Молекулярно-генетическая характеристика коллекционных штаммов LEPTOSPIRA spp. Санкт-Петербургского института Пастера на основе данных секвенирования гена 16S рРНК

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Лептоспироз является распространенным практически по всему миру зооантропонозным заболеванием. Эталонным методом для серологической диагностики лептоспироза является реакция микроскопической агглютинации с живыми лептоспирами (РМА). Этот метод основан на оценке способности сыворотки агглютинировать живые бактерии Leptospira эталонных сероваров, поддерживаемых в референс-лаборатории. В лабораториях, которые имеют коллекцию собственных изолированных и референсных штаммов Leptospira, используемых для серологической диагностики, эти микроорганизмы сохраняются в течение многих лет путем повторного пассирования, что значительно увеличивает шансы кросс-контаминации штаммов. Отсутствие адекватного контроля качества референсных штаммов может отрицательно повлиять на эпидемиологические исследования. Контроль чистоты и постоянства антигенного состава референсных штаммов Leptospira spp. имеет большое значение для диагностики лептоспироза. Целью данного исследования было сравнение нуклеотидных последовательностей гена 16S, некоторых коллекционных штаммов лептоспир Санкт-Петербургского Института им. Пастера, с последовательностями, загруженными в международную базу данных. В работе были изучены 38 штаммов лептоспир. Нуклеотидные последовательности 36 штаммов были депонированы в международную базу данных GenBank, в двух штаммах были обнаружены несоответствия. В результате исследования установлено, что контрольные штаммы Leptospira из коллекции Санкт-Петербургского института Пастера имеют минимальные отличия от международных контрольных штаммов. Анализ полученных последовательностей региона 16S рРНК, показал наличие точечных мутаций, транзиций, делеций и инсерций, независимо от видовой принадлежности штамма. Открытый пангеном лептоспир демонстрирует высокую геномную вариабельность у видов, что обусловлено способностью лептоспир к латеральному переносу генов, с целью приспособления к изменяющимся условиям среды. Массовое приобретение и потеря генов ведут к увеличению разнообразия видов. Ген 16S рРНК подходит для скрининговой диагностики, однако высокое сходство данного фрагмента и тесное филогенетическое родство разных видов ограничивает его использование для генотипирования. Наличие точечных нуклеотидных мутаций вероятнее всего связано с эволюционными механизмами лептоспир, их способностью к горизонтальному переносу генов и кроссинговеру, в том числе и рибосомальных генов, однако это предположение обуславливает необходимость проведения дополнительных исследований. Для генотипирования образцов необходим подбор альтернативных генов, с высокой специфичностью и достаточным уровнем дивергенции нуклеотидов. Проведенное исследование показывает необходимость проведения генетического анализа коллекционных штаммов с целью контроля чистоты культур.

Об авторах

Р. Р. Баимова

ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Автор, ответственный за переписку.
Email: baimova@pasteurorg.ru

младший научный сотрудник лаборатории зооантропонозных инфекций

Россия, Санкт-Петербург

Ю. В. Останкова

ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Email: baimova@pasteurorg.ru

к.б.н., зав. лабораторией иммунологии и вирусологии ВИЧ-инфекции; старший научный сотрудник лаборатории молекулярной иммунологии

Россия, Санкт-Петербург

О. В. Блинова

ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Email: baimova@pasteurorg.ru

к.х.н., младший научный сотрудник лаборатории зооантропонозных инфекций

Россия, Санкт-Петербург

Н. А. Стоянова

ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Email: baimova@pasteurorg.ru

к.м.н., ведущий научный сотрудник лаборатории зооантропонозных инфекций

Россия, Санкт-Петербург

Н. К. Токаревич

ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Email: baimova@pasteurorg.ru

д.м.н., профессор, зав. лабораторией зооантропонозных инфекций 

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Киселева Е.Ю., Бренева Н.В., Лемешевская М.В., Бурданова Т.М. Завозной случай лептоспироза с летальным исходом из Вьетнама в Иркутскую область // Инфекционные болезни. 2014. Т. 12, № 3. С. 95–99. [Kiseleva E.Yu., Breneva N.V., Lemeshevskaya M.V., Burdanova T.M. An imported case of leptospirosis with a lethal outcome from Vietnam to the Irkutsk region. Infektsionnye bolezni = Infectious Diseases, 2014, vol. 12, no. 3, pp. 95–99. (In Russ.)]
  2. Самсонова А.П., Петров Е.М., Савельева О.В., Иванова А.Е., Шарапова Н.Е. Анализ документированных результатов исследования сывороток крови больных, подозрительных на заболевание лептоспирозами, в реакции микроагглютинации // Инфекция и иммунитет. 2022. Т. 12, № 5. C. 875–890. [Samsonova A.P., Petrov E.M., Savelyeva O.V., Ivanova A.E., Sharapova N.E. Analyzying the documented results by using microscopic agglutination test to examine sera from patients suspected of leptospirosis. Infektsiya i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2022, vol. 12, no. 5, pp. 875–890. (In Russ.)] doi: 10.15789/2220-7619-ATD-1758
  3. Соболева Г.Л., Ананьина Ю.В., Непоклонова И.В. Актуальные вопросы лептоспироза людей и животных // Российский ветеринарный журнал. 2017. № 8. С. 14–18. [Soboleva G.L., Ananyina Y.V., Nepoklonova I.V. Actual problems of human and animal leptospirosis. Rossijskij veterinarnyj zhurnal = Russian Veterinary Journal, 2017, no. 8, pp. 14–18. (In Russ.)]
  4. Стоянова H.A., Токаревич H.K., Волкова Г.В., Грачева H.A., Кравченко С.С., Кузина Н.В., Лисеева T.M., Мациевская Е.A., Пьяных В.А., Снегирев В.И., Сосницкий В.И. Актуальные проблемы лептоспирозной инфекции в Северо-Западном федеральном округе // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2003. № 4 (11). С. 29–32. [Stoianova N., Tokarevich N., Gracheva L., Volkova G., Gracheva N., Kravchenko S., Kuzina N., Liseeva T., Matsievskaya E., Snegirev V., Sosnitsky V. Actual problems of leptospirosis infection in the Northwestern Federal District. Epidemiologiya i vaktsinoprofilaktika = Epidemiology and Vaccinal Prevention, 2003, no. 4 (11), pp. 29–32. (In Russ.)]
  5. Стоянова Н.А., Сергейко Л.М., Слепцова В.И. Иммунологический мониторинг и эпидемические особенности лептоспироза в Санкт-Петербурге // Микробиология эпидемиология и иммунобиология. 1996. № 6. С. 120–122. [Stoianova N., Sergeĭko L., Sleptsova V. Immunological monitoring and the epidemiological characteristics of leptospirosis in Saint Petersburg. Mikrobiologiya epidemiologiya i immunobiologiya = Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology, 1996, no. 6, pp. 120–122. (In Russ.)]
  6. Токаревич Н.К., Стоянова Н.А. Эпидемиологические аспекты антропогенного влияния на эволюцию лептоспирозов // Инфекция и иммунитет. 2011. Т. 1, № 1. С. 67–76. [Tokarevich N.K., Stoyanova N.A. Epidemiological aspects of anthropogenic influence to leptospirosis evolution. Infektsiia i immunitet = Russian Journal of Infection and Immunity, 2011, vol. 1, no. 1, pp. 67–76. (In Russ.)] doi: 10.15789/2220-7619-2011-1-67-76
  7. Behera S.K., Sabarinath T., Ganesh B., Mishra P.K.K., Niloofa R., Senthilkumar K., Verma M.R., Hota A., Chandrasekar S., Deneke Y., Kumar A., Nagarajan M., Das D., Khatua S., Sahu R., Ali S.A. Diagnosis of human leptospirosis: comparison of microscopic agglutination test with recombinant LigA/B antigen-based In-house IgM dot ELISA dipstick test and latex agglutination test using bayesian latent class model and MAT as gold standard. Diagnostics (Basel), 2022, vol. 12, no. 6: 1455. doi: 10.3390/diagnostics12061455
  8. Bharti A.R., Nally J.E., Ricaldi J.N., Matthias M.A., Diaz M.M., Lovett M.A., Levett P.N., Gilman R.H., Willig M.R., Gotuzzo E., Vinetz J.M.; Peru-United States Leptospirosis Consortium. Leptospirosis: a zoonotic disease of global importance. Lancet Infect. Dis., 2003, vol. 3, no. 12, pp. 757–771. doi: 10.1016/s1473-3099(03)00830-2
  9. Boonsilp S., Thaipadungpanit J., Amornchai P., Wuthiekanun V., Bailey M.S., Holden M.T., Zhang C., Jiang X., Koizumi N., Taylor K., Galloway R., Hoffmaster A.R., Craig S., Smythe L.D., Hartskeerl R.A., Day N.P., Chantratita N., Feil E.J., Aanensen D.M., Spratt B.G., Peacock S.J. A single multilocus sequence typing (MLST) scheme for seven pathogenic Leptospira species. PLoS Negl. Trop. Dis., 2013, vol. 7, no. 1: e1954. doi: 10.1371/journal.pntd.0001954
  10. Bourhy P., Collet L., Brisse S., Picardeau M. Leptospira mayottensis sp. nov., a pathogenic species of the genus Leptospira isolated from humans. Int. J. Syst. Evol. Microbiol., 2014, vol. 64, pt. 12, pp. 4061–4067. doi: 10.1099/ijs.0.066597-0
  11. Brenner D.J., Kaufmann A.F., Sulzer K.R., Steigerwalt A.G., Rogers F.C., Weyant R.S. Further determination of DNA relatedness between serogroups and serovars in the family Leptospiraceae with a proposal for Leptospira alexanderi sp. nov. and four new Leptospira genomospecies. Int. J. Syst. Bacteriol., 1999, vol. 49, pt. 2, pp. 839–858.doi: 10.1099/00207713-49-2-839
  12. Cerqueira G.M., McBride A.J., Queiroz A., Pinto L.S., Silva E.F., Hartskeerl R.A., Reis M.G., Ko A.I., Dellagostin O.A. Monitoring Leptospira strain collections: the need for quality control. Am. J. Trop. Med. Hyg., 2010, vol. 82, no. 1, pp. 83–87. doi: 10.4269/ajtmh.2010.09-0558
  13. Chappel R.J., Goris M., Palmer M.F., Hartskeerl R.A. Impact of proficiency testing on results of the microscopic agglutination test for diagnosis of leptospirosis. J. Clin. Microbiol., 2004, vol. 42, no. 12, pp. 5484–5488. doi: 10.1128/JCM.42.12.5484-5488.2004
  14. Chen H.W., Lukas H., Becker K., Weissenberger G., Halsey E.S., Guevara C., Canal E., Hall E., Maves R.C., Tilley D.H., Kuo L., Kochel T.J., Ching W.M. An improved enzyme-linked immunoassay for the detection of Leptospira-specific antibodies. Am. J. Trop. Med. Hyg., 2018, vol. 99, no. 2, pp. 266–274. doi: 10.4269/ajtmh.17-0057
  15. Clarridge J.E. 3rd. Impact of 16S rRNA gene sequence analysis for identification of bacteria on clinical microbiology and infectious diseases. Clin. Microbiol. Rev., 2004, vol. 17, no. 4, pp. 840–862. doi: 10.1128/CMR.17.4.840-862.2004
  16. Costa F. , Hagan J.E., Calcagno J., Kane M., Torgerson P., Martinez-Silveira M.S., Stein C., Abela-Ridder B., Ko A.I. Global morbidity and mortality of Leptospirosis: a systematic review. PLoS Negl. Trop. Dis., 2015, vol. 9, no. 9: e0003898. doi: 10.1371/journal.pntd.0003898
  17. Di Azevedo M.I.N., Lilenbaum W. An overview on the molecular diagnosis of animal leptospirosis. Lett. Appl. Microbiol., 2021, vol. 72, no. 5, pp. 496–508. doi: 10.1111/lam.13442
  18. Faine S., Adler B., Bolin C., Perolat P. “Leptospira” and leptospirosis. Melbourne: MediSci, 1999. 295 p.
  19. Fortes-Gabriel E., Guedes M.S., Shetty A., Gomes C.K., Carreira T., Vieira M.L., Esteves L., Mota-Vieira L., Gomes-Solecki M. Enzyme immunoassays (EIA) for serodiagnosis of human leptospirosis: specific IgG3/IgG1 isotyping may further inform diagnosis of acute disease. PLoS Negl. Trop. Dis., 2022, vol. 16, no. 2: e0010241. doi: 10.1371/journal.pntd.0010241
  20. Fouts D.E., Matthias M.A., Adhikarla H., Adler B., Amorim-Santos L., Berg D.E., Bulach D., Buschiazzo A., Chang Y.F., Galloway R.L., Haake D.A., Haft D.H., Hartskeerl R., Ko A.I., Levett P.N., Matsunaga J., Mechaly A.E., Monk J.M., Nascimento A.L., Nelson K.E., Palsson B., Peacock S.J., Picardeau M., Ricaldi J.N., Thaipandungpanit J., Wunder E.A. Jr., Yang X.F., Zhang J.J., Vinetz J.M. What makes a bacterial species pathogenic? Comparative genomic analysis of the genus Leptospira. PLoS Negl. Trop. Dis., 2016, vol. 10, no. 2: e0004403. doi: 10.1371/journal.pntd.0004403
  21. Ghazaei C. Pathogenic Leptospira: advances in understanding the molecular pathogenesis and virulence. Open Vet. J., 2018, vol. 8, no. 1, pp. 13–24. doi: 10.4314/ovj.v8i1.4
  22. Guedes I.B., de Souza G.O., de Paula Castro J.F., Cavalini M.B., de Souza Filho A.F., Maia A.L.P., Dos Reis E.A., Cortez A., Heinemann M.B. Leptospira interrogans serogroup Pomona strains isolated from river buffaloes. Trop. Anim. Health Prod., 2021, vol. 53, no. 2: 194. doi: 10.1007/s11250-021-02623-4
  23. Guernier V., Allan K.J., Goarant C. Advances and challenges in barcoding pathogenic and environmental Leptospira. Parasitology, 2018, vol. 145, no. 5, pp. 595–607. doi: 10.1017/S0031182017001147
  24. Haake D.A., Suchard M.A., Kelley M.M., Dundoo M., Alt D.P., Zuerner R.L. Molecular evolution and mosaicism of leptospiral outer membrane proteins involves horizontal DNA transfer. J. Bacteriol., 2004, vol. 186, no. 9, pp. 2818–2828. doi: 10.1128/JB.186.9.2818-2828.2004
  25. Hookey J.V., Bryden J., Gatehouse L. The use of 16S rDNA sequence analysis to investigate the phylogeny of Leptospiraceae and related spirochaetes. J. Gen. Microbiol., 1993, vo. 139, no. 11, pp. 2585–2590. doi: 10.1099/00221287-139-11-2585
  26. Jayasundara D., Senavirathna I., Warnasekara J., Gamage C., Siribaddana S., Kularatne S.A.M., Matthias M., Mariet J.F., Picardeau M., Agampodi S., M Vinetz J. 12 novel clonal groups of Leptospira infecting humans in multiple contrasting epidemiological contexts in Sri Lanka. PLoS Negl. Trop. Dis., 2021, vol. 15, no. 3: e0009272. doi: 10.1371/journal.pntd.0009272
  27. Khodaverdi Darian E., Forghanifard M.M., Moradi Bidhendi S., Chang Y.F., Yahaghi E., Esmaelizad M., Khaleghizadeh M., Khaki P. Cloning and sequence analysis of LipL32, a surface-exposed lipoprotein of pathogenic Leptospira spp. Iran. Red Crescent Med. J., 2013, vol. 15, no. 11: e8793.
  28. Kmety E., Dikken H. Classification of the species Leptospira interrogans and history of its serovars. Groningen: University Press Groningen, 1993. 104 p.
  29. Ko A.I., Goarant C., Picardeau M. Leptospira: the dawn of the molecular genetics era for an emerging zoonotic pathogen. Nat. Rev. Microbiol., 2009, vol. 7, no. 10, pp. 736–747. doi: 10.1038/nrmicro2208
  30. Lam J.Y., Low G.K., Chee H.Y. Diagnostic accuracy of genetic markers and nucleic acid techniques for the detection of Leptospira in clinical samples: a meta-analysis. PLoS Negl. Trop. Dis., 2020, vol. 14, no 2: e0008074. doi: 10.1371/journal.pntd.0008074
  31. Landolt N.Y., Chiani Y.T., Pujato N., Jacob P., Schmeling M.F., García Effron G., Vanasco N.B. Utility evaluation of two molecular methods for Leptospira spp. typing in human serum samples. Heliyon, 2022, vol. 9, no. 2: e12564. doi: 10.1016/j.heliyon.2022.e12564
  32. Levett P.N. Leptospirosis. Clin. Microbiol. Rev., 2001, vol. 14, no. 2, pp. 296–326. doi: 10.1128/CMR.14.2.296-326.2001
  33. Masuzawa T., Sakakibara K., Saito M., Hidaka Y., Villanueva S.Y.A.M., Yanagihara Y., Yoshida S.I. Characterization of Leptospira species isolated from soil collected in Japan. Microbiol. Immunol., 2018, vol. 62, no. 1, pp. 55–59. doi: 10.1111/1348-0421.12551
  34. Morey R.E., Galloway R.L., Bragg S.L., Steigerwalt A.G., Mayer L.W., Levett P.N. Species-specific identification of Leptospiraceae by 16S rRNA gene sequencing. J. Clin. Microbiol., 2006, vol. 44, no. 10, pp. 3510–3516. doi: 10.1128/JCM.00670-06
  35. Philip N., Bahtiar Affendy N., Ramli S.N.A., Arif M., Raja P., Nagandran E., Renganathan P., Taib N.M., Masri S.N., Yuhana M.Y., Than L.T.L., Seganathirajah M., Goarant C., Goris M.G.A., Sekawi Z., Neela V.K. Leptospira interrogans and Leptospira kirschneri are the dominant Leptospira species causing human leptospirosis in Central Malaysia. PLoS Negl. Trop. Dis., 2020, vol. 14, no. 3: e0008197. doi: 10.1371/journal.pntd.0008197
  36. Picardeau M. Virulence of the zoonotic agent of leptospirosis: still terra incognita? Nat. Rev. Microbiol., 2017, vol. 15, no. 5, pp. 297–307. doi: 10.1038/nrmicro.2017.5
  37. Picardeau M. Leptospira and Leptospirosis. Methods Mol. Biol., 2020, vol. 2134, pp. 271–275. doi: 10.1007/978-1-0716-0459-5_24
  38. Postic D., Riquelme-Sertour N., Merien F., Perolat P., Baranton G. Interest of partial 16S rDNA gene sequences to resolve heterogeneities between Leptospira collections: application to L. meyeri. Res. Microbiol., 2000, vol. 151, no. 5, pp. 333–341. doi: 10.1016/s0923-2508(00)00156-x
  39. Rajapakse S. Leptospirosis: clinical aspects. Clin. Med. (Lond), 2022, vol. 22, no. 1, pp. 14–17. doi: 10.7861/clinmed.2021-0784
  40. Slack A.T., Symonds M.L., Dohnt M.F., Smythe L.D. Identification of pathogenic Leptospira species by conventional or real-time PCR and sequencing of the DNA gyrase subunit B encoding gene. BMC Microbiol., 2006, vol. 6: 95. doi: 10.1186/1471-2180-6-95
  41. Stimson A.M. Note on an organism found in yellow-fever tissue. Public Health Reports, 1907, vol. 22, no. 18, p. 541. doi: 10.2307/4559008
  42. Strutzberg-Minder K., Ullerich A., Dohmann K., Boehmer J., Goris M. Comparison of two Leptospira type strains of serovar Grippotyphosa in Microscopic Agglutination Test (MAT) diagnostics for the detection of infections with Leptospires in horses, dogs and pigs. Vet. Sci., 2022, vol. 9, no. 9: 464. doi: 10.3390/vetsci9090464
  43. Sugunan A.P., Vijayachari P., Sharma S., Roy S., Manickam P., Natarajaseenivasan K., Gupte M.D., Sehgal S.C. Risk factors associated with leptospirosis during an outbreak in Middle Andaman, India. Indian J. Med. Res., 2009, vol. 130, vol. 1, pp. 67–73.
  44. Sykes J.E., Gamage C.D., Haake D.A., Nally J.E. Understanding leptospirosis: application of state-of-the-art molecular typing tools with a One Health lens. Am. J. Vet. Res., 2022, vol. 83, no. 10: ajvr.22.06.0104. doi: 10.2460/ajvr.22.06.0104
  45. Torgerson P.R., Hagan J.E., Costa F., Calcagno J., Kane M., Martinez-Silveira M.S., Goris M.G., Stein C., Ko A.I., Abela-Ridder B. Global burden of Leptospirosis: estimated in terms of disability adjusted life years. PLoS Negl. Trop. Dis., 2015, vol. 9, no. 10: e0004122. doi: 10.1371/journal.pntd.0004122
  46. Zhang C., Yang H., Li X., Cao Z., Zhou H., Zeng L., Xu J., Xu Y., Chang Y.F., Guo X., Zhu Y., Jiang X. Molecular typing of pathogenic Leptospira serogroup Icterohaemorrhagiae strains circulating in China during the past 50 years. PLoS Negl. Trop. Dis., 2015, vol. 9, no. 5: e0003762. doi: 10.1371/journal.pntd.0003762

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Figure 1. Phylogenetic tree built on the obtained Leptospira spp. 16S rRNA sequences and sequences of reference strains taken from GenBank

Скачать (795KB)
Метаданные
3. Figure 2. Multiple alignment of the obtained sequences with reference strains obtained from the international GenBank database

Скачать (473KB)
Метаданные

© Баимова Р.Р., Останкова Ю.В., Блинова О.В., Стоянова Н.А., Токаревич Н.К., 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».