Фагоцитарная активность и способность к провоспалительной активации гладкомышечных клеток интимы аорты человека в эксперименте
- Авторы: Хованцева У.С.1, Матвеева Д.К.2, Чакал Д.А.1, Брешенков Д.Г.1, Чарчян Э.Р.1
-
Учреждения:
- ГНЦ РФ ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского»
- ГНЦ РФ «Институт медико-биологических проблем Российской академии наук»
- Выпуск: Том 27, № 4 (2024)
- Страницы: 887-892
- Раздел: КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ
- URL: https://ogarev-online.ru/1028-7221/article/view/267876
- DOI: https://doi.org/10.46235/1028-7221-16684-PAA
- ID: 267876
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Аорта представляет собой самый крупный кровеносный сосуд организма, который достигает в диаметре около 3 см и отвечает за транспортировку обогащенной кислородом артериальной крови от сердца к тканям и органам. Стенка аорты состоит из трех оболочек: внутренней – Tunica intima, средней – Tunica media и наружной Tunica adventitia. Оболочки стенки аорты имеют разнообразный клеточный состав мезенхимального происхождения и включают в себя гладкомышечные клетки (ГМК), фибробласты, эндотелиальные клетки и др. Функциональные нарушения в клетках интимы аорты человека могут приводить к различным сердечно-сосудистым заболеваниям (ССЗ), например, аневризме и, как следствие, расслоению или разрыву грудной аорты. Ежегодно от расслоения и разрыва грудной аорты умирает более 150 тысяч человек по всему миру. Клеточные и молекулярные механизмы развития ССЗ остаются не до конца изученными, поэтому изучение функциональных особенностей различных клеточных популяций, входящих в состав аорты человека, является актуальной на сегодняшний день задачей.
Цель – оценить иммунный ответ, формируемый клетками, входящими в состав интимы аорты человека, в процессе фагоцитоза латексных частиц и интернализации липопротеинов низкой плотности (ЛПНП), для понимания их роли в патогенезе аневризмы.
Эксперименты проводили на ГМК, выделенных из интимы аорты пацинетов с аневризмой. Фагоцитарную активность исследовали путем добавления к ГМК интимы латексных частиц, способность интернализовать ЛПНП оценивали с помощью красителя BDP 630/650 (Lumiprobe, Россия) и биохимического метода, оценку способности к про- и противовоспалительной активации изучали с помощью иммуноферментного анализа (ИФА).
Показано, что поглощение латексных частиц и ЛПНП стимулирует секрецию интерлейкинов гладкомышечными клетками, входящими в состав интимы аорты, а именно провоспалительных цитокинов IL-6 и IL-8. Таким образом, в условиях организма может происходить переключение фенотипа ГМК интимы аорты человека с сократительного на секреторный или макрофагоподобный, что говорит об участии данного фенотипического перехода клеток в процессе развития аневризмы.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
У. С. Хованцева
ГНЦ РФ ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского»
Автор, ответственный за переписку.
Email: ulyana.khovantseva@gmail.com
младший научный сотрудник
Россия, 119435, Москва, Абрикосовский пер., 2Д. К. Матвеева
ГНЦ РФ «Институт медико-биологических проблем Российской академии наук»
Email: ulyana.khovantseva@gmail.com
младший научный сотрудник лаборатории клеточной физиологии
Россия, МоскваД. А. Чакал
ГНЦ РФ ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского»
Email: ulyana.khovantseva@gmail.com
к.м.н., научный сотрудник I кардиохирургического отделения (отделение реконструктивно-восстановительной сердечно-сосудистой хирургии)
Россия, 119435, Москва, Абрикосовский пер., 2Д. Г. Брешенков
ГНЦ РФ ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского»
Email: ulyana.khovantseva@gmail.com
к.м.н., старший научный сотрудник I кардиохирургического отделения (отделение реконструктивно-восстановительной сердечно-сосудистой хирургии)
Россия, 119435, Москва, Абрикосовский пер., 2Э. Р. Чарчян
ГНЦ РФ ФГБНУ «Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского»
Email: ulyana.khovantseva@gmail.com
д.м.н., член-корр. РАН, профессор, заведующий I кардиохирургическим отделением (отделение реконструктивно-восстановительной сердечно-сосудистой хирургии)
Россия, 119435, Москва, Абрикосовский пер., 2Список литературы
- Alegret J. M., Masana L., Martinez-Micaelo N., Heras M., Beltran-Debon R. LDL cholesterol and apolipoprotein B are associated with ascending aorta dilatation in bicuspid aortic valve patients. Int. J. Med., 2015, Vol. 108, no. 10, pp. 795-801.
- Bossone E., Eagle K.A. Epidemiology and management of aortic disease: aortic aneurysms and acute aortic syndromes. Cardiology, 2021, Vol. 18, no. 5, pp. 331-348.
- Cao G., Xuan X., Li Y., Hu J., Zhang R., Jin H., Dong H. Single-cell RNA sequencing reveals the vascular smooth muscle cell phenotypic landscape in aortic aneurysm. Cell Commun. Signal., 2023. Vol. 21, no. 1, 113. doi: 10.1186/s12964-023-01120-5.
- Folch J., Lees M., Sloane Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification of total lipides from animal tissues. J. Biol. Chem., 1957, Vol. 226, no. 1, pp. 497-509.
- Han X., Boisvert W.A. Interleukin-10 protects against atherosclerosis by modulating multiple atherogenic macrophage function. Thromb. Haemost., 2015, Vol. 113, no. 3, pp. 505-512.
- Kiseleva D.G., Kolmogorov V.S., Cherednichenko V.R., Khovantseva U.S., Bogatyreva A.I., Markina Y.V., Gorelkin P.V. Erofeev A.S., Markin A.M. Effect of LDL Extracted from human plasma on membrane stiffness in living endothelial cells and macrophages via scanning ion conductance microscopy. Cells, 2024, Vol. 13, no. 4, 358. doi: 10.3390/cells13040358.
- Komutrattananont P., Mahakkanukrauh P., Das S. Morphology of the human aorta and age-related changes: anatomical facts. Anat. Cell Biol., 2019, Vol. 52, no. 2, 109. doi: 10.5115/acb.2019.52.2.109.
- Krafcik B.M., Stone D.H., C. Ming, Jarmel I.A., Eid M., Goodney P.P., Columbo J.A., Smith M.M. Changes in global mortality from aortic aneurysm. J. Vasc. Surg., 2024, S0741-5214(24)00402-6. doi: 10.1016/j.jvs.2024.02.025.
- Li K., Wong D.K., Luk F.S., Kim R.Y., Raffai R.L. Isolation of plasma lipoproteins as a source of extracellular RNA. Methods Mol. Biol., 2018. Vol. 1740, pp. 139-153.
- Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R. J. protein measurement with the folin phenol reagent. J. Biol. Chem., 1951. Vol. 193, no.1, pp. 265-275.
- Lu H., Du W., Ren L., Hamblin M.H., Becker R.C., Chen Y.E., Fan Y. Vascular smooth muscle cells in aortic aneurysm: from genetics to mechanisms. J. Am. Heart Assoc., 2021, Vol. 10, no. 24, e023601. doi: 10.1161/JAHA.121.023601.
- Petsophonsakul P., Furmanik M., Forsythe R., Dweck M., Schurink G.W., Natour E., Reutelingsperger C., Jacobs M., Mees B., Schurgers L. Role of vascular smooth muscle cell phenotypic switching and calcification in aortic aneurysm formation. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 2019, Vol. 39, no. 7, pp. 1351-1368.
- Poursaleh A., Esfandiari G., Beigee F.S., Eshghifar N., Najafi M. Isolation of intimal endothelial cells from the human thoracic aorta: Study protocol. Med. J. Islam. Repub. Iran, 2019, Vol. 33, 51. doi: 10.34171/mjiri.33.51.
- Tertov V.V., Orekhov A.N. Metabolism of native and naturally occurring multiple modified low density lipoprotein in smooth muscle cells of human aortic intima. Exp. Mol. Pathol., 1997, Vol. 64, no. 3, pp. 127-145.
Дополнительные файлы
