LOX-1 в роли биологического маркера и терапевтической мишени при сердечно-сосудистой патологии (обзор литературы)
- Авторы: Алиева А.М.1, Байкова И.Е.1, Резник Е.В.1, Теплова Н.В.1, Валиев Р.К.2, Гызыева М.Х.3, Султангалиева А.Б.1, Котикова И.А.1, Новикова Н.А.4, Корвяков С.А.4, Никитин И.Г.1
-
Учреждения:
- Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова Минздрава России
- Московский клинический научно-практический центр им. А.С. Логинова Департамента здравоохранения г. Москвы
- Пятигорский медико-фармацевтический институт – филиал Волгоградского государственного медицинского университета Минздрава России
- Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского
- Выпуск: Том 26, № 10 (2024): КАРДИОЛОГИЯ И НЕФРОЛОГИЯ
- Страницы: 666-673
- Раздел: Статьи
- URL: https://ogarev-online.ru/2075-1753/article/view/271603
- DOI: https://doi.org/10.26442/20751753.2024.10.202945
- ID: 271603
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Сердечно-сосудистые заболевания (ССЗ) представляют собой глобальную медицинскую, социальную и экономическую проблему. В настоящее время продолжаются поиск и изучение новых биологических маркеров, способных обеспечить раннюю диагностику ССЗ, служить лабораторным инструментом оценки эффективности проводимого лечения или использоваться в качестве прогностических маркеров и критериев стратификации риска. Интерес ученых сосредоточен на изучении лектиноподобного рецептора 1-го типа для окисленных липопротеидов низкой плотности (LOX-1) в качестве диагностического и прогностического маркера при ССЗ. В представленном литературном обзоре подчеркивается потенциальная значимость исследования LOX-1 как диагностического и прогностического лабораторного инструмента при ССЗ. Предполагается, что будущие клинические и экспериментальные исследования подтвердят возможность применения LOX-1 в качестве дополнительного неинвазивного инструмента для диагностики и оценки прогноза у пациентов с ССЗ. Модуляция уровней и экспрессии LOX-1 с использованием фармакологических препаратов может оказаться перспективным направлением для терапии ССЗ.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Амина Магомедовна Алиева
Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова Минздрава России
Автор, ответственный за переписку.
Email: amisha_alieva@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5416-8579
SPIN-код: 2749-6427
канд. мед. наук, доц. каф. госпитальной терапии им. акад. Г.И. Сторожакова лечебного фак-та
Россия, МоскваИрина Евгеньевна Байкова
Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова Минздрава России
Email: 1498553@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0886-6290
SPIN-код: 3054-8884
канд. мед. наук, доц. каф. госпитальной терапии им. акад. Г.И. Сторожакова лечебного фак-та
Россия, МоскваЕлена Владимировна Резник
Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова Минздрава России
Email: elenaresnik@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-7479-418X
SPIN-код: 3494-9080
д-р мед. наук, проф., зав. каф. пропедевтики внутренних болезней лечебного фак-та
Россия, МоскваНаталья Вадимовна Теплова
Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова Минздрава России
Email: teplova.nv@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-7181-4680
SPIN-код: 9056-1948
д-р мед. наук, проф., зав. каф. клинической фармакологии лечебного фак-та
Россия, МоскваРамиз Камраддинович Валиев
Московский клинический научно-практический центр им. А.С. Логинова Департамента здравоохранения г. Москвы
Email: radiosurgery@bk.ru
ORCID iD: 0000-0003-1613-3716
SPIN-код: 2855-2867
канд. мед. наук, зав. отд-нием онкохирургии тазового дна
Россия, МоскваМалика Хасымовна Гызыева
Пятигорский медико-фармацевтический институт – филиал Волгоградского государственного медицинского университета Минздрава России
Email: amisha_alieva@mail.ru
ORCID iD: 0009-0008-9105-1191
студентка
Россия, ПятигорскАльбина Булатовна Султангалиева
Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова Минздрава России
Email: albina_sult_2002@mail.ru
ORCID iD: 0009-0008-4194-8486
студентка
Россия, МоскваИрина Александровна Котикова
Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова Минздрава России
Email: kotikova.ia@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5352-8499
SPIN-код: 1423-7300
студентка
Россия, МоскваНаталия Александровна Новикова
Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского
Email: amisha_alieva@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-3639-270X
канд. мед. наук, врач отд-ния рентгенхирургии Научно-клинического центра №2
Россия, МоскваСергей Александрович Корвяков
Российский научный центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского
Email: amisha_alieva@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0237-524X
канд. мед. наук, врач 2-го терапевтического отд-ния Научно-клинического центра №2
Россия, МоскваИгорь Геннадиевич Никитин
Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова Минздрава России
Email: igor.nikitin.64@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1699-0881
д-р мед. наук, проф., зав. каф. госпитальной терапии им. акад. Г.И. Сторожакова лечебного фак-та
Россия, МоскваСписок литературы
- Roth GA, Mensah GA, Johnson CO, et al. Global Burden of Cardiovascular Diseases and Risk Factors, 1990-2019: Update from the GBD 2019 Study. J Am Coll Cardiol. 2020;76(25):2982-3021. doi: 10.1016/j.jacc.2020.11.010
- Deng P, Fu Y, Chen M, et al. Temporal trends in inequalities of the burden of cardiovascular disease across 186 countries and territories. Int J Equity Health. 2023;22(1):164. doi: 10.1186/s12939-023-01988-2
- Silva S, Fatumo S, Nitsch D. Mendelian randomization studies on coronary artery disease: a systematic review and meta-analysis. Syst Rev. 2024;13(1):29. doi: 10.1186/s13643-023-02442-8
- Алиева А.М., Теплова Н.В., Батов М.А., и др. Пентраксин-3 – перспективный биологический маркер при сердечной недостаточности: литературный обзор. Consilium Medicum. 2022;24(1):53-9 [Alieva AM, Teplova NV, Batov MA, et al. Pentraxin-3 – a promising biological marker in heart failure: literature review. Consilium Medicum. 2022;24(1):53-9 (in Russian)]. doi: 10.26442/20751753.2022.1.201382
- Алиева А.М., Резник Е.В., Пинчук Т.В., и др. Фактор дифференцировки роста-15 (GDF-15) как биологический маркер при сердечной недостаточности. Архивъ внутренней медицины. 2023;13(1):14-23 [Alieva AM, Reznik EV, Pinchuk TV, et al. Growth Differentiation Factor-15 (GDF-15) is a Biological Marker in Heart Failure. The Russian Archives of Internal Medicine. 2023;13(1):14-23 (in Russian)]. doi: 10.20514/2226-6704-2023-13-1-14-23
- Алиева А.М., Теплова Н.В., Кисляков В.А., и др. Биомаркеры в кардиологии: микроРНК и сердечная недостаточность. Терапия. 2022;1:60-70 [Alieva AM, Teplova NV, Kislyakov VA, et al. Biomarkery v kardiologii: mikroRNK i serdechnaya nedostatochnost'. Terapiya. 2022;1:60-70 (in Russian)]. doi: 10.18565/therapy.2022.1.60-70
- Lubrano V, Balzan S, Papa A. LOX-1 variants modulate the severity of cardiovascular disease: state of the art and future directions. Mol Cell Biochem. Epub 2023 Oct 3. doi: 10.1007/s11010-023-04859-0
- Sánchez-León ME, Loaeza-Reyes KJ, Matias-Cervantes CA, et al. LOX-1 in Cardiovascular Disease: A Comprehensive Molecular and Clinical Review. Int J Mol Sci. 2024;25(10):5276. doi: 10.3390/ijms25105276
- Bagheri B, Khatibiyan Feyzabadi Z, Nouri A, et al. Atherosclerosis and Toll-Like Receptor4 (TLR4), Lectin-Like Oxidized Low-Density Lipoprotein-1 (LOX-1), and Proprotein Convertase Subtilisin/Kexin Type9 (PCSK9). Mediators Inflamm. 2024;2024:5830491. doi: 10.1155/2024/5830491
- Truthe S, Klassert TE, Schmelz S, et al. Role of Lectin-Like Oxidized Low-Density Lipoprotein Receptor-1 in Inflammation and Pathogen-Associated Interactions. J Innate Immun. 2024;16(1):105-32. doi: 10.1159/000535793
- Pyrpyris N, Dimitriadis K, Beneki E, et al. LOX-1 Receptor: A Diagnostic Tool and Therapeutic Target in Atherogenesis. Curr Probl Cardiol. 2024;49(1 Pt. C):102117. doi: 10.1016/j.cpcardiol.2023.102117
- Munno M, Mallia A, Greco A, et al. Radical Oxygen Species, Oxidized Low-Density Lipoproteins, and Lectin-like Oxidized Low-Density Lipoprotein Receptor 1: A Vicious Circle in Atherosclerotic Process. Antioxidants (Basel). 2024;13(5):583. doi: 10.3390/antiox13050583
- Barreto J, Karathanasis SK, Remaley A, et al. Role of LOX-1 (Lectin-Like Oxidized Low-Density Lipoprotein Receptor 1) as a Cardiovascular Risk Predictor: Mechanistic Insight and Potential Clinical Use. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2021;41(1):153-66. doi: 10.1161/ATVBAHA.120.315421
- Inoue N, Okamura T, Kokubo Y, et al. LOX index, a novel predictive biochemical marker for coronary heart disease and stroke. Clin Chem. 2010;56(4):550-8. doi: 10.1373/clinchem.2009.140707
- Markstad H, Edsfeldt A, Yao Mattison I, et al. High Levels of Soluble Lectinlike Oxidized Low-Density Lipoprotein Receptor-1 Are Associated With Carotid Plaque Inflammation and Increased Risk of Ischemic Stroke. J Am Heart Assoc. 2019;8(4):e009874. doi: 10.1161/JAHA.118.009874
- Skarpengland T, Skjelland M, Kong XY, et al. Increased Levels of Lectin-Like Oxidized Low-Density Lipoprotein Receptor-1 in Ischemic Stroke and Transient Ischemic Attack. J Am Heart Assoc. 2018;7(2):e006479. doi: 10.1161/JAHA.117.006479
- Otsuki T, Maeda S, Mukai J, et al. Association between plasma sLOX-1 concentration and arterial stiffness in middle-aged and older individuals. J Clin Biochem Nutr. 2015;57(2):151-5. doi: 10.3164/jcbn.15-27
- Zhang Q, Chu Y, Jin G, et al. Association Between LOX-1, LAL, and ACAT1 Gene Single Nucleotide Polymorphisms and Carotid Plaque in a Northern Chinese Population. Genet Test Mol Biomarkers. 2020;24(3):138-44. doi: 10.1089/gtmb.2019.0209
- Salehipour P, Rezagholizadeh F, Mahdiannasser M, et al. Association of OLR1 gene polymorphisms with the risk of coronary artery disease: A systematic review and meta-analysis. Heart Lung. 2021;50(2):334-43. doi: 10.1016/j.hrtlng.2021.01.015
- Xu X, Hou X, Liang Y, et al. The gene polymorphism of LOX1 predicts the incidence of LVH in patients with essential hypertension. Cell Physiol Biochem. 2014;33(1):88-96. doi: 10.1159/000356652
- Sheikh MSA. Circulatory soluble LOX-1 is a novel predictor for coronary artery disease patients. Cardiovasc J Afr. 2023;34(2):104-8. doi: 10.5830/CVJA-2022-038
- Md Sayed AS, Zhao Z, Guo L, et al. Serum lectin-like oxidized-low density lipoprotein receptor-1 and adiponectin levels are associated with coronary artery disease accompanied with metabolic syndrome. Iran Red Crescent Med J. 2014;16(8):e12106. doi: 10.5812/ircmj.12106
- Kobayashi N, Hata N, Kume N, et al. Soluble lectin-like oxidized low-density lipoprotein receptor-1 as an early biomarker for ST elevation myocardial infarction: time-dependent comparison with other biomarkers: time-dependent comparison with other biomarkers. Circ J. 2011;75(6):1433-9. doi: 10.1253/circj. cj-10-0913
- Hussein RA, Abdul-Rasheed OF, Basheer M. Evaluation of soluble lectin-like oxidized low-density lipoprotein receptor-1 (sLOX-1) and sLOX-1/oxidized LDL ratio as novel biomarkers of acute coronary syndrome. Acta Biochim Pol. 2022;69(2):309-14. doi: 10.18388/abp.2020_5735
- Zhao ZW, Xu YW, Li SM, et al. Baseline Serum sLOX-1 Concentrations Are Associated with 2-Year Major Adverse Cardiovascular and Cerebrovascular Events in Patients after Percutaneous Coronary Intervention. Dis Markers. 2019;2019:4925767. doi: 10.1155/2019/4925767
- Besli F, Gullulu S, Sag S, et al. The relationship between serum lectin-like oxidized LDL receptor-1 levels and systolic heart failure. Acta Cardiol. 2016;71(2):185-90. doi: 10.2143/AC.71.2.3141848
- Stankova TR, Delcheva GT, Maneva AI, et al. Serum Levels of Carbamylated LDL, Nitrotyrosine and Soluble Lectin-like Oxidized Low-density Lipoprotein Receptor-1 in Poorly Controlled Type 2 Diabetes Mellitus. Folia Med (Plovdiv). 2019;61(3):419-25. doi: 10.3897/folmed.61.e39343
- Lee AS, Wang YC, Chang SS, et al. Detection of a High Ratio of Soluble to Membrane-Bound LOX-1 in Aspirated Coronary Thrombi from Patients With ST-Segment-Elevation Myocardial Infarction. J Am Heart Assoc. 2020;9(2):e014008. doi: 10.1161/JAHA.119.014008
- Li D, Li B, Yang L, et al. Human cytomegalovirus infection is correlated with atherosclerotic plaque vulnerability in carotid artery. J Gene Med. 2020;22(10):e3236. doi: 10.1002/jgm.3236
- Dogan I, Dogan T, Yetim M, et al. Relation of Serum ADMA, Apelin-13 and LOX-1 Levels with Inflammatory and Echocardiographic Parameters in Hemodialysis Patients. Ther Apher Dial. 2018;22(2):109-17. doi: 10.1111/1744-9987.12613
- Taskin HE, Kocael A, Kocael P, et al. Original contribution: sleeve gastrectomy reduces soluble lectin-like oxidized low-density lipoprotein receptor-1 (sLOX-1) levels in patients with morbid obesity. Surg Endosc. 2022;36(4):2643-52. doi: 10.1007/s00464-021-08989-8
- Vavere AL, Sinsakul M, Ongstad EL, et al. Lectin-Like Oxidized Low-Density Lipoprotein Receptor 1 Inhibition in Type 2 Diabetes: Phase 1 Results. J Am Heart Assoc. 2023;12(3):e027540. doi: 10.1161/JAHA.122.027540
- Sui D, Yu H. Protective roles of apremilast via Sirtuin 1 in atherosclerosis. Bioengineered. 2022;13(5):13872-81. doi: 10.1080/21655979.2022.2085390
- Yang T, Minami M, Yoshida K, et al. Niclosamide downregulates LOX-1 expression in mouse vascular smooth muscle cells and changes the composition of atherosclerotic plaques in ApoE-/- mice. Heart Vessels. 2022;37(3):517-27. doi: 10.1007/s00380-021-01983-z
- Liu H, Xu S, Li G, et al. Sarpogrelate and rosuvastatin synergistically ameliorate aortic damage induced by hyperlipidemia in apolipoprotein E-deficient mice. Exp Ther Med. 2020;20(6):170. doi: 10.3892/etm.2020.9300
- Zhou S, Li Z, Liu P, et al. Donepezil Prevents ox-LDL-Induced Attachment of THP-1 Monocytes to Human Aortic Endothelial Cells (HAECs). Chem Res Toxicol. 2020;33(4):975-81. doi: 10.1021/acs.chemrestox.9b00509
- Togami K, Zhan X, Ishizawa K, et al. Development of LOX-1 Antibody Modified Immuno-liposomes as Drug Carriers to Macrophages in Atherosclerotic Lesions. Pharmazie. 2023;78(8):113-6. doi: 10.1691/ph.2023.3004
- Wang Z, Chen X, Liu J, et al. Inclisiran inhibits oxidized low-density lipoprotein-induced foam cell formation in Raw264.7 macrophages via activating the PPARγ pathway. Autoimmunity. 2022;55(4):223-32. doi: 10.1080/08916934.2022.2051142
- Zhang L, Cheng L, Wang Q, et al. Atorvastatin protects cardiomyocytes from oxidative stress by inhibiting LOX-1 expression and cardiomyocyte apoptosis. Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai). 2015;47(3):174-82. doi: 10.1093/abbs/gmu131
- Biocca S, Iacovelli F, Matarazzo S, et al. Molecular mechanism of statin-mediated LOX-1 inhibition. Cell Cycle. 2015;14(10):1583-95. doi: 10.1080/15384101.2015.1026486
- Xiong Q, Wang Z, Yu Y, et al. Hydrogen sulfide stabilizes atherosclerotic plaques in apolipoprotein E knockout mice. Pharmacol Res. 2019;144:90-8. doi: 10.1016/j.phrs.2019.04.006
- Yu Z, Peng Q, Li S, et al. Myriocin and d-PDMP ameliorate atherosclerosis in ApoE-/- mice via reducing lipid uptake and vascular inflammation. Clin Sci (Lond). 2020;134(5):439-58. doi: 10.1042/CS20191028
- Yan L, Jia Q, Cao H, et al. Fisetin ameliorates atherosclerosis by regulating PCSK9 and LOX-1 in apoE-/- mice. Exp Ther Med. 2021;21(1):25. doi: 10.3892/etm.2020.9457
- Chiu TH, Ku CW, Ho TJ, et al. Schisanhenol ameliorates oxLDL-caused endothelial dysfunction by inhibiting LOX-1 signaling. Environ Toxicol. 2023;38(7):1589-96. doi: 10.1002/tox.23788
- Lee HS, Lee MJ, Kim H, et al. Curcumin inhibits TNF-alpha-induced lectin-like oxidised LDL receptor-1 (LOX-1) expression and suppresses the inflammatory response in human umbilical vein endothelial cells (HUVECs) by an antioxidant mechanism. J Enzyme Inhib Med Chem. 2010;25(5):720-9. doi: 10.3109/14756360903555274
- Luo R, Zhao L, Li S, et al. Curcumin Alleviates Palmitic Acid-Induced LOX-1 Upregulation by Suppressing Endoplasmic Reticulum Stress in HUVECs. Biomed Res Int. 2021;2021:9983725. doi: 10.1155/2021/9983725
- Xu S, Liu Z, Huang Y, et al. Tanshinone II-A inhibits oxidized LDL-induced LOX-1 expression in macrophages by reducing intracellular superoxide radical generation and NF-kappaB activation. Transl Res. 2012;160:114-24. doi: 10.1016/j.trsl.2012.01.008
- Wen J, Chang Y, Huo S, et al. Tanshinone IIA attenuates atherosclerosis via inhibiting NLRP3 inflammasome activation. Aging. 2020;13:910-32. doi: 10.18632/aging.202202
- Feng Z, Yang X, Zhang L, et al. Ginkgolide B ameliorates oxidized low-density lipoprotein-induced endothelial dysfunction via modulating Lectin-like ox-LDL-receptor-1 and NADPH oxidase 4 expression and inflammatory cascades. Phytother Res. 2018;32(12):2417-27. doi: 10.1002/ptr.6177
- Wang G, Liu Z, Li M, et al. Ginkgolide B Mediated Alleviation of Inflammatory Cascades and Altered Lipid Metabolism in HUVECs via Targeting PCSK-9 Expression and Functionality. Biomed Res Int. 2019;2019:7284767. doi: 10.1155/2019/7284767
- Xu Q, Li YC, Du C, et al. Effects of Apigenin on the Expression of LOX-1, Bcl-2, and Bax in Hyperlipidemia Rats. Chem Biodivers. 2021;18(8):e2100049. doi: 10.1002/cbdv.202100049
- Bai X, Wang S, Shu L, et al. Hawthorn leaf flavonoids alleviate the deterioration of atherosclerosis by inhibiting SCAP-SREBP2-LDLR pathway through sPLA2-IIA signaling in macrophages in mice. J Ethnopharmacol. 2024;327:118006. doi: 10.1016/j.jep.2024.118006
- Ding Y, Feng Y, Zhu W, et al. [Gly14]-Humanin Prevents Lipid Deposition and Endothelial Cell Apoptosis in a Lectin-like Oxidized Low-density Lipoprotein Receptor-1-Dependent Manner. Lipids. 2019;54(11-12):697-705. doi: 10.1002/lipd.12195
- Yu J, Zhou L, Song H, et al. (-)-Epicatechin gallate blocked cellular foam formation in atherosclerosis by modulating CD36 expression in vitro and in vivo. Food Funct. 2023;14(5):2444-58. doi: 10.1039/d2fo03218j
- Li Q, Liu X, Zhang X, et al. Terpene Lactucopicrin Limits Macrophage Foam Cell Formation by a Reduction of Lectin-Like Oxidized Low-Density Lipoprotein Receptor-1 in Lipid Rafts. Mol Nutr Food Res. 2022;66(4):e2100905. doi: 10.1002/mnfr.202100905
- Im YS, Gwon MH, Yun JM. Protective effects of phenethyl isothiocyanate on foam cell formation by combined treatment of oxidized low-density lipoprotein and lipopolysaccharide in THP-1 macrophage. Food Sci Nutr. 2021;9(6):3269-79. doi: 10.1002/fsn3.2293
- Pengnet S, Prommaouan S, Sumarithum P, et al. Naringin Reverses High-Cholesterol Diet-Induced Vascular Dysfunction and Oxidative Stress in Rats via Regulating LOX-1 and NADPH Oxidase Subunit Expression. Biomed Res Int. 2019;2019:3708497. doi: 10.1155/2019/3708497
- Manogaran M, Vuanghao L, Mohamed R. Gynura procumbens ethanol extract and its fractions inhibit macrophage derived foam cell formation. J Ethnopharmacol. 2020;249:112410. doi: 10.1016/j.jep.2019.112410
Дополнительные файлы
