 суток с момента посева, молочно-восковая (2-й срок) – 103 суток, восковая (3-й срок) – 109 суток, 4-й срок – 120 суток, 5-й срок – 126 суток.

Исследование люминесценции проводилось на основе аппаратно-программного комплекса, состоящего из многофункционального спектрофлуориметра «Флюорат-02-Панорама», компьютера с установленным программным обеспечением «Panorama Pro» и внешней камеры для исследуемых образцов. Измерение спектров возбуждения и фотолюминесценции выполнялось аналогично ранее проведенным измерениям [25; 26].

Были измерены спектры возбуждения ηe (λ) при синхронном сканировании, и на их основе – спектры люминесценции φl (λ). По результатам измерений осуществлялась статистическая обработка, где проводилось усреднение по 30 спектрам. В программе «Panorama Pro» были вычислены интегральные параметры спектров Η и Ф. Последний является потоком фотолюминесценции, выраженным в относительных единицах.

Результаты исследования

Результаты измерения спектров возбуждения семян пшеницы различной спелости при синхронном сканировании представлены на рис. 1.

 

 
 
 
Рис. 1. Спектральные характеристики возбуждения семян пшеницы при синхронном
сканировании: 1 – молочная спелость, 2 – молочно-восковая спелость, 3 – восковая спелость,
4 – 4-й срок спелости, 5 – 5-й срок спелости

Fig. 1. The spectral characteristics of wheat seeds during excitations a synchronous scan: 1 – milk ripeness,
2 – milky-wax ripeness, 3 – waxy ripeness, 4 – 4 period of ripeness, 5 – 5 period of ripeness
 
 

Видно, что семена молочной спелости имеют наибольший пик возбуждения на длине волны около 362 нм и существенно меньший – на 424 нм. Семена молочно-восковой спелости имеют пики на тех же длинах волн, но уже приблизительно равные по энергетической эффективности возбуждения. У семян восковой спелости наиболее выражен пик возбуждения на длине волны 424 нм, пик на 362 нм заметно ниже; кроме того, появляется небольшой пик на длине волны 485 нм. У спелых семян (4-й и 5-й срок) коротковолновый пик

(λmax = 362 нм) отсутствует; остаются пики 424 нм и 485 нм, причем длинноволновый пик увеличивается с возрастанием срока спелости5 [27].

Для коротковолнового (λmax = 362 нм), средневолнового (λmax = 424 нм) и длинноволнового (λmax = 485 нм) пиков рассчитаны интегральные значения Н в рабочих диапазонах возбуждения: 250–410 нм, 410–470 нм и 470–550 нм соответственно. Результаты представлены в табл. 1, причем интегральные значения средневолнового возбуждения приняты за единицу, и относительно них пересчитаны значения параметров для коротковолновых и длинноволновых диапазонов (в знаменателе).

 

Таблица  1 Интегральные параметры спектров семян пшеницы для различных диапазонов

Table  1 The integral parameters of the wheat seeds spectra for different ranges

 

Срок /Duration

Н, о. е. / Н, r. u.

250–410

410–470

470–550

1

2 054,00

600

198,00

3,49

1

0,34

2

896,00

413

165,00

1,79

1

0,33

3

628,00

398

140,00

1,57

1

0,35

4

135,00

151

83,65

0,91

1

0,56

5

83,00

144

114,00

0,57

1

0,79

 

Из данных табл. 1 следует, что возможно определение физиологической зрелости по соотношению фотолюминесценции, возбуждаемой длинноволновым и коротковолновым излучением.

Далее были измерены спектры фотолюминесценции семян различной спелости при возбуждении на длинах волн λs = 362 нм и λl = 485 нм. Усредненные по 30 измерениям результаты для семян молочной спелости и полностью спелых семян представлены на рис. 2; 3.

 

 
 
Рис. 2. Спектры люминесценции семян пшеницы молочной спелости (1; 1’) и полностью
спелых (2; 2’) коротковолнового и длинноволнового диапазонов
 

Fig. 2. The luminescence spectra of milky ripeness (1 and 1’) and fully ripe (2 and 2’) wheat seeds
short-wave and long-wave range
 
 
 
 
 
 
Рис. 3. Спектры люминесценции семян овса молочной спелости (1; 1’) и полностью
спелых (2; 2’) коротковолнового и длинноволнового диапазонов

Fig. 3. The luminescence spectra of milky ripeness (1 and 1’) and fully mature (2 and 2’) oat seeds
short-wave and long-wave ranges
 
 
 

В программе «Panorama Prо» были рассчитаны потоки фотолюминесценции Фl и Фs. Результаты представлены в табл. 2; 3 и на рис. 4; 5.

 

Таблица  2 Результаты расчета потоков фотолюминесценции семян пшеницы

Table  2 The results of the fluxes calculation photoluminescence of wheat seeds

 

Срок /Duration

t, сут /t, day

Φs, о. е. /Фs, r. u.

Φl, о. е. /Фl, r. u.

Φs/Φl о. е. /Фs/Фl, r. u.

1

95

1 116

658

0,59

2

103

1 278

921

0,72

3

109

1 491

1 297

0,87

4

120

1 125

996

0,89

5

126

1 023

1 114

1,09

 

 

Таблица  3 Результаты расчета потоков фотолюминесценции семян овса

Table  3 The results of the fluxes photoluminescence seed oats calculation

 

Срок /Duration

t, сут /t, day

Φs, о. е. /Фs, r. u.

Φl, о. е. /Фl, r. u.

Φs/Φl о. е. /Фs/Фl, r. u.

1

95

993

991

1,00

2

103

983

1 101

1,12

3

109

913

1 132

1,24

4

120

913

1 184

1,30

 

 
 
 
Рис. 4. График зависимости отношения длинноволнового потока фотолюминесценции семян
пшеницы к коротковолновому от времени созревания
 

Fig. 4. The graph of ratio the long-wave flux wheat seeds photoluminescence to the short-wave ratio
dependence of the ripening time
 
 
 
 
Рис. 5. График зависимости отношения длинноволнового потока фотолюминесценции семян овса
к коротковолновому от времени созревания
 

Fig. 5. The graph of ratio of the long-wave flux oat seeds photoluminescence to the short-wave
dependence one on the ripening time
 
 

Как следует из таблиц и графиков, с увеличением спелости семян отношение длинноволнового потока к коротковолновому увеличивается. Зависимости могут быть статистически достоверно линейно аппроксимированы при коэффициенте детерминации R2, равном 0,90 для пшеницы и 0,93 – для овса. Данные зависимости можно использовать для определения степени физиологической зрелости семян. Так, семена пшеницы можно считать спелыми при соотношении Φl / Φs, превышающем 1,0, а семена овса – 1,3.

На основе полученных результатов предложена методика определения спелости семян зерновых растений при созревании, структурная схема которой представлена на рис. 6.

 

 
 
 
Рис. 6. Структурная схема методики определения спелости семян зерновых растений

Fig. 6. The block diagram of the method for determining the ripeness grain plants seeds
 
 

Предлагаемая методика включает в себя следующие этапы:

  1. Для исследования с нескольких растений отбираются несколько семян. Возможен неразрушающий контроль семян полного колоса, в том числе без участия человека, с применением беспилотных летательных аппаратов. Исследуемая проба помещается в темную светонепроницаемую камеру.
  2. Семена облучаются двумя источниками излучения (например, светодиодами), спектры излучения которых имеют максимумы на длинах волн λs = 362 нм и λl = 485 нм (или максимально близкие к ним) для возбуждения фотолюминесценции.
  3. Люминесценция регистрируется двумя фотоприемниками (например, фотодиодами) с диапазонами чувствительности 380–580 и 450–650 нм.
  4. Электрический фотосигнал с фотоприемников усиливается усилителем и поступает на микроконтроллер.
  5. В микроконтроллере сигнал преобразуется в цифровую форму, после чего происходит расчет отношения потока длинноволновой фотолюминесценции Фl к потоку коротковолновой фотолюминесценции Фs.
  6. Полученный результат поступает на выходное индикаторное устройство. С учетом полученных данных определяется, на какой стадии созревания находятся семена, и принимается решение о возможных дальнейших действиях.

На рис. 7 представлена функциональная схема методики определения спелости семян.

 

 
 
 
Рис. 7. Функциональная схема методики определения спелости семян: 1 – исследуемый материал (семена или колосья);
2 – светонепроницаемая камера с исследуемыми образцами; 3 – источники возбуждающего излучения;
4 – приемники фотолюминесцентного излучения; 5 – усилитель сигнала; 6 – микроконтроллер; 7 – выходной индикатор
 

Fig. 7. The functional diagram of the method for determining the seed ripeness: 1 – the test material (seeds or ears);
2 – opaque chamber with the samples; 3 – exciting radiation sources;
4 – photoluminescent radiation receivers; 5 – amplifier; 6 – microcontroller; 7 – output indicator
 
 

Для реализации методики разработана конструкция и выбраны основные узлы прибора объективного экспресс-анализа степени физиологической зрелости семян (рис. 8).

 

 
 
 
Рис. 8. Структурная схема прибора для определения спелости семян

Fig. 8. The block diagram of the device for determining the seed ripeness
 
 

В качестве источников излучения выбраны два светодиода: для коротковолнового излучения – VLMU35106, для длинноволнового – XPEBBL-L1-R250-00 Z017. В качестве приемников излучения наиболее подходящими по актиничности являются фотодиоды S9219-018 и BPW21R9.

Произведен выбор компонентов электронного блока: операционный усилитель марки К140УД17, микросхема делителя напряжения К525ПС3, микроконтроллер ATMEGA8 на ЖКИ WH1602A [28]. Для разделения приема коротковолнового и длинноволнового фотосигналов используется временная задержка включения источников и приемников, осуществляемая через микроконтроллер.

Обсуждение и заключение

Оптические фотолюминесцентные методы оценки качества семян растений являются бесконтактными, быстродействующими, селективными и зачастую неразрушающими. Для семян исследованных зерновых растений характерно возбуждение фотолюминесценции в диапазонах с максимумами на длинах волн 362 нм, 424 нм и 485 нм. В ходе созревания семян зерновых растений (на примере пшеницы и овса) меняется соотношение их уровней возбуждения и потоков люминесценции: для незрелых семян характерна коротковолновая люминесценция, а в спелых семенах преобладает длинноволновая. Зависимости соотношения потоков фотолюминесценции длинноволнового и коротковолнового диапазонов от времени созревания являются возрастающими и могут быть статистически достоверно аппроксимированы линейными функциями. На основе полученных результатов разработан прибор для определения уровня физиологической зрелости семян, позволяющий за счет облучения семян двумя источниками с определенными длинами волн и регистрации потока фотолюминесценции соответствующими приемниками определить, на какой стадии созревания находится семя.

 

 

1           Башилов А. М. Электронно-оптическое зрение в аграрном производстве (системотехника построения и применения информационных оптических технологий). М. : Изд-во ГНУ ВИЭСХ, 2005. 312 с.

2           Лакович Дж. Основы флуоресцентной спектроскопии / Пер. с англ. М. : Мир, 1986. 496 с

3           Казаков Е. Д., Кретович В. Л. Биохимия зерна и продуктов его переработки. 2-е изд., перераб. и доп. М. : Агропромиздат, 1989. 368 с.

4           Уборка урожая. URL: http://racechrono.ru/biologizaciya-zemledeliya/4770-uborka-urozhaya.html

5           Изменения спектральных свойств фотолюминесценции семян пшеницы в процессе созревания / М. В. Беляков [и др.] // Энергетика, информатика, инновации-2016 : сб. тр. VI Междунар. науч.-техн. конф. : в 3 т. Т. 2. Смоленск : Универсум, 2016. С. 23–26.

6           Vishay – manufacturer of discrete semiconductors and passive components. URL: https://www.vishay.com/docs/84363/vlmu3510-365-130.pdf

7           Farnell Россия. Электронные компоненты, электронные детали. URL: http://ru.farnell.com/cree/x-pebbl-l1-r250-00z01/led-smd-xlamp-xpe-e-blue-485nm/dp/2335110

8           Home. Hamamatsu Photonics. URL: https://www.hamamatsu.com/jp/en/product/alpha/S/4103/S9219-01/index.html

9           Vishay – manufacturer of discrete semiconductors and passive components. URL: https://www.vishay.com/docs/81519/bpw21r.pdf

×

Об авторах

Михаил Владимирович Беляков

филиал ФГБОУ ВО «Национальный исследовательский университет “МЭИ”» в г. Смоленске

Автор, ответственный за переписку.
Email: bmw20100@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-4371-8042
ResearcherId: W-2746-2018

заведующий, кафедра оптико-электронных систем, кандидат технических наук, доцент

Россия, 214013, г. Смоленск, Энергетический пр., д. 1

Список литературы

  1. Методы измерений спектральных характеристик и распознавания элементов зерновых смесей в системах сепарации реального времени / Э. К. Алгазинов [и др.] // Измерительная техника.2014. № 1. С. 36–41.
  2. Jacques S. L. The role of skin optics in diagnostic and therapeutic uses of lasers // Lasers in Dermatology / Eds. R. Steiner [et al.]. Berlin : Springer–Verlag, 1991. P. 1–21. DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-642-75201-8_1
  3. Review of optical breast imaging and spectroscopy / D. Grosenick [et al.] // Journal of Biomedical Optics. 2016. Vol. 21, no 9. P. 091311. DOI: https://doi.org/10.1117/1.JBO.21.9.091311
  4. Colorectal tumors and hepatic metastases differ in their optical properties–relevance for dosimetry in laser-induced interstitial thermotherapy / C. Holmer [et al.] // Lasers in Surgery and Medicine. 2006.Vol. 38, issue 4. P. 296–304. DOI: https://doi.org/10.1002/lsm.20300
  5. Brown adipose tissue density measured by near-infrared time-resolved spectroscopy in Japanese,across a wide age range / S. Fuse [et al.] // Journal of Biomedical Optics. 2018. Vol. 23, no. 6. P. 065002.DOI: https://doi.org/10.1117/1.JBO.23.6.065002
  6. Spatially resolved, diffuse reflectance imaging for subsurface pattern visualization toward development of a lensless imaging platform: phantom experiments / I. Schelkanova [et al.] // Journal of Biomedical Optics. 2016. Vol. 21, no 1. P. 015004. DOI: https://doi.org/10.1117/1.JBO.21.1.015004
  7. Method and apparatus for measuring non-nutritive suck pattern stability : pat. 2009/0222214A1 US : G 06 F 19/00, G 01 N 33/00 / Barlow S., Wang J., inventors ; University of Kansas, assignee.№ 12/390,142 ; filed 21.02.09 ; publ. 03.09.09. URL: https://patentimages.storage.googleapis.com/ed/bc/1a/6fe5d2f6335935/US20090222214A1.pdf
  8. Diagnostic method for disorders using copeptin : pat. 2009/0221009 A1 US : G 01 N 33/53, G 01 N 33/00 /Bergmann M., Struck J., inventors ; Brahms AG, assignee. № 11/573,595 ; filed 19.08.05 ; publ. 03.09.09. URL:https://patentimages.storage.googleapis.com/af/10/2a/9b8322c927b4ec/US20090221009A1.pdf
  9. Identification of cancer biomarkers and phosphorylated proteins : pat. 2009/0226913 A1 US : C 12 Q 1/68, C 12 Q 1/00, G 01 N 33/574, G 01 N 33/00 / Pope R. M. [et al.], inventors ; Life Technologies Corporation, assignee. № 12/340,341 ; filed 19.12.08 ; publ. 10.09.09. URL: https://patentimages.storage.googleapis.com/c0/c9/ba/2a844549c238c8/US20090226913A1.pdf
  10. Method for improving optical response marking of analytical chemistry sensor arrangement : pat. 2009-180735 A JP : G 01 N 21/64, G 01 N 21/78, G 01 N 33/58, G 01 N 33/50. № 2009-62380 ; filed 16.03.2009 ; publ.13.08.09. URL: https://patentimages.storage.googleapis.com/68/92/91/887124384d618a/JP2009180735A.pdf
  11. Nanowire-based system for analysis of nucleic acids : pat. 2009/226927 A1 US : C 12 Q 1/68,G 01 N 33/00, C 40 B 30/10, C 12 M 1/00 / Sun H., Fung S., Woo S. L., inventors. № 12/468,831 ; filed 19.05.09 ; publ. 10.09.09. URL: https://patentimages.storage.googleapis.com/cb/11/22/d9ed4b34c0d1d1/US20090226927A1.pdf
  12. Universal sample preparation system and use in an integrated analysis system : pat. 2009/108260 A2 WO : C 12 P 19/34, B 01 D 17/06, B 01 D 57/02, B 01 L 3/00, G 01 N 33/00, C 12 M 1/00, G 01 N 1/18 /Vangbo M. [et al.], inventors ; Microchip Technologies, Inc., applicant. № PCT/US2009/000419 ; filed 21.01.09 ; publ. 03.09.09. URL: https://patentimages.storage.googleapis.com/9b/67/df/51cbed000addf3/WO2009108260A2.pdf
  13. Mouroulis P., Green R. O. Review of high fidelity imaging spectrometer design for remote sensing //Optical Engineering. 2018. Vol. 57, no. 4. P. 040901. DOI: https://doi.org/10.1117/1.OE.57.4.040901
  14. Development and in vivo test of a miniature Raman probe for early cancer detection in the peripheral lung / H. C. McGregor [et al.] // Journal of Biophotonics. 2018. Vol. 11, issue 11. P. 201800055. DOI:https://doi.org/10.1002/jbio.201800055
  15. Liu Q., Vo-Dinh T. Spectral filtering modulation method for estimation of hemoglobin concentration and oxygenation based on a single fluorescence emission spectrum in tissue phantoms // Medical Physics. 2009. Vol. 36, issue 10. P. 4819–4829. DOI: https://doi.org/10.1118/1.3218763
  16. Decomposition of complex fluorescence spectra containing components with close emission maxima positions and similar quantum yields. Application to fluorescence spectra of proteins / A. Savić [et al.] //Journal of Fluorescence. 2013. Vol. 23, issue 3. P. 605–610. DOI: https://doi.org/10.1007/s10895-013-1183-0
  17. Early detection and differentiation of venous and arterial occlusion in skin flaps using visible diffuse reflectance spectroscopy and autofluorescence spectroscopy / С. Zhu [et al.] // Biomedical Optics Express. 2016. Vol. 7, issue 2. P. 570–580. URL: https://doi.org/10.1364/BOE.7.000570
  18. Инфракрасный термометр : пат. 74282 Рос. Федерация : МПК А 61 В 5/00 (2006.01) /Ткаченко Ю. А. ; патентообладатель Закрытое акционерное общество «СЕМ Технолоджи».№ 2008104491/22 ; заявл. 05.02.2008 ; опубл. 27.06.2008, Бюл. № 18. URL: http://www1.fips.ru/fips_servl/fips_servlet?DB=RUPM&DocNumber=74282&TypeFile=html
  19. Способ определения биологически ценных семян кукурузы : пат. 2506734 Рос. Федерация :МПК А01 С 1/00 (2006.01) / Кузьминов В. И., Гребенник В. И. ; патентообладатель Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Ставропольский государственный аграрный университет». № 2012141184/13 ; заявл. 26.09.2012 ;опубл. 20.02.2014, Бюл. № 5. URL: http://www.findpatent.ru/patent/250/2506734.html
  20. Беляков М. В. Оптические спектральные свойства семян растений различной влажности //Вестник НГИЭИ. 2016. № 4 (59). С. 38–50. URL: http://vestnik.ngiei.ru/?page_id=1397
  21. Беляков М. В., Куликова М. Г. Зависимости влажности семян растений от потока люминесценции // Естественные и технические науки. 2016. № 11. С. 162–163.
  22. Беляков М. В., Выборнова Е. И. Разработка люминесцентного анализатора всхожести семян агрокультур // Вестник НГИЭИ. 2017. № 1 (68). С. 39–52. URL: http://vestnik.ngiei.ru/?page_id=1468
  23. Беляков М. В., Булатикова В. О., Тарасенков К. А. Методика объективного контроля спелости семян растений при созревании // Инновации в сельском хозяйстве. 2018. № 3 (28). С. 14–19.URL: http://journal.viesh.ru/wp-content/uploads/2019/02/%D0%98%D0%9D%D0%9D%D0%9E%D0%92%D0%A1%D0%A5-28.pdf
  24. Беляков М. В. Типовые спектральные характеристики люминесценции семян растений //Естественные и технические науки. 2015. № 11 (89). С. 521–525.
  25. Беляков М. В. Исследование люминесцентных свойств семян пшеницы и овса различной всхожести // Вестник ВИЭСХ. 2016. № 1 (22). С. 30–33. URL: http://vestnik.viesh.ru/wp-content/uploads/2016/08/2016-01-22.pdf
  26. Беляков М. В. Определение всхожести семян растений люминесцентным методом // Вестник Ижевской государственной сельскохозяйственной академии. 2017. № 3 (52). С. 35–40. URL:https://izhgsha.ru/images/rio/Raznoe/Vestniki/2017_3.pdf
  27. Беляков М. В. Изменение люминесцентных характеристик семян пшеницы в процессе созревания // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. 2017. № 6. С. 38–41.URL: http://www.journal-kgsha.ru/data/documents/2017-06.pdf
  28. Беляков М. В. Оптический люминесцентный анализатор всхожести семян растений //Инновации в сельском хозяйстве. 2017. № 2 (23). С. 73–82. URL: http://journal.viesh.ru/wp-content/uploads/2018/04/Insel23.pdf

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Спектральные характеристики возбуждения семян пшеницы при синхронном сканировании: 1 – молочная спелость, 2 – молочно-восковая спелость, 3 – восковая спелость, 4 – 4-й срок спелости, 5 – 5-й срок спелости

Скачать (50KB)
3. Рис. 2. Спектры люминесценции семян пшеницы молочной спелости (1; 1’) и полностью спелых (2; 2’) коротковолнового и длинноволнового диапазонов

Скачать (59KB)
4. Рис. 3. Спектры люминесценции семян овса молочной спелости (1; 1’) и полностью спелых (2; 2’) коротковолнового и длинноволнового диапазонов

Скачать (59KB)
5. Рис. 4. График зависимости отношения длинноволнового потока фотолюминесценции семян пшеницы к коротковолновому от времени созревания

Скачать (47KB)
6. Рис. 5. График зависимости отношения длинноволнового потока фотолюминесценции семян овса к коротковолновому от времени созревания

Скачать (49KB)
7. Рис. 6. Структурная схема методики определения спелости семян зерновых растений

Скачать (42KB)
8. Рис. 7. Функциональная схема методики определения спелости семян: 1 – исследуемый материал (семена или колосья); 2 – светонепроницаемая камера с исследуемыми образцами; 3 – источники возбуждающего излучения; 4 – приемники фотолюминесцентного излучения; 5 – усилитель сигнала; 6 – микроконтроллер; 7 – выходной индикатор

Скачать (24KB)
9. Рис. 8. Структурная схема прибора для определения спелости семян

Скачать (62KB)

© Беляков М.В., 2025

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Журнал «Инженерные технологии и системы» основан в 1990 году
Реестровая запись ПИ № ФС 77-74640 от 24 декабря 2018 г.

 

Будьте в курсе новостей.
Подпишитесь на наш Telegram-канал.
https://t.me/eng_techn

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».