Роль иммунной системы в патогенезе эндометриоза

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

В статье представлен критический анализ данных о роли иммунных факторов в патогенезе эндометриоза. Накопленные к настоящему времени результаты исследований убедительно демонстрируют, что в основе возникновения, прогрессирования и персистирования заболевания значимая роль принадлежит аномальной субклинической воспалительной реакции и нарушениям в системе иммунного контроля. Несмотря на то, что множество исследований посвящено отдельным звеньям иммунных нарушений в патогенезе эндометриоза, до сих пор нет единой картины, обобщающей эти данные. Необходимо проведение дальнейших исследований, направленных на поиск иммунологических показателей, которые могут быть использованы в качестве маркеров для клинического применения при неинвазивной диагностике этого заболевания. Остается актуальным также поиск специфических иммунных маркеров, которые бы могли стать мишенью таргетной иммунотерапии эндометриоза.

Об авторах

Ольга Олеговна Кабанова

ФГБОУ ВО «Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова»

Автор, ответственный за переписку.
Email: kabanova.olya2012@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-2936-0571

студентка 6-го курса фак-та фундаментальной медицины

Россия, Москва

Арика Гагиковна Мелкумян

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: dr.melkumyan@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-8856-000X

аспирант

Россия, Москва

Любовь Валентиновна Кречетова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: l_krechetova@oparina4.ru
ORCID iD: 0000-0001-5023-3476

д-р мед. наук, зав. лаб. клин. иммунологии

Россия, Москва

Ирина Владимировна Менжинская

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: menirvl@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5385-0370

д-р мед. наук, вед. науч. сотр. лаб. клин. иммунологии

Россия, Москва

Станислав Владиславович Павлович

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: st.pavlovich@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-1313-7079

канд. мед. наук, доц., проф. каф. акушерства и гинекологии, ученый секретарь

Россия, Москва

Список литературы

  1. Laganà AS, Garzon S, Götte M, et al. The Pathogenesis of Endometriosis: Molecular and Cell Biology Insights. Int J Mol Sci. 2019;20(22):5615. doi: 10.3390/ijms20225615
  2. Sampson JA. Metastatic or Embolic Endometriosis, due to the Menstrual Dissemination of Endometrial Tissue into the Venous Circulation. Am J Pathol. 1927;3(2):93-110.43.
  3. Rižner TL. Diagnostic potential of peritoneal fluid biomarkers of endometriosis. Expert Rev Mol Diagn. 2015;15(4):557-80. doi: 10.1586/14737159.2015.1015994
  4. Ярмолинская М.И., Айламазян Э.К. Генитальный эндометриоз. Различные грани проблемы. СПб.: Эко-Вектор, 2017 [Iarmolinskaia MI, Ailamazian EK. Genital endometriosis. Different facets of the problem. Saint Petersburg: Eko-Vektor, 2017 (in Russian)].
  5. Адамян Л.В., Арсланян К.Н., Логинова О.Н., и др. Иммунологические аспекты эндометриоза: обзор литературы. Лечащий врач. 2020;4:37-47 [Adamian LV, Arslanian KN, Loginova ON, et al. Immunologicheskie aspekty endometrioza: obzor literatury. Lechashchii vrach. 2020;4:37-47 (in Russian)].
  6. Ahn SH, Monsanto SP, Miller C, et al. Pathophysiology and Immune Dysfunction in Endometriosis. Biomed Res Int. 2015;1-12. doi: 10.1155/2015/795976
  7. May KE, Villar J, Kirtley S, et al. Endometrial alterations in endometriosis: a systematic review of putative biomarkers. Hum Reprod Update. 2011;17(5):637-53. doi: 10.1093/humupd/dmr013
  8. Ahn SH, Khalaj K, Young SL, et al. Immune-inflammation gene signatures in endometriosis patients. Fertil Steril. 2016;106(6):1420-31.e7. doi: 10.1016/j.fertnstert.2016.07.005
  9. Paul Dmowski W, Braun DP. Immunology of endometriosis. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2004;18(2):245-63. doi: 10.1016/j.bpobgyn.2004.02.001
  10. Suryawanshi S, Huang X, Elishaev E, et al. Complement pathway is frequently altered in endometriosis and endometriosis-associated ovarian cancer. Clin Cancer Res. 2014;20(23):6163-74. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-14-1338
  11. Riccio LDGC, Santulli P, Marcellin L, et al. Immunology of endometriosis. Best Pract Res Clin Obstet Gynaecol. 2018;50:39-49. doi: 10.1016/j.bpobgyn.2018.01.010
  12. Symons LK, Miller JE, Kay VR, et al. The Immunopathophysiology of Endometriosis. Trends Mol Med. 2018;24(9):748-62. doi: 10.1016/j.molmed.2018.07.004
  13. Selders GS, Fetz AE, Radic MZ, Bowlin GL. An overview of the role of neutrophils in innate immunity, inflammation and host-biomaterial integration. Regen Biomater. 2017;4(1):55-68. doi: 10.1093/rb/rbw041
  14. Milewski Ł, Dziunycz P, Barcz E, et al. Increased levels of human neutrophil peptides 1, 2, and 3 in peritoneal fluid of patients with endometriosis: association with neutrophils, T cells and IL-8. J Reprod Immunol. 2011;91(1-2):64-70. doi: 10.1016/j.jri.2011.05.008
  15. Monsanto SP, Edwards AK, Zhou J, et al. Surgical removal of endometriotic lesions alters local and systemic proinflammatory cytokines in endometriosis patients. Fertil Steril. 2016;105(4):968-77.e5. doi: 10.1016/j.fertnstert.2015.11.047
  16. Lin Y-J, Lai M-D, Lei H-Y, Wing L-YC. Neutrophils and macrophages promote angiogenesis in the early stage of endometriosis in a mouse model. Endocrinology. 2006;147(3):1278-86. doi: 10.1210/en.2005-0790
  17. Takamura M, Koga K, Izumi G, et al. Neutrophil depletion reduces endometriotic lesion formation in mice. Am J Reprod Immunol. 2016;76(3):193-8. doi: 10.1111/aji.12540
  18. Daley JM, Thomay AA, Connolly MD, et al. Use of Ly6G-specific monoclonal antibody to deplete neutrophils in mice. J Leukoc Biol. 2008;83(1):64-70. doi: 10.1189/jlb.0407247
  19. Bacci M, Capobianco A, Monno A, et al. Macrophages are alternatively activated in patients with endometriosis and required for growth and vascularization of lesions in a mouse model of disease. Am J Pathol. 2009;175(2):547-56. doi: 10.2353/ajpath.2009.081011
  20. Králíčková M, Vetvicka V. Immunological aspects of endometriosis: a review. Ann Transl Med. 2015;3(11):153. doi: 10.3978/j.issn.2305-5839.2015.06.08
  21. McLaren J. Vascular endothelial growth factor and endometriotic angiogenesis. Hum Reprod Update. 2000;6(1):45-55. doi: 10.1093/humupd/6.1.45
  22. Томай Л.Р., Гунько В.О., Погорелова Т.Н., и др. Значение протеомного анализа перитонеальной жидкости в выяснении патогенеза эндометриоза. Проблемы репродукции. 2014;20(2):52-6 [Tomai LR, Gunko VO, Pogorelova TN, et al. The value of proteomic analysis of peritoneal fluid to explore the pathogenesis of endometriosis. Russian Journal of Human Reproduction. 2014;20(2):52-6 (in Russian)].
  23. Анциферова Ю.С., Посисеева Л.В., Сотникова Н.Ю., Елисеева М.А. Экспрессия скавенджер-рецепторов перитонеальными макрофагами при наружном генитальном эндометриозе. Акушерство и гинекология. 2012;2:46-50 [Antsiferova IuS, Posiseeva LV, Sotnikova NIu, Eliseeva MA. Expressions of peritoneal macrophage scavenger receptors in external genital endometriosis. Akusherstvo i ginekologiia. 2012;2:46-50 (in Russian)].
  24. Wu MH, Shoji Y, Wu MC, et al. Suppression of matrix metalloproteinase-9 by prostaglandin E(2) in peritoneal macrophage is associated with severity of endometriosis. Am J Pathol. 2005;167(4):1061-9. doi: 10.1016/S0002-9440(10)61195-9
  25. Matarese G, De Placido G, Nikas Y, Alviggi C. Pathogenesis of endometriosis: natural immunity dysfunction or autoimmune disease? Trends Mol Med. 2003;9(5):223-8. doi: 10.1016/s1471-4914(03)00051-0
  26. Cominelli A, Gaide Chevronnay HP, Lemoine P, et al. Matrix metalloproteinase-27 is expressed in CD163+/CD206+ M2 macrophages in the cycling human endometrium and in superficial endometriotic lesions. Mol Hum Reprod. 2014;20(8):767-75. doi: 10.1093/molehr/gau034
  27. Smith KA, Pearson CB, Hachey AM, et al. Alternative activation of macrophages in rhesus macaques (Macaca mulatta) with endometriosis. Comp Med. 2012;62(4):303-10.
  28. Haber E, Danenberg HD, Koroukhov N, et al. Peritoneal macrophage depletion by liposomal bisphosphonate attenuates endometriosis in the rat model. Hum Reprod. 2009;24(2):398-407. doi: 10.1093/humrep/den375
  29. Itoh F, Komohara Y, Takaishi K, et al. Possible involvement of signal transducer and activator of transcription-3 in cell-cell interactions of peritoneal macrophages and endometrial stromal cells in human endometriosis. Fertil Steril. 2013;99(6):1705-13. doi: 10.1016/j.fertnstert.2013.01.133
  30. Takebayashi A, Kimura F, Kishi Y, et al. Subpopulations of macrophages within eutopic endometrium of endometriosis patients. Am J Reprod Immunol. 2015;73(3):221-31. doi: 10.1111/aji.12331
  31. Короткова Т.Д., Адамян Л.В., Степанян А.А., и др. Клеточные и молекулярные факторы врожденного иммунитета в патогенезе наружного генитального эндометриоза у женщин (обзор литературы). Проблемы репродукции. 2018;24(6):22-31 [Korotkova TD, Adamian LV, Stepanian AA, et al. Cellular and molecular factors of innate immunity in the pathogenesis of external genital endometriosis in women (a review). Russian Journal of Human Reproduction. 2018;24(6):22-31 (in Russian)]. doi: 10.17116/repro20182406122
  32. Vetvicka V, Laganà AS, Salmeri FM, et al. Regulation of apoptotic pathways during endometriosis: from the molecular basis to the future perspectives. Arch Gynecol Obstet. 2016;294(5):897-904. doi: 10.1007/s00404-016-4195-6
  33. Oosterlynck DJ, Cornillie FJ, Waer M, et al. Women with endometriosis show a defect in natural killer activity resulting in a decreased cytotoxicity to autologous endometrium. Fertil Steril. 1991;56(1):45-51. doi: 10.1016/s0015-0282(16)54414-8
  34. Laganà AS, Triolo O, Salmeri FM, et al. Natural Killer T cell subsets in eutopic and ectopic endometrium: a fresh look to a busy corner. Arch Gynecol Obstet. 2016;293(5):941-9. doi: 10.1007/s00404-015-4004-7
  35. Oosterlynck DJ, Meuleman C, Waer M, et al. Immunosuppressive activity of peritoneal fluid in women with endometriosis. Obstet Gynecol. 1993;82(2):206-12.
  36. Wu MY, Yang JH, Chao KH, et al. Increase in the expression of killer cell inhibitory receptors on peritoneal natural killer cells in women with endometriosis. Fertil Steril. 2000;74(6):1187-91. doi: 10.1016/s0015-0282(00)01592-2
  37. Moretta A. Natural killer cells and dendritic cells: rendezvous in abused tissues. Nat Rev Immunol. 2002;2(12):957-64. doi: 10.1038/nri956
  38. Osuga Y, Koga K, Hirota Y, et al. Lymphocytes in endometriosis. Am J Reprod Immunol. 2011;65(1):1-10. doi: 10.1111/j.1600-0897.2010.00887.x
  39. Киселева Е.П. Новые представления о противоинфекционном иммунитете. Инфекция и иммунитет. 2011;1(1):9-14 [Kiseleva EP. New aspects of anti-infection immunity. Russian Journal of Infection and Immunity. 2011;1(1):9-14 (in Russian)].
  40. Ho HN, Wu MY, Yang YS. Peritoneal cellular immunity and endometriosis. Am J Reprod Immunol. 1997;38(6):400-12. doi: 10.1111/j.1600-0897.1997.tb00319.x
  41. Мусаходжаева Д.А., Арипова Т.У., Ешимбетова Г.З., и др. Субпопуляционный состав лимфоцитов у женщин с генитальным эндометриозом. Журнал теоретической и клинической медицины. 2018;1:79-82 [Musakhodzhaeva DA, Aripova TU, Eshimbetova GZ, et al. Subpopuliatsionnyi sostav limfotsitov u zhenshchin s genitalnym endometriozom. Zhurnal teoreticheskoi i klinicheskoi meditsiny. 2018;1:79-82 (in Russian)].
  42. Takamura M, Koga K, Izumi G, et al. Simultaneous Detection and Evaluation of Four Subsets of CD4+ T Lymphocyte in Lesions and Peripheral Blood in Endometriosis. Am J Reprod Immunol. 2015;74(6):480-6. doi: 10.1111/aji.12426
  43. Gogacz M, Winkler I, Bojarska-Junak A, et al. Increased percentage of Th17 cells in peritoneal fluid is associated with severity of endometriosis. J Reprod Immunol. 2016;117:39-44. doi: 10.1016/j.jri.2016.04.289
  44. de Barros IBL, Malvezzi H, Gueuvoghlanian-Silva BY, et al. What do we know about regulatory T cells and endometriosis? A systematic review. J Reprod Immunol. 2017;120:48-55. doi: 10.1016/j.jri.2017.04.003
  45. Попова О.С. Клетки иммунной системы как биомаркеры в диагностике эндометриоза. Проблемы репродукции. 2019;25(2):8-15 [Popova OS. Immune system cells as biomarkers in the diagnostics of endometriosis. Russian Journal of Human Reproduction. 2019;25(2):8-15 (in Russian)]. doi: 10.17116/repro2019250218
  46. Olkowska-Truchanowicz J, Bocian K, Maksym RB, et al. CD4+ CD25+ FOXP3+ regulatory T cells in peripheral blood and peritoneal fluid of patients with endometriosis. Hum Reprod. 2013;28(1):119-24. doi: 10.1093/humrep/des346
  47. Hanada T, Tsuji S, Nakayama M, et al. Suppressive regulatory T cells and latent transforming growth factor-β-expressing macrophages are altered in the peritoneal fluid of patients with endometriosis. Reprod Biol Endocrinol. 2018;16(1):9. doi: 10.1186/s12958-018-0325-2
  48. Gogacz M, Winkler I, Bojarska-Junak A, et al. T regulatory lymphocytes in patients with endometriosis. Mol Med Rep. 2014;10(2):1072-6. doi: 10.3892/mmr.2014.2294
  49. Lebovic DI, Mueller MD, Taylor RN. Immunobiology of endometriosis. Fertil Steril. 2001;75(1):1-10. doi: 10.1016/s0015-0282(00)01630-7
  50. Riccio LGC, Baracat EC, Chapron C, et al. The role of the B lymphocytes in endometriosis: A systematic review. J Reprod Immunol. 2017;123:29-34. doi: 10.1016/j.jri.2017.09.001
  51. Старцева Н.В. Клинические иммунологические аспекты генитального эндометриоза. Акушерство и гинекология. 1980;3:23-6 [Startseva NV. Klinicheskie immunologicheskie aspekty genital'nogo endometrioza. Akusherstvo i ginekologiia. 1980;3:23-6 (in Russian)].
  52. Straub RH. The complex role of estrogens in inflammation. Endocr Rev. 2007;28(5):521-74. doi: 10.1210/er.2007-0001
  53. Bohler HC, Gercel-Taylor C, Lessey BA, Taylor DD. Endometriosis markers: immunologic alterations as diagnostic indicators for endometriosis. Reprod Sci. 2007;14(6):595-604. doi: 10.1177/1933719107307910
  54. Mathur S, Peress MR, Williamson HO, et al. Autoimmunity to endometrium and ovary in endometriosis. Clin Exp Immunol. 1982;50(2):259-66.
  55. Inagaki J, Sugiura-Ogasawara M, Nomizu M, et al. An association of IgG anti-laminin-1 autoantibodies with endometriosis in infertile patients. Hum Reprod. 2003;18(3):544-9. doi: 10.1093/humrep/deg148
  56. Менжинская И.В., Мелкумян А.Г., Павлович С.В., и др. Аутоиммунные маркеры для неинвазивной диагностики эндометриоза у женщин. Биомедицинская химия. 2020;66(2):162-6 [Menzhinskaia IV, Melkumian AG, Pavlovich SV, et al. Autoimmune markers for non-invasive diagnosis of endometriosis in women. Biomeditsinskaia khimiia. 2020;66(2):162-6 (in Russian)]. doi: 10.18097/PBMC20206602162
  57. Shen P, Fillatreau S. Antibody-independent functions of B cells: a focus on cytokines. Nat Rev Immunol. 2015;15(7):441-51. doi: 10.1038/nri3857
  58. Evans-Hoeker E, Lessey BA, Jeong JW, et al. Endometrial BCL6 Overexpression in Eutopic Endometrium of Women With Endometriosis. Reprod Sci. 2016;23(9):1234-41. doi: 10.1177/1933719116649711
  59. Yeol SG, Won YS, Kim YI, et al. Decreased Bcl-6 and increased Blimp-1 in the peritoneal cavity of patients with endometriosis. Clin Exp Obstet Gynecol. 2015;42(2):156-60.
  60. Söhngen L, Schmidt M, Wimberger P, et al. Additional B-cell deficiency does not affect growth and angiogenesis of ectopic human endometrium in T-cell-deficient endometriosis mouse models during long-term culture. J Reprod Immunol. 2014;106:50-7. doi: 10.1016/j.jri.2014.08.004
  61. Santulli P, Borghese B, Chouzenoux S, et al. Interleukin-19 and interleukin-22 serum levels are decreased in patients with ovarian endometrioma. Fertil Steril. 2013;99(1):219-26.e2. doi: 10.1016/j.fertnstert.2012.08.055
  62. Carmona F, Chapron C, Martínez-Zamora M-Á, et al. Ovarian endometrioma but not deep infiltrating endometriosis is associated with increased serum levels of interleukin-8 and interleukin-6. J Reprod Immunol. 2012;95(1-2):80-6. doi: 10.1016/j.jri.2012.06.001
  63. Harada T, Iwabe T, Terakawa N. Role of cytokines in endometriosis. Fertil Steril. 2001;76(1):1-10. doi: 10.1016/s0015-0282(01)01816-7
  64. Zarmakoupis PN, Rier SE, Maroulis GB, Becker JL. Inhibition of human endometrial stromal cell proliferation by interleukin 6. Hum Reprod. 1995;10(9):2395-9. doi: 10.1093/oxfordjournals.humrep.a136306
  65. Tabibzadeh SS, Santhanam U, Sehgal PB, May LT. Cytokine-induced production of IFN-beta 2/IL-6 by freshly explanted human endometrial stromal cells. Modulation by estradiol-17 beta. J Immunol. 1989;142(9):3134-9.
  66. Kang YJ, Jeung IC, Park A, et al. An increased level of IL-6 suppresses NK cell activity in peritoneal fluid of patients with endometriosis via regulation of SHP-2 expression. Hum Reprod. 2014;29(10):2176-89. doi: 10.1093/humrep/deu172
  67. Guo SW, Du Y, Liu X. Platelet-derived TGF-β1 mediates the down-modulation of NKG2D expression and may be responsible for impaired natural killer (NK) cytotoxicity in women with endometriosis. Hum Reprod. 2016;31(7):1462-74. doi: 10.1093/humrep/dew057
  68. Suen JL, Chang Y, Chiu PR, et al. Serum level of IL-10 is increased in patients with endometriosis, and IL-10 promotes the growth of lesions in a murine model. Am J Pathol. 2014;184(2):464-71. doi: 10.1016/j.ajpath.2013.10.023
  69. Cameron MJ, Kelvin DJ. Cytokines and chemokines – their receptors and their genes: an overview. Adv Exp Med Biol. 2003;520:8-32. doi: 10.1007/978-1-4615-0171-8_2
  70. Цицкарева Д.З., Ярмолинская М.И., Селютин А.В., Сельков С.А. Оценка содержания и патогенетической роли цитокинов перитонеальной жидкости у пациенток с глубоким инфильтративным эндометриозом. Журнал акушерства и женских болезней. 2017;66(1):38-45 [Tsitskareva DZ, Iarmolinskaia MI, Seliutin AV, Selkov SA. Evaluation of the content and the pathogenetic role of cytokines in the peritoneal fluid in patients with deep infiltrative endometriosis. Journal of Obstetrics and Women’s Diseases. 2017;66(1):38-45 (in Russian)]. doi: 10.17816/JOWD66138-45
  71. Yang HL, Zhou WJ, Chang KK, et al. The crosstalk between endometrial stromal cells and macrophages impairs cytotoxicity of NK cells in endometriosis by secreting IL-10 and TGF-β. Reproduction. 2017;154(6):815-25. doi: 10.1530/REP-17-0342
  72. Пашков В.М., Лебедев В.А. Современные представления об этиологии и патогенезе генитального эндометриоза. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2007;6(3):52-61 [Pashkov VM, Lebedev VA. Modern understanding of the etiology and pathogenesis of genital endometriosis. Voprosy ginekologii, akusherstva i perinatologii. 2007;6(3):52-61 (in Russian)].
  73. Коваль Г.Д. Обоснование подходов к лечению бесплодия у женщин с эндометриозом в зависимости от иммунологических показателей. Universum: медицина и фармакология. 2015;7-8(19):9 [Koval GD. Substantiation of approaches to the treatment of infertility in women with endometriosis depending on immunological findings. Universum: meditsina i farmakologiia. 2015;7-8(19):9 (in Russian)].
  74. Красильникова А.К., Малышкина А.И., Сотникова Н.Ю., и др. Использование иммуномодулирующей терапии у женщин с бесплодием при «малых» формах наружного генитального эндометриоза. Российский вестник акушера-гинеколога. 2014;14(3):25-8 [Krasilnikova AK, Malyshkina AI, Sotnikova NIu, et al. Ispolzovanie immunomoduliruiushchei terapii u zhenshchin s besplodiem pri "malykh" formakh naruzhnogo genital'nogo endometrioza. Rossiiskii vestnik akushera-ginekologa. 2014;14(3):25-8 (in Russian)].
  75. Романова С.В. Значение факторов врожденного иммунитета в патогенезе наружного генитального эндометриоза I–II стадии у пациенток с бесплодием и обоснование использования препарата глюкозаминилмурамилдипептида в комплексной терапии данной патологии. Автореф. … канд. мед. наук. Иваново, 2013 [Romanova SV. Value factors of innate immunity in the pathogenesis of external genital endometriosis stage I–II in patients with infertility and justification for the use of GMDP entrapped in the treatment of this pathology. Avtoref. … kand. med. nauk. Ivanovo, 2013 (in Russian)].
  76. Сотникова Н.Ю., Анциферова Ю.С., Малышкина А.И., Красильникова А.К. Нарушения системных реакций врожденного иммунитета у пациенток с бесплодием и эндометриозом I–II стадии и возможность их коррекции препаратом Ликопид. Иммунология. 2016;37(1):17-21 [Sotnikova NIu, Antsiferova IuS, Malyshkina AI, Krasilnikova AK. Impairment of the system innate immune reactions in infertile patients with endometriosis of I–II stage and possibility of its correction by drug likopid. Immunologiia. 2016;37(1):17-21 (in Russian)]. doi: 10.18821/0206-4952-2016-37-1-17–21
  77. Sikora J, Smycz-Kubańska M, Mielczarek-Palacz A, Kondera-Anasz Z. Abnormal peritoneal regulation of chemokine activation-The role of IL-8 in pathogenesis of endometriosis. Am J Reprod Immunol. 2017;77(4). doi: 10.1111/aji.12622
  78. Miller JE, Monsanto SP, Ahn SH, et al. Interleukin-33 modulates inflammation in endometriosis. Sci Rep. 2017;7(1):17903. doi: 10.1038/s41598-017-18224-x
  79. Чантурия Т.З. Роль иммунологических факторов при развитии различных форм эндометриоза. Актуальные проблемы медицины и биологии. 2018;3:25-30 [Chanturiia TZ. Role of immunological factors in the development of endometriosis. Aktualnye problemy meditsiny i biologii. 2018;3:25-30 (in Russian)]. doi: 10.24411/2587-4926-2018-10033
  80. Borrelli GM, Kaufmann AM, Abrão MS, Mechsner S. Addition of MCP-1 and MIP-3β to the IL-8 appraisal in peritoneal fluid enhances the probability of identifying women with endometriosis. J Reprod Immunol. 2015;109:66-73. doi: 10.1016/j.jri.2015.01.003
  81. Павлович С.В., Кречетова Л.В., Вторушина В.В., и др. Особенности профиля секретируемых белков клетками из эндометриоидных очагов и эутопического эндометрия женщин с наружным генитальным эндометриозом в культуре in vitro. Акушерство и гинекология. 2019;8:90-9 [Pavlovich SV, Krechetova LV, Vtorushina VV, et al. Features of the profile of proteins secreted by cells from the endometrioid foci and eutopic endometrium in women with external genital endometriosis in vitro culture. Akusherstvo i ginekologiia. 2019;8:90-9 (in Russian)]. doi: 10.18565/aig.2019.8.90-99
  82. Фролова М.С. Роль ростовых факторов в патогенезе эндометриоза. Журнал акушерства и женских болезней. 2019;68(3):71-80 [Frolova MS. The role of growth factors in the pathogenesis of endometriosis. Zhurnal akusherstva i zhenskikh boleznei. 2019;68(3):71-80 (in Russian)]. doi: 10.17816/JOWD68371-80
  83. Shifren JL, Tseng JF, Zaloudek CJ, et al. Ovarian steroid regulation of vascular endothelial growth factor in the human endometrium: implications for angiogenesis during the menstrual cycle and in the pathogenesis of endometriosis. J Clin Endocrinol Metab. 1996;81(8):3112-8. doi: 10.1210/jcem.81.8.8768883
  84. Бурлев В.А., Павлович С.В. Ангиогенез и ангиогенные факторы роста в регуляции репродуктивной системы у женщин. Проблемы репродукции. 1999;5(5):6-13 [Burlev VA, Pavlovich SV. Angiogenez i angiogennye faktory rosta v reguliatsii reproduktivnoi sistemy u zhenshchin. Problemy reproduktsii. 1999;5(5):6-13 (in Russian)].
  85. Bourlev V, Volkov N, Pavlovitch S, et al. The relationship between microvessel density, proliferative activity and expression of vascular endothelial growth factor-a and its receptors in eutopic endometrium and endometriotic lesions. Reproduction. 2006;132(3):501-9. doi: 10.1530/rep.1.01110
  86. Куликова Н.В., Коваленко И.И., Байбуз Д.В., Лебедева Я.А. Роль генетических полиморфизмов генов VEGF, COX2, MUC в развитии эндометриозассоциированного бесплодия. Гинекология. 2019;21(2):34-7 [Kulikova NV, Kovalenko II, Baibuz DV, Lebedeva IaA. The role of genetic polymorphisms of the VEGF, COX2, MUC genes in the development of endometriosis-associated infertility. Gynecology. 2019;21(2):34-7 (in Russian)]. doi: 10.26442/20795696.2019.2.190344
  87. Bourlev V, Iljasova N, Adamyan L, et al. Signs of reduced angiogenic activity after surgical removal of deeply infiltrating endometriosis. Fertil Steril. 2010;94(1):52-7. doi: 10.1016/j.fertnstert.2009.02.019
  88. Young VJ, Brown JK, Saunders PTK, et al. The peritoneum is both a source and target of TGF-β in women with endometriosis. PLoS One. 2014;9(9):e106773. doi: 10.1371/journal.pone.0106773
  89. Hull ML, Johan MZ, Hodge WL, et al. Host-derived TGFB1 deficiency suppresses lesion development in a mouse model of endometriosis. Am J Pathol. 2012;180(3):880-7. doi: 10.1016/j.ajpath.2011.11.013
  90. Saito A, Osuga Y, Yoshino O, et al. TGF-β1 induces proteinase-activated receptor 2 (PAR2) expression in endometriotic stromal cells and stimulates PAR2 activation-induced secretion of IL-6. Hum Reprod. 2011;26(7):1892-8. doi: 10.1093/humrep/der125
  91. Choi HJ, Park MJ, Kim BS, et al. Transforming growth factor β1 enhances adhesion of endometrial cells to mesothelium by regulating integrin expression. BMB Rep. 2017;50(8):429-34. doi: 10.5483/bmbrep.2017.50.8.097

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© ООО "Консилиум Медикум", 2021

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».