Определение эффективности протокола децеллюляризации ксеногенного костного матрикса в исследованиях in vitro и in vivo
- Авторы: Смоленцев Д.В.1, Лукина Ю.С.1, Бионышев-Абрамов Л.Л.1, Сережникова Н.Б.2, Ковалёв А.В.1, Берченко Г.Н.1
-
Учреждения:
- Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова
- Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова
- Выпуск: Том 30, № 4 (2023)
- Страницы: 431-443
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://ogarev-online.ru/0869-8678/article/view/254213
- DOI: https://doi.org/10.17816/vto622849
- ID: 254213
Цитировать
Аннотация
Обоснование. Задачи восстановления целостности тканей, в том числе костной, на текущий момент являются крайне актуальными — как из-за возрастания высокоэнергетических травм, сопровождающихся тяжёлыми повреждениями скелета, так и из-за растущего числа ревизионных эндопротезирований, требующих применения костно-пластических материалов.
Цель. Определение эффективности разработанного протокола децеллюляризации ксеногенного костного матрикса в доклинических исследованиях in vitro, направленных на определение степени очистки матрикса, на основе гистологической, микротомографической оценок, методом клеточных культур, и в исследованиях in vivo, направленных на определение биосовместимости и остеогенных свойств материалов.
Методы. Ксеногенную спонгиозную ткань бедренных костей крупного рогатого скота фрагментировали до размеров 10×10×10 мм и обрабатывали водой, гипотоническим раствором и 3% раствором перекиси водорода, применяли глубокую очистку методом сверхкритической флюидной экстракции. Эффективность оптимального протокола проверялась in vitro методом клеточных культур и in vivo.
Результаты. Выявлено идеальное взаимодействие клеточной культуры с костно-пластическим материалом, что может быть связано с отсутствием цитотоксических веществ в матриксе, оптимальной шероховатостью и хорошими адгезивными свойствами поверхности, пригодной для формирования стромальными клетками костного мозга фокальных контактов, их адгезии, распластывания и пролиферации. Определяется выраженная костная мозоль со сформированными костными мостиками, проходящими по поверхности имплантированного материала, через 30 суток после имплантации. К данному сроку исследования дефект практически закрыт за счёт интермедиарной костной мозоли, имплантированный материал встречается в виде отдельных небольших безостеоцитных фрагментов.
Заключение. Очищенный по разработанному протоколу ксеногенный костный матрикс является био- и цитосовместимым, обладает выраженными остеокондуктивными свойствами, эффективно стимулирует регенеративный остеогенез в живом организме.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Дмитрий Владимирович Смоленцев
Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова
Автор, ответственный за переписку.
Email: SmolentsevDV@cito-priorov.ru
ORCID iD: 0000-0001-5386-1929
Россия, Москва
Юлия Сергеевна Лукина
Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова
Email: lukina_rctu@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0121-1232
SPIN-код: 2814-7745
канд. тех. наук
Россия, МоскваЛеонид Львович Бионышев-Абрамов
Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова
Email: sity-x@bk.ru
ORCID iD: 0000-0002-1326-6794
Россия, Москва
Наталья Борисовна Сережникова
Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова
Email: natalia.serj@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4097-1552
SPIN-код: 2249-9762
канд. биол. наук
Россия, МоскваАлексей Вячеславович Ковалёв
Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова
Email: kovalevav@cito-priorov.ru
ORCID iD: 0000-0003-1277-5228
SPIN-код: 2413-5980
канд. мед. наук
Россия, МоскваГеннадий Николаевич Берченко
Национальный медицинский исследовательский центр травматологии и ортопедии им. Н.Н. Приорова
Email: berchenkogn@cito-priorov.ru
ORCID iD: 0000-0002-7920-0552
SPIN-код: 3367-2493
д-р мед. наук
Россия, МоскваСписок литературы
- Pelegrine A.A., Teixeira M.L., Sperandio M., et al. Can bone marrow aspirate concentrate change the mineralization pattern of the anterior maxilla treated with xenografts? A preliminary study // Contemp Clin Dent. 2016. Vol. 7, № 1. Р. 21–6. doi: 10.4103/0976-237X.177112
- Barone A., Aldini N.N., Fini M., et al. Xenograft versus extraction alone for ridge preservation after tooth removal: a clinical and histomorphometric study // J Periodontol. 2008. Vol. 79, № 8. Р. 1370–7. doi: 10.1902/jop.2008.070628
- Brugnami F., Then P.R., Moroi H., et al. GBR in human extraction sockets and ridge defects prior to implant placement: clinical results and histologic evidence of osteoblastic and osteoclastic activities in DFDBA // Int J Periodontics Restorative Dent. 1999. Vol. 19, № 3. Р. 259–67.
- Esposito M., Grusovin M.G., Felice P., et al. The efficacy of horizontal and vertical bone augmentation procedures for dental implants — a Cochrane systematic review // Eur J Oral Implantol. 2009. Vol. 2, № 3. Р. 167–84.
- Vo T.N., Kasper F.K., Mikos A.G. Strategies for controlled delivery of growth factors and cells for bone regeneration // Advanced Drug Delivery Reviews. 2012. Vol. 64, № 12. Р. 1292–1309. doi: 10.1016/j.addr.2012.01.016
- Belthur M.V., Conway J.D., Jindal G., Ranade A., Herzenberg J.E. Bone graft harvest using a new intramedullary system // Clin Orthop. 2008. Vol. 466, № 12. Р. 2973–2980. doi: 10.1007/s11999-008-0538-3
- Conway J.D. Autograft and nonunions: morbidity with intramedullary bone graft versus iliac crest bone graft // Orthop Clin North Am. 2010. Vol. 41, № 1. Р. 75–84. doi: 10.1016/j.ocl.2009.07.006
- Schwartz C.E., Martha J.F., Kowalski P., Wang D.A., Bode R., Li L., Kim D.H. Prospective evaluation of chronic pain associated with posterior autologous iliac crest bone graft harvest and its effect on postoperative outcome // Health Qual Life Outcomes. 2009. Vol. 7. Р. 49. doi: 10.1186/1477-7525-7-49
- Bigham A.S., Dehghani S.N., Shafiei Z., Torabi Nezhad S. Xenogenic demineralized bone matrix and fresh autogenous cortical bone effects on experimental bone healing: radiological, histopathological and biomechanical evaluation // J Orthop Traumatol. 2008. Vol. 9, № 2. Р. 73–80. doi: 10.1007/s10195-008-0006-6
- Erkhova L.V., Panov Y.M., Gavryushenko N.S., et al. Supercritical Treatment of Xenogenic Bone Matrix in the Manufacture of Implants for Osteosynthesis // Russ J Phys Chem B. 2020. Vol. 14, № 7. Р. 1158–1162. doi: 10.1134/S1990793120070064
- Brydone A.S., Meek D., Maclaine S. Bone grafting, orthopaedic biomaterials, and the clinical need for bone engineering // Proceedings of the Institution of Mechanical Engineers, Part H: Journal of Engineering in Medicine. 2010. Vol. 224, № 12. Р. 1329–1343. doi: 10.1243/09544119jeim770
- Thangarajah T., Shahbazi S., Pendegrass C.J., Lambert S., Alexander S., Blunn G.W. Tendon Reattachment to Bone in an Ovine Tendon Defect Model of Retraction Using Allogenic and Xenogenic Demineralised Bone Matrix Incorporated with Mesenchymal Stem Cells // PLoS One. 2016. Vol. 11, № 9. Р. e0161473. doi: 10.1371/journal.pone.0161473
- Sackett S.D., Tremmel D.M., Ma F., Feeney A.K., Maguire R.M., Brown M.E., et al. Extracellular matrix scaffold and hydrogel derived from decellularized and delipidized human pancreas // Sci Rep. 2018. Vol. 8, № 1. Р. 1–16. doi: 10.1038/s41598-018-28857-1
- Hussey G.S., Dziki J.L., Badylak S.F. Extracellular matrix-based materials for regenerative medicine // Nat Rev Mater. 2018. Vol. 3, № 7. Р. 159–73. doi: 10.1038/s41578-018-0023-x
- Keane T.J., Swinehart I.T., Badylak S.F. Methods of tissue decellularization used for preparation of biologic scaffolds and in vivo relevance // Methods. 2015. Vol. 84. Р. 25–34. doi: 10.1016/j.ymeth.2015.03.005
- Hillebrandt K.H., Everwien H., Haep N., Keshi E., Pratschke J., Sauer I.M. Strategies based on organ decellularization and recellularization // Transpl Int. 2019. Vol. 32, № 6. Р. 571–85. doi: 10.1111/tri.13462
- Nonaka P.N., Campillo N., Uriarte J.J., et al. Effects of freezing/thawing on the mechanical properties of decellularized lungs // J Biomed Mater Res — Part A. 2014. Vol. 102, № 2. Р. 413–419. doi: 10.1002/jbm.a.34708
Дополнительные файлы
