АНТИОКСИДАНТНЫЙ СТАТУС ФОЛЛИКУЛЯРНОЙ ЖИДКОСТИ У ПАЦИЕНТОК С БЕСПЛОДИЕМ, ПРОХОДЯЩИХ ПРОЦЕДУРУ ЭКСТРАКОРПОРАЛЬНОГО ОПЛОДОТВОРЕНИЯ, И ЕГО СВЯЗЬ С КАЧЕСТВОМ ЭМБРИОНА


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель исследования - оценка антиоксидантных свойств фолликулярной жидкости новым хемилюминесцентным методом у женщин со сниженным овариальным резервом и трубным фактором бесплодия, проходящих процедуру экстракорпорального оплодотворения (ЭКО), а также сопоставление полученных данных с качеством эмбриона. Материал и методы. Образцы фолликулярной жидкости получали во время забора ооцитов у 16 женщин со сниженным овариальным резервом и 16 женщин с трубно-перитонеальным фактором бесплодия. Пациентки в обеих группах были сопоставимы по возрасту, индексу массы тела и протоколу гормональной стимуляции (короткий протокол). Измерение антиоксидантной активности фолликулярной жидкости производили методом люминолактивированной хемилюминесценции с использованием 2,2’-азобис(2-амидинопропан) дигидрохлорида в качестве источника радикалов. Определяли общую антиоксидантную активность (АОА) и антиоксидантную активность, обусловленную действием белков (АОА-б). Результаты. Кинетическая кривая хемилюминесценции фолликулярной жидкости аналогична по виду кривой антиоксидантной активности плазмы крови. Как и в плазме крови, антиоксидантная активность обусловлена мочевой кислотой и белками - альбуминами и глобулинами. В результате исследования выделены три группы пациенток: пациентки с низким качеством эмбриона и пониженной антиоксидантной активностью, АОА 11,4 ± 2,5 мМ аскорбата (n = 16); с эмбрионом хорошего качества, АОА 21,4 ± 3,8 мМ (n = 10); с низким качеством эмбриона и повышенной АОА, равной 33,7 ± 2,9 мМ (n = 6). Выводы. Исходя из сопоставления АОА (в единицах аскорбата) с качеством эмбриона, можно предложить три области: 1) зона сниженной антиоксидантной активности (менее 15 мкМ, оксидативный стресс) - у этих пациенток наблюдали эмбрионы плохого качества; 2) зона нормальной АОА (15-30 мкМ) - у пациенток получены эмбрионы хорошего качества; 3) зона повышенной АОА (более 30 мкМ, антиоксидантный стресс) - эмбрионы плохого качества. Таким образом, можно предположить, что для успешного развития эмбрионов в фолликуле требуется оптимальное значение антиоксидантной активности, так как и уменьшение её (окислительный стресс), и увеличение (антиоксидантный стресс) отрицательно сказываются на качестве эмбриона и исходе ЭКО. Эти данные соответствуют современной концепции о том, что для успешного развития ооцита требуется оптимальный уровень продукции активных форм кислорода.

Об авторах

Елена Васильевна Проскурнина

ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»

Email: proskurnina@gmail.com
канд. хим. наук, доц. каф. медицинской биофизики факультета фундаментальной медицины ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова» 119991, г. Москва, Ломоносовский проспект, 27-1

М. А Шестакова

ФГБОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1

А. К Рабаданова

ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»

119991, г. Москва, Ломоносовский проспект, 27-1

М. М Созарукова

ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»

119991, г. Москва, Ломоносовский проспект, 27-1

Р. И Шалина

ФГБОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1

Список литературы

  1. Basuino L., Silveira C.F. Human follicular fluid and effects on reproduction. JBRA Assist. Reprod. 2016; 20: 38-40. doi: 10.5935/1518-0557.20160009.
  2. Neubourg D.D., Robins A., Fishel S., Gibbon L. Flow cytometric analysis of granulosa cells from follicular fluid after follicular stimulation. Hum. Reprod. 1996; 11: 2211-4.
  3. Jancar N., Virant-Klun I., Osredkar J., Vrtacnik Bokal E. Apoptosis, reactive oxygen species and follicular anti-Müllerian hormone in natural versus stimulated cycles. Reprod. Biomed. Online. 2008; 16: 640-8.
  4. Karuputhula N.B., Chattopadhyay R., Chakravarty B., Chaudhury K. Oxidative status in granulosa cells of infertile women undergoing IVF. Syst. Biol. Reprod. Med. 2013; 59: 91-8. doi: 10.3109/19396368.2012.743197.
  5. Hunter R.H.F. (ed.). Physiology of the Graafian Follicle and Ovulation. Cambridge, UK: Cambridge University Press; 2003.
  6. Hanukoglu I. Antioxidant protective mechanisms against reactive oxygen species (ROS) generated by mitochondrial P450 systems in steroidogenic cells. Drug. Metab. Rev. 2006; 38: 171-96. doi: 10.1080/03602530600570040.
  7. Angelucci S., Ciavardelli D., Di Giuseppe F., Eleuterio E., Sulpizio M., Tiboni G.M. et al. Proteome analysis of human follicular fluid. Biochim. Biophys. Acta. 2006; 1764: 1775-85. doi: 10.1016/j.bbapap.2006.09.001.
  8. Carbone M.C., Tatone C., Delle Monache S., Marci R., Caserta D., Colonna R., Amicarelli F. Antioxidant enzymatic defences in human follicular fluid: characterization and age-dependent changes. Mol. Hum. Reprod. 2003; 9: 639-43.
  9. Schweigert F.J., Steinhagen B., Raila J., Siemann A., Peet D., Buscher U. Concentrations of carotenoids, retinol and alpha-tocopherol in plasma and follicular fluid of women undergoing IVF. Hum. Reprod. 2003; 18: 1259-64.
  10. Paszkowski T., Clarke R.N. The Graafian follicle is a site of L-ascorbate accumulation. J. Assist. Reprod. Genet. 1999; 16: 41-5.
  11. Crha I., Hrubá D., Ventruba P., Fiala J., Totusek J., Visnová H. Ascorbic acid and infertility treatment. Cent. Eur. J. Public Hlth. 2003; 11: 63-6.
  12. Tatone C., Carbone M.C., Falone S., Aimola P., Giardinelli A., Caserta D. Age-dependent changes in the expression of superoxide dismutases and catalase are associated with ultrastructural modifications in human granulosa cells. Mol. Hum. Reprod. 2006; 12(11): 655-60.
  13. Prieto L., Quesada J.F., Cambero O., Pacheco A., Pellicer A., Codoceo R., Garcia-Velasco J.A. Analysis of follicular fluid and serum markers of oxidative stress in women with infertility related to endometriosis. Fertil. and Steril. 2012; 98: 126-30. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.03.052.
  14. Singh A.K., Chattopadhyay R., Chakravarty B., Chaudhury K. Markers of oxidative stress in follicular fluid of women with endometriosis and tubal infertility undergoing IVF. Reprod. Toxicol. 2013; 42: 116-24. doi: 10.1016/j.reprotox.2013.08.005.
  15. Zamah A.M., Hassis M.E., Albertolle M.E., Williams K.E. Proteomic analysis of human follicular fluid from fertile women. Clin. Proteomics. 2015; 12: 5. doi: 10.1186/s12014-015-9077-6.
  16. Nuñez-Calonge R., Cortés S., Gutierrez Gonzalez L.M., Kireev R., Vara E., Ortega L. et al. Oxidative stress in follicular fluid of young women with low response compared with fertile oocyte donors. Reprod. Biomed. Online. 2016; 32: 446-56. doi: 10.1016/j.rbmo.2015.12.010.
  17. Oyawoye O., Abdel Gadir A., Garner A., Constantinovici N., Perrett C., Hardiman P. Antioxidants and reactive oxygen species in follicular fluid of women undergoing IVF: relationship to outcome. Hum. Reprod. 2003; 18: 2270-4.
  18. Alekseev A.V., Proskurnina E.V., Vladimirov Y.A. Determination of antioxidants by sensitized chemiluminescence using 2,2’-azo-bis(2-amidinopropane). Moscow University Chemistry Bulletin. 2012; 67(3): 127-32.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© ООО "Эко-Вектор", 2017



Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).