Возможность прогнозирования тяжести течения COVID-19 по клинико-лабораторным критериям с учётом штамма SARS-CoV-2: аналитический обзор
- Авторы: Полуэктова В.Б.1, Санькова М.В.1, Волчкова Е.В.1, Ларина С.Н.1, Малолетнева Н.В.1, Шабалина О.Ю.1, Лисова П.А.1, Рохлина Д.А.1, Дарвина О.В.1
-
Учреждения:
- Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
- Выпуск: Том 29, № 3 (2024)
- Страницы: 192-203
- Раздел: ОБЗОРНЫЕ СТАТЬИ
- URL: https://ogarev-online.ru/1560-9529/article/view/265936
- DOI: https://doi.org/10.17816/EID629244
- ID: 265936
Цитировать
Аннотация
Выживаемость пациентов с COVID-19 тяжёлого течения зависит от своевременной и адекватной оценки риска развития неблагоприятного исхода заболевания. Накопившееся в настоящее время большое количество противоречивых данных о прогностическом значении различных лабораторных показателей при тяжёлом течении COVID-19, вызываемого различными штаммами SARS-CoV-2, требует их анализа и систематизации. Показано, что ведущими клинико-лабораторными признаками, определяющими тяжесть течения COVID-19, являются синдром системной воспалительной реакции и нарушения гемостаза, которые в условиях высокой вирусной нагрузки, гипоксии и токсического воздействия способствуют развитию цитолитического синдрома, цитопении и полиорганной недостаточности. Немаловажное влияние на тяжесть течения инфекционного процесса оказывают биологические и иммунологические особенности различных штаммов SARS-CoV-2. На основании литературных источников перечислены общепринятые в нашей стране и за рубежом наиболее значимые лабораторные показатели, которые в сочетании с клиническими критериями служат точным ориентиром для врачей как при наблюдении за состоянием пациентов, так и для подбора терапии. Некоторые из штаммов возбудителя SARS-CoV-2 демонстрируют пониженную восприимчивость к моноклональным антителам и реконвалесцентной плазме, что требует пересмотра стратегии терапии. Детальный анализ патогномоничных лабораторных параметров и понимание иммунологического ответа на конкретный штамм возбудителя SARS-CoV-2 позволят быстро и точно выявить уязвимые группы пациентов, своевременно изменить у них проводимую терапию и предотвратить развитие осложнений.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Виктория Борисовна Полуэктова
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Email: viktoriya211@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5053-0312
SPIN-код: 7290-8377
канд. мед. наук, доцент
Россия, МоскваМария Вячеславовна Санькова
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Email: cankov@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-3164-9737
SPIN-код: 2212-5646
Россия, Москва
Елена Васильевна Волчкова
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Email: antononina@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0003-4581-4510
SPIN-код: 3342-4681
д-р мед. наук, профессор
Россия, МоскваСветлана Николаевна Ларина
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Email: snlarina07@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-0188-543X
SPIN-код: 2906-0605
канд. биол. наук, доцент
Россия, МоскваНаталья Викторовна Малолетнева
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Email: natalya-maloletneva@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-0430-731X
SPIN-код: 8267-9750
канд. мед. наук, доцент
Россия, МоскваОльга Юрьевна Шабалина
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Email: shoy3020@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0506-0961
SPIN-код: 5773-4882
канд. мед. наук
Россия, МоскваПолина Александровна Лисова
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Автор, ответственный за переписку.
Email: paolino31@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2009-8354
MD
Россия, МоскваДарья Александровна Рохлина
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Email: dasharohlina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7677-2969
MD
МоскваОльга Валерьевна Дарвина
Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)
Email: oldarmir@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8496-3987
SPIN-код: 1561-9961
канд. мед. наук
Россия, МоскваСписок литературы
- Временные методические рекомендации: профилактика, диагностика и лечение новой коронавирусной инфекции (COVID-19). Версия 17 (14.12.2022). Режим доступа: https://static-0.minzdrav.gov.ru/system/attachments/attaches/000/061/252/original/ВМР_COVID-19_V17.pdf
- Cucinotta D., Vanelli M. WHO Declares COVID-19 a Pandemic // Acta Biomed. 2020. Vol. 91, N 1. P. 157–160. doi: 10.23750/abm.v91i1.9397
- Saberiyan M., Karimi E., Khademi Z., et al. SARS-CoV-2: phenotype, genotype, and characterization of different variants // Cell Mol Biol Lett. 2022. Vol. 27, N 1. P. 50. doi: 10.1186/s11658-022-00352-6
- Yang X., Yu Y., Xu J., et al. Clinical course and outcomes of critically ill patients with SARS-CoV-2 pneumonia in Wuhan, China: a single-centered, retrospective, observational study // Lancet Respir Med. 2020. Vol. 8, N 5. P. 475–481. doi: 10.1016/S2213-2600(20)30079-5
- Guan W.-J., Ni Z.-Y., Hu Y., et al.; China Medical Treatment Expert Group for Covid-19. Clinical Characteristics of Coronavirus Disease 2019 in China // N Engl J Med. 2020. Vol. 382, N 18. P. 1708–1720. doi: 10.1056/NEJMoa2002032
- Chen G., Wu D., Guo W., et al. Clinical and immunological features of severe and moderate coronavirus disease 2019 // J Clin Invest. 2020. Vol. 130, N 5. P. 2620–2629. doi: 10.1172/JCI137244
- Aziz M., Fatima R., Assaly R. Elevated interleukin-6 and severe COVID-19: A meta-analysis // J Med Virol. 2020. Vol. 92, N 11. P. 2283–2285. doi: 10.1002/jmv.25948
- Хизроева Д.Х., Макацария А.Д., Бицадзе В.О., и др. Лабораторный мониторинг COVID-19 и значение определения маркеров коагулопатии // Акушерство, Гинекология и Репродукция. 2020. Т. 14, № 2. С. 132–147. doi: 10.17749/2313-7347.141
- Liu F., Li L., Xu M., et al. Prognostic value of interleukin-6, C-reactive protein, and procalcitonin in patients with COVID-19 // J Clin Virol. 2020. Vol. 127. P. 104370. doi: 10.1016/j.jcv.2020.104370
- Li X., Xu S., Yu M., et al. Risk factors for severity and mortality in adult COVID-19 inpatients in Wuhan // J Allergy Clin Immunol. 2020. Vol. 146, N 1. P. 110–118. doi: 10.1016/j.jaci.2020.04.006
- McElvaney O.J., McEvoy N.L., McElvaney O.F., et al. Characterization of the Inflammatory Response to Severe COVID-19 Illness // Am J Respir Crit Care Med. 2020. Vol. 202, N 6. P. 812–821. doi: 10.1164/rccm.202005-1583OC
- Lippi G., Plebani M. Laboratory abnormalities in patients with COVID-2019 infection // Clin Chem Lab Med. 2020. Vol. 58, N 7. P. 1131–1134. doi: 10.1515/cclm-2020-0198
- Sack G.H. Jr. Serum amyloid A — a review // Mol Med. 2018. Vol. 24, N 1. P. 46. doi: 10.1186/s10020-018-0047-0
- Cheng L., Li H., Li L., et al. Ferritin in the coronavirus disease 2019 (COVID-19): A systematic review and meta-analysis // J Clin Lab Anal. 2020. Vol. 34, N 10. P. e23618. doi: 10.1002/jcla.23618
- Taneri P.E., Gómez-Ochoa S.A., Llanaj E., et al. Anemia and iron metabolism in COVID-19: a systematic review and meta-analysis // Eur J Epidemiol. 2020. Vol. 35, N 8. P. 763–773. doi: 10.1007/s10654-020-00678-5
- Tan L., Wang Q., Zhang D., et al. Lymphopenia predicts disease severity of COVID-19: a descriptive and predictive study // Signal Transduct Target Ther. 2020. Vol. 5, N 1. P. 33. doi: 10.1038/s41392-020-0148-4
- Zhou F., Yu T., Du R., et al. Clinical course and risk factors for mortality of adult inpatients with COVID-19 in Wuhan, China: a retrospective cohort study // Lancet. 2020. Vol. 395, N 10229. P. 1054–1062. doi: 10.1016/S0140-6736(20)30566-3
- Луцкий А.А., Жирков А.А., Лобзин Д.Ю., и др. Интерферон-γ: биологическая функция и значение для диагностики клеточного иммунного ответа // Журнал инфектологии. 2015. Т. 7, № 4. С. 10–22. doi: 10.22625/2072-6732-2015-7-4-10-22
- Клыпа Т.В., Бычинин М.В., Мандель И.А., и др. Клиническая характеристика пациентов с COVID-19, поступающих в отделение интенсивной терапии. Предикторы тяжёлого течения // Клиническая практика. 2020. Т. 11, № 2. C. 6–20. doi: 10.17816/clinpract34182
- Lagunas-Rangel F.A. Neutrophil-to-lymphocyte ratio and lymphocyte-to-C-reactive protein ratio in patients with severe coronavirus disease 2019 (COVID-19): A meta-analysis // J Med Virol. 2020. Vol. 92, N 10. P. 1733–1734. doi: 10.1002/jmv.25819
- Pereira M.A.M., Barros I.C.A., Jacob A.L.V, et al. Laboratory findings in SARS-CoV-2 infections: State of the art // Rev Assoc Med Bras (1992). 2020. Vol. 66, N 8. P. 1152–1156. doi: 10.1590/1806-9282.66.8.1152
- Qu R., Ling Y., Zhang Y.-H.-Z., et al. Platelet-to-lymphocyte ratio is associated with prognosis in patients with coronavirus disease-19 // J Med Virol. 2020. Vol. 92, N 9. P. 1533–1541. doi: 10.1002/jmv.25767
- Spiezia L., Boscolo A., Poletto F., et al. COVID-19-Related Severe Hypercoagulability in Patients Admitted to Intensive Care Unit for Acute Respiratory Failure // Thromb Haemost. 2020. Vol. 120, N 6. P. 998–1000. doi: 10.1055/s-0040-1710018
- Макацария А.Д., Слуханчук Е.В., Бицадзе В.О., и др. COVID-19, нарушения гемостаза и риск тромботических осложнений // Вестник Российской академии медицинских наук. 2020. Т. 75, № 4. С. 306–317. doi: 10.15690/vramn1368
- Ji H.-L., Zhao R., Matalon S., Matthay M.A. Elevated Plasmin(ogen) as a Common Risk Factor for COVID-19 Susceptibility // Physiol Rev. 2020. Vol. 100, N 3. P. 1065–1075. doi: 10.1152/physrev.00013.2020
- Ranucci M., Ballotta A., Di Dedda U., et al. The procoagulant pattern of patients with COVID-19 acute respiratory distress syndrome // J Thromb Haemost. 2020. Vol. 18, N 7. P. 1747–1751. doi: 10.1111/jth.14854
- Thachil J., Tang N., Gando S., et al. ISTH interim guidance on recognition and management of coagulopathy in COVID-19 // J Thromb Haemost. 2020. Vol. 18, N 5. P. 1023–1026. doi: 10.1111/jth.14810
- Аксёнова А.Ю. Фактор Фон Виллебранда и повреждение эндотелия: возможная связь с COVID-19 // Экологическая генетика. 2020. Т. 18, № 2. С. 135–138. doi: 10.17816/ecogen33973
- Yang Z., Shi J., He Z., et al. Predictors for imaging progression on chest CT from coronavirus disease 2019 (COVID-19) patients // Aging (Albany NY). 2020. Vol. 12, N 7. P. 6037–6048. doi: 10.18632/aging.102999
- Misra A., Ghosh A., Gupta R. Heterogeneity in presentation of hyperglycaemia during COVID-19 pandemic: A proposed classification // Diabetes Metab Syndr. 2021. Vol. 15, N 1. P. 403–406. doi: 10.1016/j.dsx.2021.01.018
- Клыпа Т.В., Орехова М.С., Забросаева Л.И. Гипергликемия критических состояний // Сахарный диабет. 2015. Т. 18, № 1. С. 33–41. doi: 10.14341/DM2015133-41
- Baig A.M., Khaleeq A., Ali U., Syeda H. Evidence of the COVID-19 Virus Targeting the CNS: Tissue Distribution, Host-Virus Interaction, and Proposed Neurotropic Mechanisms // ACS Chem Neurosci. 2020. Vol. 11, N 7. P. 995–998. doi: 10.1021/acschemneuro.0c00122
- Wu Y., Xu X., Chen Z., et al. Nervous system involvement after infection with COVID-19 and other coronaviruses // Brain Behav Immun. 2020. Vol. 87. P. 18–22. doi: 10.1016/j.bbi.2020.03.031
- Mohammad S., Mishra A., Ashraf M.Z. Emerging Role of Vitamin D and its Associated Molecules in Pathways Related to Pathogenesis of Thrombosis // Biomolecules. 2019. Vol. 9, N 11. P. 649. doi: 10.3390/biom9110649
- Губенко Н.С., Будко А.А., Плисюк А.Г., Орлова Я.А. Связь показателей общего анализа крови с тяжестью течения COVID-19 у госпитализированных пациентов // Южно-Российский журнал терапевтической практики. 2021. Т. 2, № 1. С. 90–101. doi: 10.21886/2712-8156-2021-2-1-90-101
- Simon J., Grodecki K., Cadet S., et al. Radiomorphological signs and clinical severity of SARS-CoV-2 lineage B.1.1.7 // BJR Open. 2022. Vol. 4, N 1. P. 20220016. doi: 10.1259/bjro.20220016
- Akkız H. The Biological Functions and Clinical Significance of SARS-CoV-2 Variants of Corcern // Front Med (Lausanne). 2022. Vol. 9. P. 849217. doi: 10.3389/fmed.2022.849217
- Gupta R.K. Will SARS-CoV-2 variants of concern affect the promise of vaccines? // Nat Rev Immunol. 2021. Vol. 21, N 6. P. 340–341. doi: 10.1038/s41577-021-00556-5
- Hirabara S.M., Serdan T.D.A., Gorjao R., et al. SARS-COV-2 Variants: Differences and Potential of Immune Evasion // Front Cell Infect Microbiol. 2022. Vol. 11. P. 781429. doi: 10.3389/fcimb.2021.781429
- Van Goethem N., Vandromme M., Van Oyen H., et al. Severity of infection with the SARS-CoV-2 B.1.1.7 lineage among hospitalized COVID-19 patients in Belgium // PLoS One. 2022. Vol. 17, N 6. P. e0269138. doi: 10.1371/journal.pone.0269138
- Giles B., Meredith P., Robson S., et al. The SARS-CoV-2 B.1.1.7 variant and increased clinical severity-the jury is out // Lancet Infect Dis. 2021. Vol. 21, N 9. P. 1213–1214. doi: 10.1016/S1473-3099(21)00356-X
- Spinicci M., Graziani L., Tilli M., et al. Infection with SARS-CoV-2 Variants Is Associated with Different Long COVID Phenotypes // Viruses. 2022. Vol. 14, N 11. P. 2367. doi: 10.3390/v14112367
- Funk T., Pharris A., Spiteri G., et al. Characteristics of SARS-CoV-2 variants of concern B.1.1.7, B.1.351 or P.1: data from seven EU/EEA countries, weeks 38/2020 to 10/2021 // Euro Surveill. 2021. Vol. 26, N 16. P. 2100348. doi: 10.2807/1560-7917.ES.2021.26.16.2100348
- Conti P., Caraffa A., Gallenga C.E., et al. The British variant of the new coronavirus-19 (Sars-Cov-2) should not create a vaccine problem // J Biol Regul Homeost Agents. 2021. Vol. 35, N 1. P. 1–4. doi: 10.23812/21-3-E
- Wibmer C.K., Ayres F., Hermanus T., et al. SARS-CoV-2 501Y.V2 escapes neutralization by South African COVID-19 donor plasma // Nat Med. 2021. Vol. 27, N 4. P. 622–625. doi: 10.1038/s41591-021-01285-x
- Khan A., Khan T., Ali S., et al. SARS-CoV-2 new variants: Characteristic features and impact on the efficacy of different vaccines // Biomed Pharmacother. 2021. Vol. 143. P. 112176. doi: 10.1016/j.biopha.2021.112176
- Duong D. Alpha, Beta, Delta, Gamma: what’s important to know about SARS-CoV-2 variants of concern? // CMAJ. 2021. Vol. 193, N 27. P. E1059–E1060. doi: 10.1503/cmaj.1095949
- Wang P., Nair M.S., Liu L., et al. Antibody resistance of SARS-CoV-2 variants B.1.351 and B.1.1.7 // Nature. 2021. Vol. 593, N 7857. P. 130–135. doi: 10.1038/s41586-021-03398-2
- Ong S.W.X., Chiew C.J., Ang L.W., et al. Clinical and Virological Features of Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 (SARS-CoV-2) Variants of Concern: A Retrospective Cohort Study Comparing B.1.1.7 (Alpha), B.1.351 (Beta), and B.1.617.2 (Delta) // Clin Infect Dis. 2022. Vol. 75, N 1. P. e1128–e1136. doi: 10.1093/cid/ciab721
- Esper F.P., Adhikari T.M., Tu Z.J., et al. Alpha to Omicron: Disease Severity and Clinical Outcomes of Major SARS-CoV-2 Variants // J Infect Dis. 2023. Vol. 227, N 3. P. 344–352. doi: 10.1093/infdis/jiac411
- Gökharman F.D., Ertem G.T., Aydın S., et al. Evaluation of thorax computed tomographic findings in COVID-19 variant cases // Respir Investig. 2022. Vol. 60, N 3. P. 364–368. doi: 10.1016/j.resinv.2021.11.013
- Wang P., Casner R.G., Nair M.S., et al. Increased Resistance of SARS-CoV-2 Variant P.1 to Antibody Neutralization // Cell Host Microbe. 2021. Vol. 29, N 5. P. 747–751.e4. doi: 10.1016/j.chom.2021.04.007
- Adam D. The rush to study fast-spreading coronavirus variants // Nature. 2021. Vol. 594, N 7861. P. 19–20. doi: 10.1038/d41586-021-01390-4
- Viceconte G., Ponsiglione A., Buonomo A.R., et al. COVID-19 chest CT and laboratory features of B.1.617.2 (Delta variant) vs B.1.1.7 (Alpha variant) surge: a single center case-control study // Infez Med. 2022. Vol. 30, N 4. P. 555–562. doi: 10.53854/liim-3004-10
- Koc I. Clinical and Laboratory Differences between Delta and UK Variants of SARS-CoV-2: B.1.617.2 and B.1.1.7 // Tohoku J Exp Med. 2022. Vol. 257, N 4. P. 273–281. doi: 10.1620/tjem.2022.J041
- Liu J., Liu Y., Xia H., et al. BNT162b2-elicited neutralization of B.1.617 and other SARS-CoV-2 variants // Nature. 2021. Vol. 596, N 7871. P. 273–275. doi: 10.1038/s41586-021-03693-y
- Planas D., Veyer D., Baidaliuk A., et al. Reduced sensitivity of SARS-CoV-2 variant Delta to antibody neutralization // Nature. 2021. Vol. 596, N 7871. P. 276–280. doi: 10.1038/s41586-021-03777-9
- Tong C., Shi W., Zhang A., Shi Z. Tracking and controlling the spatiotemporal spread of SARS-CoV-2 Omicron variant in South Africa // Travel Med Infect Dis. 2022. Vol. 46. P. 102252. doi: 10.1016/j.tmaid.2021.102252
- Chen J., Wang R., Gilby N.B., Wei G.-W. Omicron Variant (B.1.1.529): Infectivity, Vaccine Breakthrough, and Antibody Resistance // J Chem Inf Model. 2022. Vol. 62, N 2. P. 412–422. doi: 10.1021/acs.jcim.1c01451
- Jang Y.R., Kim J.-M., Rhee J.E., et al. Clinical Features and Duration of Viral Shedding in Individuals With SARS-CoV-2 Omicron Variant Infection // Open Forum Infect Dis. 2022. Vol. 9, N 7. P. ofac237. doi: 10.1093/ofid/ofac237
- Rodriguez-Sevilla J.J., Güerri-Fernádez R., Bertran Recasens B. Is There Less Alteration of Smell Sensation in Patients with Omicron SARS-CoV-2 Variant Infection? // Front Med. 2022. Vol. 9. P. 852998. doi: 10.3389/fmed.2022.852998
- Cao Y., Wang J., Jian F., et al. Omicron escapes the majority of existing SARS-CoV-2 neutralizing antibodies // Nature. 2022. Vol. 602, N 7898. P. 657–663. doi: 10.1038/s41586-021-04385-3
Дополнительные файлы
