Изменения микробиома как один из факторов развития истмико-цервикальной недостаточности

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Существует гипотеза, что состояние цервиковагинального микробиома женщины может коррелировать с вероятностью таких акушерских осложнений, как истмико-цервикальная недостаточность (ИЦН) и преждевременные роды (ПР). В этом обзоре мы рассмотрели взаимосвязь микробиома и ИЦН. Оказалось, что доминирование в микробиоме Lactobacillus crispatus и, возможно, L. gasseri ассоциировано с доношенной беременностью, тогда как преобладание других видов Lactobacillus и анаэробных бактерий приводит к преждевременному разрыву плодных оболочек и ПР. Стоит обратить внимание на то, что высокое содержание антимикробного пептида β-дефензина 2 даже при отсутствии доминирования L. crispatus также ассоциировано с доношенной беременностью. При изучении цервиковагинальной и амниотической жидкостей женщин, впоследствии родивших преждевременно, выявляется повышение содержания провоспалительных цитокинов, таких как IL-2, IL-8, IL-10 и др. Изменение состава микробиома и повышение иммунного ответа матери приводят к преждевременному ремоделированию и размягчению шейки матки ― то есть к истмико-цервикальной недостаточности. Таким образом, раннее выявление изменений в цервиковагинальном микробиоме, цервиковагинальной и амниотической жидкостях может быть прогностическим маркером ИЦН и ПР.

Об авторах

Камиль Рафаэльевич Бахтияров

Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет)

Автор, ответственный за переписку.
Email: doctorbah@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3176-5589

д-р мед. наук, профессор

Россия, Москва

Афет Шафаятовна Абдулаева

Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет)

Email: abdulaeva.a.00@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-6680-6400

студентка

Россия, Москва

Макка Беслановна Бимурзаева

Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет)

Email: bimakka@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3065-0755

студентка

Россия, Москва

Дарья Владиславовна Королёва

Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет)

Email: dashak1504@gmail.com
ORCID iD: 0009-0009-9093-2103

студентка

Россия, Москва

Полина Игоревна Кузьмина

Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет)

Email: kuzmina_p_i@student.sechenov.ru
ORCID iD: 0009-0004-0098-1774

студентка

Россия, Москва

Список литературы

  1. Preterm Birth. Maternal and Infant Health. Reproductive Health [Internet]. Centers for Disease Control and Prevention, 2020. [дата обращения: 02.01.2024]. Доступ по ссылке:
  2. https://www.cdc.gov/reproductivehealth/maternalinfanthealth/pretermbirth.htm
  3. Fuchs F., Monet B., Ducruet T., Chaillet N., Audibert F. Effect of maternal age on the risk of preterm birth: A large cohort study // PLoS One. 2018. Vol. 13, N. 1. P. e0191002. doi: 10.1371/journal.pone.0191002
  4. Kindinger L.M., Bennett Ph.R., Lee Y.S., et al. The interaction between vaginal microbiota, cervical length, and vaginal progesterone treatment for preterm birth risk // Microbiome. 2017. Vol. 5, N. 1. P. 6. doi: 10.1186/s40168-016-0223-9
  5. Российское общество акушеров-гинекологов. Клинические рекомендации «Истмико-цервикальная недостаточность ― 2021–2022–2023». Утверждены Минздравом РФ. 2021.
  6. Tarca A.L., Fitzgerald W., Chaemsaithong P., et al. The cytokine network in women with an asymptomatic short cervix and the risk of preterm delivery // Am J Reprod Immunol. 2017. Vol. 78, N. 3. P. e12686. doi: 10.1111/aji.12686
  7. The Integrative Human Microbiome Project // Nature. 2019. Vol. 569, N. 7758. P. 641–648. doi: 10.1038/s41586-019-1238-8
  8. Bayar E., Bennett Ph.R., Chan D., Sykes L., MacIntyre D.A. The pregnancy microbiome and preterm birth // Semin Immunopathol. 2020. Vol. 42, N. 4. P. 487–499. doi: 10.1007/s00281-020-00817-w
  9. Conlan S., Kong H.H., Segre J.A. Species-Level Analysis of DNA Sequence Data from the NIH Human Microbiome Project // PLoS One. 2012. Vol. 7, N. 10. P. e47075. doi: 10.1371/journal.pone.0047075
  10. Ravel J., Gajer P., Abdo Z., et al. Vaginal microbiome of reproductive-age women // Proc Natl Acad Sci U S A. 2011. Vol. 108, Suppl. 1. P. 4680–4687. doi: 10.1073/pnas.1002611107
  11. Amabebe E., Anumba D.O.C. The Vaginal Microenvironment: The Physiologic Role of Lactobacilli // Front Med (Lausanne). 2018. Vol. 5. P. 181. doi: 10.3389/fmed.2018.00181
  12. Wang S., Wang Q., Yang E., et al. Antimicrobial Compounds Produced by Vaginal Lactobacillus crispatus Are Able to Strongly Inhibit Candida albicans Growth, Hyphal Formation and Regulate Virulence-related Gene Expressions // Front Microbiol. 2017. Vol. 8. P. 564. doi: 10.3389/fmicb.2017.00564
  13. Назарова В.В., Шипицына Е.В., Шалепо К.В., Савичева А.М. Бактериальные сообщества, формирующие микроэкосистему влагалища в норме и при бактериальном вагинозе // Журнал акушерства и женских болезней. 2017. Т. 66, № 6. С. 30–43. doi: 10.17816/JOWD66630-43
  14. Odogwu N.M., Onebunne C.A., Chen J., et al. Lactobacillus crispatus thrives in pregnancy hormonal milieu in a Nigerian patient cohort // Sci Rep. 2021. Vol. 11, N. 1. P. 18152. doi: 10.1038/s41598-021-96339-y
  15. Hočevar K., Maver A., Vidmar Šimic M., et al. Vaginal Microbiome Signature Is Associated With Spontaneous Preterm Delivery // Front Med (Lausanne). 2019. Vol. 6. P. 201. doi: 10.3389/fmed.2019.00201
  16. MacIntyre D.A., Chandiramani M., Lee Y.S., et al. The vaginal microbiome during pregnancy and the postpartum period in a European population // Sci Rep. 2015. Vol. 5. P. 8988. doi: 10.1038/srep08988
  17. Brown R., Chan D., Terzidou V., et al. Prospective observational study of vaginal microbiota pre- and post-rescue cervical cerclage // BJOG. 2019. Vol. 126, N. 7. P. 916–925. doi: 10.1111/1471-0528.15600
  18. Dols J.A.M., Molenaar D., van der Helm J., et al. Molecular assessment of bacterial vaginosis by Lactobacillus abundance and species diversity // BMC Infect Dis. 2016. Vol. 16. P. 180. doi: 10.1186/s12879-016-1513-3
  19. DiGiulio D.B., Сallahan B.J., McMurdie P.J., et al. Temporal and spatial variation of the human microbiota during pregnancy // Proc Natl Acad Sci U S A. 2015. Vol. 112, N. 35. P. 11060–11065. doi: 10.1073/pnas.1502875112
  20. Stout M.J., Zhou Y., Wylie K.M., et al. Early pregnancy vaginal microbiome trends and preterm birth // Am J Obstet Gynecol. 2017. Vol. 217, N. 3. P. 356.e1–356.e18. doi: 10.1016/j.ajog.2017.05.030
  21. Elovitz M.A., Gajer P., Riis V., et al. Cervicovaginal microbiota and local immune response modulate the risk of spontaneous preterm delivery // Nat Commun. 2019. Vol. 10, N. 1. P. 1305. doi: 10.1038/s41467-019-09285-9
  22. Fettweis J.M., Serrano M.G., Brooks J.P., et al. The vaginal microbiome and preterm birth // Nat Med. 2019. Vol. 25, N. 6. P. 1012–1021. doi: 10.1038/s41591-019-0450-2
  23. Callahan B.J., DiGiulio D.B., Goltsman D.S.A., et al. Replication and refinement of a vaginal microbial signature of preterm birth in two racially distinct cohorts of US women // Proc Natl Acad Sci U S A. 2017. Vol. 114, N. 37. P. 9966–9971. doi: 10.1073/pnas.1705899114
  24. Burris H.H., Riis V.M., Schmidt I., et al. Maternal stress, low cervicovaginal β-defensin, and spontaneous preterm birth // Am J Obstet Gynecol MFM. 2020. Vol. 2, N. 2. P. 100092. doi: 10.1016/j.ajogmf.2020.100092
  25. Gerson K.D., McCarthy C., Elovitz M.A., et al. Cervicovaginal microbial communities deficient in Lactobacillus species are associated with second trimester short cervix // Am J Obstet Gynecol. 2020. Vol. 222, N. 5. P. 491.e1–491.e8. doi: 10.1016/j.ajog.2019.11.1283
  26. Abdelmaksoud A.A., Koparde V.N., Shethet N.U., et al. Comparison of Lactobacillus crispatus isolates from Lactobacillus-dominated vaginal microbiomes with isolates from microbiomes containing bacterial vaginosis-associated bacteria // Microbiology (Reading). 2016. Vol. 162, N. 3. P. 466–475. doi: 10.1099/mic.0.000238
  27. Di Paola M., Seravalli V., Paccosi S., et al. Identification of Vaginal Microbial Communities Associated with Extreme Cervical Shortening in Pregnant Women // J Clin Med. 2020. Vol. 9, N. 11. P. 3621. doi: 10.3390/jcm9113621
  28. Stafford G.P., Parker J.L., Amabebe E., et al. Spontaneous Preterm Birth Is Associated with Differential Expression of Vaginal Metabolites by Lactobacilli-Dominated Microflora // Front Physiol. 2017. Vol. 8. P. 615. doi: 10.3389/fphys.2017.00615
  29. Anton L., Sierra L.-J., DeVine A., et al. Common Cervicovaginal Microbial Supernatants Alter Cervical Epithelial Function: Mechanisms by Which Lactobacillus crispatus Contributes to Cervical Health // Front Microbiol. 2018. Vol. 9. P. 2181. doi: 10.3389/fmicb.2018.02181
  30. Campisciano G., Zanotta N., Licastro D., De Seta F., Comar M. In vivo microbiome and associated immune markers: New insights into the pathogenesis of vaginal dysbiosis // Sci Rep. 2018. Vol. 8. P. 2307. doi: 10.1038/s41598-018-20649-x
  31. Sierra L.-J., Brown A.G., Barila G.O., et al. Colonization of the cervicovaginal space with Gardnerella vaginalis leads to local inflammation and cervical remodeling in pregnant mice // PLoS One. 2018. Vol. 13, N. 1. P. e0191524. doi: 10.1371/journal.pone.0191524
  32. Kim Y.M., Park K.H., Park H., et al. Complement C3a, But Not C5a, Levels in Amniotic Fluid Are Associated with Intra-amniotic Infection and/or Inflammation and Preterm Delivery in Women with Cervical Insufficiency or an Asymptomatic Short Cervix (≤ 25 mm) // J Korean Med Sci. 2018. Vol. 33, N. 35. P. e220. doi: 10.3346/jkms.2018.33.e220
  33. Galaz J., Romero R., Xu Y., et al. Cellular immune responses in amniotic fluid of women with a sonographic short cervix // J Perinat Med. 2020. Vol. 48, N. 7. P. 665–676. doi: 10.1515/jpm-2020-0037
  34. Lim E.S., Rodriguez C., Holtz L.R. Amniotic fluid from healthy term pregnancies does not harbor a detectable microbial community // Microbiome. 2018. Vol. 6, N. 1. P. 87. doi: 10.1186/s40168-018-0475-7
  35. Witkin S.S., Moron A.F., Ridenhour B.J., et al. Vaginal Biomarkers That Predict Cervical Length and Dominant Bacteria in the Vaginal Microbiomes of Pregnant Women // mBio. 2019. Vol. 10, N. 5. P. e02242-19. doi: 10.1128/mBio.02242-19
  36. Yoo H.-N., Park K.H., Jung E.Y., et al. Non-invasive prediction of preterm birth in women with cervical insufficiency or an asymptomatic short cervix (≤25 mm) by measurement of biomarkers in the cervicovaginal fluid // PLoS One. 2017. Vol. 12, N. 7. P. e0180878. doi: 10.1371/journal.pone.0180878
  37. Dymanowska-Dyjak I., Stupak A., Kondracka A., et al. Elastography and Metalloproteinases in Patients at High Risk of Preterm Labor // J Clin Med. 2021. Vol. 10, N. 17. P. 3886. doi: 10.3390/jcm10173886
  38. Brown R.G., Marchesi J.R., Lee Y.S., et al. Vaginal dysbiosis increases risk of preterm fetal membrane rupture, neonatal sepsis and is exacerbated by erythromycin // BMC Med. 2018. Vol. 16, N. 1. P. 9. doi: 10.1186/s12916-017-0999-x
  39. Peaceman A.M., Lai Y., Rouse D.J., et al. Length of latency with preterm premature rupture of membranes before 32 weeks’ gestation // Am J Perinatol. 2015. Vol. 32, N. 1. P. 57–62. doi: 10.1055/s-0034-1373846
  40. Preterm labour and birth. NICE guideline [NG25] [Internet]. Recommendations. National Institute for Health and Care Excellence, 20 November 2015. [дата обращения: 04.01.2024]. Доступ по ссылке: https://www.nice.org.uk/guidance/ng25/chapter/Recommendations#intrapartum-antibiotics

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Эко-Вектор, 2024



Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).