Тканеспецифичность экспрессии и альтернативный сплайсинг гена белка активации фибробластов альфа (FAPα) в стромальных клетках человека
- Авторы: Толстолужинская А.Е.1, Басалова Н.А.1, Карагяур М.Н.1, Ефименко А.Ю.1
-
Учреждения:
- Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
- Выпуск: Том 20, № 1 (2025)
- Страницы: 54-67
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://ogarev-online.ru/2313-1829/article/view/291062
- DOI: https://doi.org/10.17816/gc636876
- ID: 291062
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Белок активации фибробластов альфа (fibroblast activation protein alpha, FAPα) является ключевым маркёром активированных стромальных клеток, которые играют важную роль в репарации и восстановлении целостности тканей после повреждений. По-видимому, FAPα участвует в регуляции функций стромальных клеток, особенно при развитии фиброза. Однако мало что известно о тканевых различиях в экспрессии и возможных сплайс-вариантах этого белка в стромальных клетках.
Цель исследования — установить тканеспецифичность экспрессии FAPα, включая синтез продуктов альтернативного сплайсинга, в стромальных клетках человека, выделенных из разных источников.
Методы. С помощью полимеразной цепной реакции в реальном времени анализировали экспрессию отдельных участков гена, кодирующих функциональные домены белка FAPα, в стромальных клетках человека, выделенных из пяти тканевых источников, которые различаются по эмбриональному происхождению и репаративным реакциям на повреждение (кожа, подкожная жировая ткань, жировая ткань орбиты, лёгкие, эндометрий). Для активации стромальных клеток использовали ключевой профибротический фактор — трансформирующий фактор роста бета.
Результаты. В стромальных клетках из кожи, лёгких и жировой ткани отмечается низкая фоновая экспрессия всех последовательностей рибонуклеиновой кислоты (РНК), кодирующих функциональные домены FAPα, которые отвечают за конфигурацию белка или за его ферментативные функции. Их экспрессия значимо (в 2–2,5 раза) повышается при индукции активации стромальных клеток с помощью трансформирующего фактора роста бета. В эндометриальных мезенхимных стромальных клетках экспрессия этих участков крайне низка и сопоставима с уровнем экспрессии в эпителиальных клетках, что указывает на наличие тканеспецифичности экспрессии гена FAPα в стромальных клетках. Во всех линиях стромальных клеток наблюдается повышение относительного уровня экспрессии последовательности РНК, кодирующей трансмембранный домен FAPα.
Заключение. Полученные результаты позволяют предположить, что в проанализированных клеточных линиях альтернативный сплайсинг FAPα либо отсутствует, либо проявляется с очень низкой вероятностью при их активации в виде относительного повышения экспрессии участка гена, кодирующего трансмембранный домен FAPα. Вероятнее всего, исследуемые стромальные клетки синтезируют матричную РНК, несущую все исходные экзоны и кодирующую преимущественно полный белок FAPα (включает в себя все функциональные домены).
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Анастасия Евгеньевна Толстолужинская
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Автор, ответственный за переписку.
Email: tolstoluzhinskayaae@my.msu.ru
ORCID iD: 0000-0001-8362-2902
SPIN-код: 6592-9889
Россия, Москва
Наталия Андреевна Басалова
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Email: basalovana@my.msu.ru
ORCID iD: 0000-0002-2597-8879
SPIN-код: 2448-4671
канд. биол. наук
Россия, МоскваМаксим Николавевич Карагяур
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Email: m.karagyaur@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4289-3428
SPIN-код: 9504-4257
Анастасия Юрьевна Ефименко
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Email: efimenkoan@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0696-1369
SPIN-код: 5110-5998
канд. мед. наук
Россия, МоскваСписок литературы
- Henderson NC, Rieder F, Wynn TA. Fibrosis: from mechanisms to medicines. Nature. 2020;587(7835):555–566. doi: 10.1038/s41586-020-2938-9 EDN: KNAIWV
- Herrera J, Henke CA, Bitterman PB. Extracellular matrix as a driver of progressive fibrosis. J Clin Invest. 2018;128(1):45–53. doi: 10.1172/JCI93557
- Acharya PS, Zukas A, Chandan V, et al. Fibroblast activation protein: a serine protease expressed at the remodeling interface in idiopathic pulmonary fibrosis. Hum Pathol. 2006;37(3):352–360. doi: 10.1016/j.humpath.2005.11.020
- Hu HH, Chen DQ, Wang YN, et al. New insights into TGF-β/Smad signaling in tissue fibrosis. Chem Biol Interact. 2018;292:76–83. doi: 10.1016/j.cbi.2018.07.008
- Kanisicak O, Khalil H, Ivey MJ, et al. Genetic lineage tracing defines myofibroblast origin and function in the injured heart. Nat Commun. 2016;7:12260. doi: 10.1038/ncomms12260
- Ugurlu B, Karaoz E. Comparison of similar cells: Mesenchymal stromal cells and fibroblasts. Acta Histochem. 2020;122(8):151634. doi: 10.1016/j.acthis.2020.151634 EDN: LTJEXX
- Kilvaer TK, Rakaee M, Hellevik T, et al. Tissue analyses reveal a potential immune-adjuvant function of FAP-1 positive fibroblasts in non-small cell lung cancer. PLoS One. 2018;13(2):e0192157. doi: 10.1371/journal.pone.0192157
- Yang P, Luo Q, Wang X, et al. Comprehensive analysis of fibroblast activation protein expression in interstitial lung diseases. Am J Respir Crit Care Med. 2023;207(2):160–172. doi: 10.1164/rccm.202110-2414OC EDN: NUYIKK
- Kimura T, Monslow J, Klampatsa A, et al. Loss of cells expressing fibroblast activation protein has variable effects in models of TGF-β and chronic bleomycin-induced fibrosis. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2019;317(2):L271–L282. doi: 10.1152/ajplung.00071.2019
- O’Brien P, O’Connor BF. Seprase: an overview of an important matrix serine protease. Biochim Biophys Acta. 2008;1784(9):1130–1145. doi: 10.1016/j.bbapap.2008.01.006
- Zhang HE, Hamson EJ, Koczorowska MM, et al. Identification of novel natural substrates of fibroblast activation protein-alpha by differential degradomics and proteomics. Mol Cell Proteomics. 2019;18(1):65–85. doi: 10.1074/mcp.RA118.001046
- Xin L, Gao J, Zheng Z, et al. Fibroblast activation protein-α as a target in the bench-to-bedside diagnosis and treatment of tumors: a narrative review. Front Oncol. 2021;11:648187. doi: 10.3389/fonc.2021.648187 EDN: CSKJMI
- Fan MH, Zhu Q, Li HH, et al. Fibroblast activation protein (FAP) accelerates collagen degradation and clearance from lungs in mice. J Biol Chem. 2016;291(15):8070–8089. doi: 10.1074/jbc.M115.701433
- Aertgeerts K, Levin I, Shi L, et al. Structural and kinetic analysis of the substrate specificity of human fibroblast activation protein alpha. J Biol Chem. 2005;280(20):19441–19444. doi: 10.1074/jbc.C500092200
- Fitzgerald AA, Weiner LM. The role of fibroblast activation protein in health and malignancy. Cancer Metastasis Rev. 2020;39(3):783–803. doi: 10.1007/s10555-020-09909-3 EDN: GFJRDK
- Goldstein LA, Chen WT. Identification of an alternatively spliced seprase mRNA that encodes a novel intracellular isoform. J Biol Chem. 2000;275(4):2554–2559. doi: 10.1074/jbc.275.4.2554
- Niedermeyer J, Enenkel B, Park JE, et al. Mouse fibroblast-activation protein — conserved Fap gene organization and biochemical function as a serine protease. Eur J Biochem. 1998;254(3):650–654. doi: 10.1046/j.1432-1327.1998.2540650.x
- Eremichev SH, Yang HJ, Kim DS, et al. Clinical efficacy of retrograde urethrogra-phy-assisted urethral catheterization after failed conventional urethral catheterization. BMC Urol. 2021;21(1):17. doi: 10.1186/s12894-021-00788-6 EDN: YWRTPN
- Livak KJ, Schmittgen TD. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) method. Methods. 2001;25(4):402–408. doi: 10.1006/meth.2001.1262
- Gorrell MD, Gysbers V, McCaughan GW. CD26: a multifunctional integral membrane and secreted protein of activated lymphocytes. Scand J Immunol. 2001;54(3):249–264. doi: 10.1046/j.1365-3083.2001.00984.x EDN: BAUZCV
- Barbosa-Morais NL, Irimia M, Pan Q, et al. The evolutionary landscape of alternative splicing in vertebrate species. Science. 2012;338(6114):1587–1593. doi: 10.1126/science.1230612 EDN: RJWAAB
- Will CL, Lührmann R. Spliceosome structure and function. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2011;3(7):a003707. doi: 10.1101/cshperspect.a003707
- Marasco LE, Kornblihtt AR. The physiology of alternative splicing. Nat Rev Mol Cell Biol. 2023;24(4):242–254. doi: 10.1038/s41580-022-00545-z EDN: KNCVSZ
- Liu Q, Fang L, Wu C. Alternative splicing and isoforms: from mechanisms to diseases. Genes (Basel). 2022;13(3):401. doi: 10.3390/genes13030401 EDN: RWIXTU
- Roberts α from skeletal muscle and bone marrow results in cachexia and anemia. J Exp Med. 2013;210(6):1137–1151. doi: 10.1084/jem.20122344
- Meletta R, Müller Herde A, Chiotellis A, et al. Evaluation of the radiolabeled boronic acid-based FAP inhibitor MIP-1232 for atherosclerotic plaque imaging. Molecules. 2015;20(2):2081–2099. doi: 10.3390/molecules20022081
- Harvey SE, Lyu J, Cheng C. Methods for characterization of alternative RNA splicing. Methods Mol Biol. 2021;2372:209–222. doi: 10.1007/978-1-0716-1697-0_19
- Ang CJ, Skokan TD, McKinley KL. Mechanisms of regeneration and fibrosis in the endometrium. Annu Rev Cell Dev Biol. 2023;39:197–221. doi: 10.1146/annurev-cellbio-011723-021442 EDN: CAHZNB
Дополнительные файлы
