Поли(l-лактид-со-гликолид) и шеллак в разработке фазочувствительных in situ имплантатов
- Авторы: Сахарова П.С.1, Пыжов В.С.1, Бахрушина Е.О.1
-
Учреждения:
- ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России
- Выпуск: Том 22, № 4 (2022)
- Страницы: 51-57
- Раздел: ФАРМАЦЕВТИЧЕСКАЯ ХИМИЯ, ФАРМАКОГНОЗИЯ
- URL: https://ogarev-online.ru/2410-3764/article/view/120414
- DOI: https://doi.org/10.55531/2072-2354.2022.22.4.51-57
- ID: 120414
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Цель – рассмотреть потенциальную перспективность применения PLGA и шеллака для получения фазозависимых in situ имплантатов.
Материал и методы. Исследование проходило в два тура: I тур был посвящен оценке составов NMP-полимер, II тур – оценке составов NMP-полимер-ПЭГ. В работе использовали PLGA с различными соотношениями лактидных и гликолидных звеньев (75:25, 50:50), отбеленный обезвощенный шеллак, N-метилпирролидон (NMP) в качестве растворителя, а также ПЭГ-1500 в концентрации 5% (масс/об) как сорастворитель. Экспериментальные составы содержали матрицеобразователи в концентрации 33%. Скрининг составов проводили по растворимости полимеров в NMP, гомогенности и проходимости через иглу полученной системы полимер-NMP, скорости образования имплантата в ходе жидкость-жидкостной экстракции в среде фосфатного буферного раствора (рН=6.8), а также морфологии имплантата. Скорость образования имплантата и диффузию красителя из систем доставки изучали также посредством разработанной ранее на базе лаборатории Института фармации им. А.П. Нелюбина in vitro агаровой модели десны.
Результаты. I тур исследований показал, что система NMP-PLGA (75:25) образует твердый имплантат за 1 час, а система NMP-шеллак – за 2 часа. Составы были положительно оценены по предъявленным критериям, несмотря на сильно разнящиеся показатели объема диффузии – 1414 мкл для NMP-шеллак, 1065 мкл для NMP-PLGA (75:25), что говорит о возможности их использования без введения дополнительных вспомогательных веществ. NMP-PLGA(50:50) не полностью осадился по истечении критического времени (3 ч) и был признан нуждающимся в корректировке из-за недостаточной скорости образования имплантата.
Во II туре наблюдалась менее интенсивная диффузия красителя из имплантатов в агар (например, для NMP-PLGA(50:50) 641 мкл, а для NMP-PLGA(50:50)-ПЭГ 25 мкл), но вместе с тем положительная динамика по времени их осаждения как в среде фосфатного буфера (мгновенное осаждение без необходимости встряхивания), так и в in vitro агаровой модели десны (по истечении 3 часов состав NMP-PLGA(50:50)-ПЭГ в отличие от NMP-PLGA(50:50) образовал полутвердый имплантат).
Заключение. В ходе проведенных экспериментов в качестве наиболее перспективных для дальнейшей разработки фазочувствительного in situ стоматологического имплантата были отобраны составы NMP-шеллак и NMP-PLGA(75:25). Добавление ПЭГ было признано рациональным с точки зрения увеличения скорости осаждения имплантата и уменьшения начальной диффузии растворителя.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
П. С. Сахарова
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России
Автор, ответственный за переписку.
Email: sakharova_p_s@student.sechenov.ru
ORCID iD: 0000-0003-4870-6232
студентка Образовательного департамента Института фармации им. А.П. Нелюбина
Россия, МоскваВ. С. Пыжов
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России
Email: pyzhov_v_s@student.sechenov.ru
ORCID iD: 0000-0003-2174-7157
студент Образовательного департамента Института фармации им. А.П. Нелюбина
Россия, МоскваЕ. О. Бахрушина
ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России
Email: bakhrushina_e_o@staff.sechenov.ru
ORCID iD: 0000-0001-8695-0346
канд. фарм. наук, доцент, доцент кафедры фармацевтической технологии Института фармации им. А.П. Нелюбина
Россия, МоскваСписок литературы
- Rein SMT, Lwin WW, Tuntarawongsa S, et al. Meloxicam-loaded solvent exchange-induced in situ forming beta-cyclodextrin gel and microparticle for periodontal pocket delivery. Materials Science and Engineering C. 2020;117:111275. doi: 10.1016/j.msec.2020.111275
- Li Z, Mu H, Weng Larsen S, Jensen H, et al. An in vitro gel-based system for characterizing and predicting the long-term performance of PLGA in situ forming implants. Int J Pharm. 2021;609:121183. doi: 10.1016/j.ijpharm.2021.121183
- Solorio L, Sundarapandiyan D, Olear A, et al. The Effect of Additives on the Behavior of Phase Sensitive in Situ Forming Implants. J Pharm Sci. 2015;104(10):3471-80. doi: 10.1002/jps.24558
- Al-Abd AM, Hong KY, Song SC, et al. Pharmacokinetics of doxorubicin after intratumoral injection using a thermosensitive hydrogel in tumor-bearing mice. Journal of Controlled Release. 2010;142(1):101-7. doi: 10.1016/j.jconrel.2009.10.003
- Tang Y, Singh J. Controlled delivery of aspirin: Effect of aspirin on polymer degradation and in vitro release from PLGA based phase sensitive systems. Int J Pharm. 2008;357(1-2):119-25. doi: 10.1016/j.ijpharm.2008.01.053
- Ravivarapu HB, Moyer KL, Dunn RL. Sustained activity and release of leuprolide acetate from an in situ forming polymeric implant. AAPS PharmSciTech. 2000;1(1):3014-3026. doi: 10.1007/bf02830516
- Lambert WJ, Peck KD. Development of an in situ forming biodegradable poly-lactide-coglycolide system for the controlled release of proteins. Journal of Controlled Release. 1995;33(1):283-292. doi: 10.1016/0168-3659(94)00083-7
- Eliaz RE, Kost J. Characterization of a polymeric PLGA-injectable implant delivery system for the controlled release of proteins. J Biomed Mater Res. 2000;50(3):388-96. doi: 10.1002/(SICI)1097-4636(20000605)50:3<388::AID-JBM13> 3.0.CO;2-F
- McHugh AJ. The role of polymer membrane formation in sustained release drug delivery systems. Journal of Controlled Release. 2005;109:211-21. doi: 10.1016/j.jconrel.2005.09.038
- Dong WY, Körber M, López Esguerra V, et al. Stability of poly(d,l-lactide-co-glycolide) and leuprolide acetate in the in situ forming drug delivery systems. Journal of Controlled Release. 2006;115(2):158-67. doi: 10.1016/j.jconrel.2006.07.013
- Luan X, Bodmeier R. Influence of the poly(l-actide-co-glycolide) type on the leuprolide release from in situ forming microparticle systems. Journal of Controlled Release. 2006;110(2): 266-272. doi: 10.1016/j.jconrel.2005.10.005
- Graham PD, Brodbeck KJ, McHugh AJ. Phase inversion dynamics of PLGA solutions related to drug delivery. Journal of Controlled Release. 1999;58(2):233-245. doi: 10.1016/S0168-3659(98)00158-8
- Brodbeck KJ, DesNoyer JR, McHugh AJ. Phase inversion dynamics of PLGA solutions related to drug delivery: Part II. The role of solution thermodynamics and bath-side mass transfer. Journal of Controlled Release. 1999;62(3):333-344. doi: 10.1016/S0168-3659(99)00159-5
- Kang F, Singh J. In vitro release of insulin and biocompatibility of in situ forming gel systems. Int J Pharm. 2005;304(1-2):83-90. doi: 10.1016/j.ijpharm.2005.07.024
- Lu Y, Yu Y, Tang X. Sucrose acetate isobutyrate as an in situ forming system for sustained risperidone release. J Pharm Sci. 2007;96(12):3252-62. doi: 10.1002/jps.21091
- Okumu FW, Dao LN, Fielder PJ, et al. Sustained delivery of human growth hormone from a novel gel system: SABERTM. Biomaterials. 2002;23(22):4353-4358. doi: 10.1016/S0142-9612(02)00174-6
- Kranz H, Brazeau GA, Napaporn J, et al. Myotoxicity studies of injectable biodegradable in situ forming drug delivery systems. Int J Pharm. 2001;212(1):11-18. doi: 10.1016/S0378-5173(00)00568-8
- Rungseevijitprapa W, Brazeau GA, Simkins JW, et al. Myotoxicity studies of O/W-in situ forming microparticle systems. European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics. 2008;69(1):126-33. doi: 10.1016/j.ejpb.2007.10.009
- Kranz H, Bodmeier R. A novel in situ forming drug delivery system for controlled parenteral drug delivery. Int J Pharm. 2007;332(1-2):107-14. doi: 10.1016/j.ijpharm.2006.09.033
- Schoenhammer K, Petersen H, Guethlein F, et al. Poly(ethyleneglycol) 500 dimethylether as novel solvent for injectable in situ forming depots. Pharm Res. 2009; 26(12):2568-77. doi: 10.1007/s11095-009-9969-0
- Liu H, Venkatraman SS. Cosolvent effects on the drug release and depot swelling in injectable in situ depot-forming systems. J Pharm Sci. 2012;101(5):1783-1793. doi: 10.1002/jps.23065
- Kapoor DN, Katare OP, Dhawan S. In situ forming implant for controlled delivery of an anti-HIV fusion inhibitor. Int J Pharm. 2012;426(1-2):132-143. doi: 10.1016/j.ijpharm.2012.01.005
- Mashak A, Mobedi H, Ziaee F, et al. The effect of aliphatic esters on the formation and degradation behavior of PLGA-based in situ forming system. Polymer Bulletin. 2011;66(8):1063-1073. doi: 10.1007/s00289-010-0386-7
- Lin X, Yang S, Gou J, et al. A novel risperidone-loaded SAIB-PLGA mixture matrix depot with a reduced burst release: Effects of solvents and PLGA on drug release behaviors in vitro / in vivo. J Mater Sci Mater Med. 2012;23(2):443-55. doi: 10.1007/s10856-011-4521-2
- Wang L, Venkatraman S, Kleiner L. Drug release from injectable depots: Two different in vitro mechanisms. Journal of Controlled Release. 2004;99(2):207-16. doi: 10.1016/j.jconrel.2004.06.021
- Wang K, Jia Q, Yuan J, et al. A novel, simple method to simulate gelling process of injectable biodegradable in situ forming drug delivery system based on determination of electrical conductivity. Int J Pharm. 2011;404(1-2):176-9. doi: 10.1016/j.ijpharm.2010.10.042
- Kempe S, Metz H, Mäder K. Do in situ forming PLG/NMP implants behave similar in vitro and in vivo? A non-invasive and quantitative EPR investigation on the mechanisms of the implant formation process. Journal of Controlled Release. 2008;130(3):220-5. doi: 10.1016/j.jconrel.2008.06.006
- Schoenhammer K, Petersen H, Guethlein F, et al. Injectable in situ forming depot systems: PEG-DAE as novel solvent for improved PLGA storage stability. Int J Pharm. 2009;371(1-2):33-9. doi: 10.1016/j.ijpharm.2008.12.019
- Senarat S, Wai Lwin W, Mahadlek J, et al. Doxycycline hyclate-loaded in situ forming gels composed from bleached shellac, Ethocel, and Eudragit RS for periodontal pocket delivery. Saudi Pharmaceutical Journal. 2021;29(3):252-263. doi: 10.1016/j.jsps.2021.01.009
- Sakharova PS, Bakhrushina EO, Krasnyuk II. In vitro modeling for the evaluation of biopharmaceutical parameters of phase inversion-based dental in situ implants. Medical Pharm J Pulse. 2022;8:31-35. (In Russ). [Сахарова П.С., Бахрушина Е.О., Краснюк И.И. In vitro моделирование для оценки биофармацевтических показателей фазозависимых стоматологических in situ имплантатов. Медико-фармацевтический журнал «Пульс». 2022;8:31-35]. doi.org//10.26787/nydha-2686-6838-2022-24-8-31-35
Дополнительные файлы
