Вирусные микроРНК при HPV16-ассоциированном раке шейки матки: анализ экспрессии, диагностического потенциала и биологических функций
- Авторы: Елкина Н.В.1, Федорова М.Д.1, Фасхутдинов Р.С.1, Юрченко Ю.О.1, Жорданиа К.И.1, Мустафина Е.А.1, Павлова Л.С.1, Винокурова С.В.1
-
Учреждения:
- Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина
- Выпуск: Том 29, № 3 (2024)
- Страницы: 183-194
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://ogarev-online.ru/1028-9984/article/view/313525
- DOI: https://doi.org/10.17816/onco637133
- ID: 313525
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Рак шейки матки (РШМ) — четвёртое по частоте встречаемости и смертности онкозаболевание среди женщин в мире. Вирусы папиллом человека (англ. human papillomaviruses, HPVs) высокого канцерогенного риска являются этиологическим фактором развития РШМ более чем в 90% случаев, при этом на долю HPV типа 16 (HPV16) приходится более 1/2 всех случаев. Дерегуляция экспрессии вирусных онкогенов Е6 и Е7 — основная причина онкотрансформации инфицированных клеток эпителия шейки матки. Механизмы нарушения их экспрессии до сих пор недостаточно изучены. Одной из таких причин может быть нарушение работы вирусных микроРНК.
Цель. Анализ экспрессии кодируемых HPV16 микроРНК-H1 и микроРНК-H2 в образцах РШМ, оценка корреляции их экспрессии с вирусной нагрузкой и общей выживаемостью пациентов, а также in silico анализ их потенциальных вирусных и клеточных мишеней.
Материалы и методы. Экспрессию HPV16-микроРНК-H1 и HPV16-микроРНК-H2 оценивали методом полимеразной цепной реакции в реальном времени, для этого выделяли фракцию малых РНК из 36 образцов HPV16-положительных плоскоклеточных карцином шейки матки. После этого определяли вирусную нагрузку, рассчитывая параметр «копии ДНК HPV16 на клетку». Зависимость экспрессии микроРНК от вирусной нагрузки оценивали с помощью непараметрического коэффициента корреляции Спирмена. Кривые Каплана–Майера строили для анализа зависимости 5-летней общей выживаемости от уровня экспрессии вирусных микроРНК. Для in silico поиска теоретических мишеней микроРНК использовали алгоритм miRanda и онлайн-сервисы mirDB, MR-microT и TargetScan Custom 5.2.
Результаты. Экспрессия микроРНК-Н1 выявлена в 33 из 38 образцов (86,8%), а микроРНК-H2 детектировалась в 37 из 38 образцов (97,4%) HPV16-положительного РШМ. Получена положительная корреляция экспрессии как микроРНК-H1 (r=0,36, p=0,042), так и микроРНК-H2 (r=0,51, p=0,001) с вирусной нагрузкой HPV16. Прослеживается тенденция к лучшей общей выживаемости пациентов при более высокой экспрессии вирусных микроРНК-H1 и микроРНК-H2. In silico определены теоретические мишени в геноме HPV16 для микроРНК-H1 (E7, E2, E5, L2 и URR) и микроРНК-H2 (E1, E2, E5, L2, L1, URR), а также теоретические клеточные мишени, указывающие на возможную регуляцию клеточных сигнальных путей с помощью вирусных микроРНК, — как поддерживающих нормальный вирусный цикл, так и способствующих опухолевой трансформации.
Заключение. Результаты исследования указывают на перспективность дальнейшего изучения функций вирусных микроРНК при инфекции и вирус-индуцированной онкотрансформации, и их потенциала для диагностики HPV16-ассоциированных онкопатологий.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Надежда Вячеславовна Елкина
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина
Автор, ответственный за переписку.
Email: n.elkina@ronc.ru
ORCID iD: 0000-0002-0503-6016
SPIN-код: 2304-9710
Россия, Москва
Мария Дмитриевна Федорова
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина
Email: m.d.fedorova@ronc.ru
ORCID iD: 0000-0002-8813-7516
SPIN-код: 4943-5931
канд. биол. наук
Россия, МоскваРадик Сяитович Фасхутдинов
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина
Email: r.faskhutdinov@ronc.ru
ORCID iD: 0000-0002-0050-7798
Россия, Москва
Юлия Олеговна Юрченко
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина
Email: iurchenko.iuliia122@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0005-7357-0578
Россия, Москва
Кирилл Иосифович Жорданиа
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина
Email: k.zhordania@ronc.ru
ORCID iD: 0000-0003-1380-3710
SPIN-код: 6271-8954
д-р мед. наук, профессор
Россия, МоскваЕкатерина Александровна Мустафина
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина
Email: e.mustafina@ronc.ru
ORCID iD: 0000-0002-1009-0383
SPIN-код: 9078-9204
канд. мед. наук
Россия, МоскваЛариса Сергеевна Павлова
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина
Email: l.pavlova@ronc.ru
ORCID iD: 0000-0003-3993-4823
Россия, Москва
Светлана Владимировна Винокурова
Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина
Email: s.vinokurova@ronc.ru
ORCID iD: 0000-0003-1615-3928
SPIN-код: 3453-4502
канд. мед. наук
Россия, МоскваСписок литературы
- Sung H., Ferlay J., Siegel R., et l. Global Cancer Statistics 2020: GLOBOCAN Estimates of Incidence and Mortality Worldwide for 36 Cancers in 185 Countries // CA Cancer J Clin. 2021. Vol. 71, N 3. P. 209–249. doi: 10.3322/caac.21660
- Mesri E., Feitelson M., Munger K. Human viral oncogenesis: a cancer hallmarks analysis // Cell Host Microbe. 2014. Vol. 15, N 3. P. 266–282. doi: 10.1016/j.chom.2014.02.011
- MacLennan S., Marra M. Oncogenic Viruses and the Epigenome: How Viruses Hijack Epigenetic Mechanisms to Drive Cancer // Int J Mol Sci. 2023. Vol. 24, N 11. P. 9543 doi: 10.3390/ijms24119543
- O’Brien J., Hayder H., Zayed Y., Peng C. Overview of MicroRNA Biogenesis, Mechanisms of Actions, and Circulation // Front Endocrinol (Lausanne). 2018. Vol. 9. P. 402. doi: 10.3389/fendo.2018.00402
- Jorge A., Pereira E., Oliveira C., et al. MicroRNAs: understanding their role in gene expression and cancer // Einstein (Sao Paulo). 2021. Vol. 19. P. eRB5996. doi: 10.31744/einstein_journal/2021RB5996
- Pfeffer S., Zavolan M., Grasser F., et al. Identification of virus-encoded microRNAs // Science. 2004. Vol. 304, N 5671. P. 734–736. doi: 10.1126/science.1096781
- Kozomara A., Birgaoanu M., Griffiths-Jones S. miRBase: from microRNA sequences to function // Nucleic Acids Res. 2019. Vol. 47, N D1. P. D155-D162. doi: 10.1093/nar/gky1141
- Yang X., Li H., Sun H., et al. Hepatitis B Virus-Encoded MicroRNA Controls Viral Replication // J Virol. 2017. Vol. 91, N 10. P. e01919-16doi: 10.1128/JVI.01919-16
- Vojtechova Z., Tachezy R. The Role of miRNAs in Virus-Mediated Oncogenesis // Int J Mol Sci. 2018. Vol. 19, N 4. doi: 10.3390/ijms19041217
- Kandeel M. Oncogenic Viruses-Encoded microRNAs and Their Role in the Progression of Cancer: Emerging Targets for Antiviral and Anticancer Therapies // Pharmaceuticals (Basel). 2023. Vol. 16, N 4. P. 485. doi: 10.3390/ph16040485
- Bruni L., Albero G., Mena M., et al. ICO/IARC Information Centre on HPV and Cancer (HPV Information Centre). Human papillomavirus and related diseases in the world // Summary Report 10 March 2023. Режим доступа: https://hpvcentre.net/ Дата обращения: 10 октября 2024
- Bray F., Laversanne M., Sung H., et al. Global cancer statistics 2022: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries // CA Cancer J Clin. 2024. Vol. 74, N 3. P. 229–263. doi: 10.3322/caac.21834
- de Martel C., Georges D., Bray F., et al. Global burden of cancer attributable to infections in 2018: a worldwide incidence analysis // Lancet Glob Health. 2020. Vol. 8, N 2. P. e180–e190. doi: 10.1016/S2214-109X(19)30488-7
- Qian K., Pietila T., Ronty M., et al. Identification and validation of human papillomavirus encoded microRNAs // PLoS One. 2013. Vol. 8, N 7. P. e70202. doi: 10.1371/journal.pone.0070202
- Virtanen E., Pietila T., Nieminen P., et al. Low expression levels of putative HPV encoded microRNAs in cervical samples // Springerplus. 2016. Vol. 5, N 1. P. 1856. doi: 10.1186/s40064-016-3524-3
- Chen C., Ridzon D., Broomer A., et al. Real-time quantification of microRNAs by stem-loop RT-PCR // Nucleic Acids Res. 2005. Vol. 33, N 20. P. e179. doi: 10.1093/nar/gni178
- Enright A., John B., Gaul U., et al. MicroRNA targets in Drosophila // Genome Biol. 2003. Vol. 5, N 1. C. R1. doi: 10.1186/gb-2003-5-1-r1
- Tang D., Chen M., Huang X., et al. SRplot: A free online platform for data visualization and graphing // PLoS One. 2023. Vol. 18, N 11. P. e0294236. doi: 10.1371/journal.pone.0294236
- Chen Y., Wang X. miRDB: an online database for prediction of functional microRNA targets // Nucleic Acids Res. 2020. Vol. 48, N D1. P. D127–D131. doi: 10.1093/nar/gkz757
- Liu W., Wang X. Prediction of functional microRNA targets by integrative modeling of microRNA binding and target expression data // Genome Biol. 2019. Vol. 20, N 1. P. 18. doi: 10.1186/s13059-019-1629-z
- Lewis B., Burge C., Bartel D. Conserved seed pairing, often flanked by adenosines, indicates that thousands of human genes are microRNA targets // Cell. 2005. Vol. 120, N 1. P. 15–20. doi: 10.1016/j.cell.2004.12.035
- Kanellos I., Vergoulis T., Sacharidis D., et al. MR-microT: a MapReduce-based MicroRNA target prediction method // Proceedings of the 26th International Conference on Scientific and Statistical Database Management, 2014. P. 1–4. doi: 10.1145/2618243.2618289
- Reczko M., Maragkakis M., Alexiou P., et al. Functional microRNA targets in protein coding sequences // Bioinformatics. 2012. Vol. 28, N 6. C. 771–776. doi: 10.1093/bioinformatics/bts043
- Zhou Y., Zhou B., Pache L., et al. Metascape provides a biologist-oriented resource for the analysis of systems-level datasets // Nat Commun. 2019. Vol. 10, N 1. P. 1523. doi: 10.1038/s41467-019-09234-6
- Rao X., Huang X., Zhou Z., Lin X. An improvement of the 2^(-delta delta CT) method for quantitative real-time polymerase chain reaction data analysis // Biostat Bioinforma Biomath. 2013. Vol. 3, N 3. P. 71–85.
- Lopez-Raton M., Rodriguez-Álvarez M., Cadarso-Suarez C., Gude-Sampedro F. OptimalCutpoints: an R package for selecting optimal cutpoints in diagnostic tests // Journal of statistical software. 2014. Vol. 61. P. 1–36. doi: 10.18637/jss.v061.i08
- Fobian S., Mei X., Crezee J., et al. Increased human papillomavirus viral load is correlated to higher severity of cervical disease and poorer clinical outcome: A systematic review // J Med Virol. 2024. Vol. 96, N 6. P. e29741. doi: 10.1002/jmv.29741
- Zhou Y., Shi X., Liu J., Zhang L. Correlation between human papillomavirus viral load and cervical lesions classification: A review of current research // Front Med (Lausanne). 2023. Vol. 10. P. 1111269. doi: 10.3389/fmed.2023.1111269
- Baron C., Henry M., Tamalet C., et al. Relationship between HPV 16, 18, 31, 33, 45 DNA detection and quantitation and E6/E7 mRNA detection among a series of cervical specimens with various degrees of histological lesions // J Med Virol. 2015. Vol. 87, N 8. P. 1389–1396. doi: 10.1002/jmv.24157
- Camus C., Vitale S., Loubatier C., et al. Quantification of HPV16 E6/E7 mRNA Spliced Isoforms Viral Load as a Novel Diagnostic Tool for Improving Cervical Cancer Screening // J Clin Med. 2018. Vol. 7, N 12. P. 530. doi: 10.3390/jcm7120530
- Lin X., Liang D., He Z., et al. miR-K12-7-5p encoded by Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus stabilizes the latent state by targeting viral ORF50/RTA // PLoS One. 2011. Vol. 6, N 1. P. e16224. doi: 10.1371/journal.pone.0016224
- Seo G., Chen C., Sullivan C. Merkel cell polyomavirus encodes a microRNA with the ability to autoregulate viral gene expression // Virology. 2009. Vol. 383, N 2. P. 183–187. doi: 10.1016/j.virol.2008.11.001
- Theiss J., Gunther T., Alawi M., et al. A Comprehensive Analysis of Replicating Merkel Cell Polyomavirus Genomes Delineates the Viral Transcription Program and Suggests a Role for mcv-miR-M1 in Episomal Persistence // PLoS Pathog. 2015. Vol. 11, N 7. P. e1004974. doi: 10.1371/journal.ppat.1004974
- Zhang J., Pu X., Xiong Y. kshv-mir-k12-1-5p promotes cell growth and metastasis by targeting SOCS6 in Kaposi’s sarcoma cells // Cancer Manag Res. 2019. Vol. 11. P. 4985–4995. doi: 10.2147/CMAR.S198411
Дополнительные файлы
