Дифференциация вакцинных штаммов и полевых изолятов герпесвируса крупного рогатого скота 1-го типа (Orthoherpesviridae: Varicellovirus)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Введение. Дифференциация вакцинных штаммов и полевых изолятов герпесвируса крупного рогатого скота 1-го типа – Varicellovirus bovinealpha1 – актуальная задача для повышения качества диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота (ИРТ КРС). Имеется несколько подходов для решения этой задачи. Наиболее удачными являются методики, предложенные R.W. Fulton и S.K. Chothe в 2013 и 2018 гг. соответственно.

Цель исследования – отработка методик, предложенных R.W. Fulton и S.K. Chothe, для изучения возможности их оптимизации и внедрения в рутинную лабораторную диагностику ИРТ КРС в России.

Материалы и методы. Исследовали 4 вакцинных штамма и 6 полевых изолятов вируса ИРТ КРС с помощью молекулярно-генетических методов по алгоритмам R.W. Fulton и S.K. Chothe для выяснения наличия однонуклеотидных замен в 11 контрольных точках генома вируса в сравнении с нуклеотидной последовательностью референтного штамма Cooper JX898220.

Результаты. Применение обоих методов подтвердило, что отечественные штаммы вируса ИРТ КРС, используемые для производства инактивированных вакцин, имеют происхождение от полевых изолятов вируса. Как референтные, так и современные эпизоотические изоляты, полученные нами и нашими коллегами в разное время в России, являются эпизоотическими штаммами, которые не имеют прямой связи с масштабным применением зарубежных вакцин, в том числе живых, как среди собственного коренного скота, так и среди животных, ввезенных из-за границы. Ни один из опробованных нами методов не позволяет различить Varicellovirus bovinealpha1 и Varicellovirus bovinealpha5.

Заключение. Методики, предложенные R.W. Fulton (2013) и S.K. Chothe (2018), можно применять для дифференциации вакцинных штаммов и полевых изолятов вируса ИРТ КРС только после рекомендованной нами предварительной дифференциации герпесвирусов КРС 1-го и 5-го типов.

Об авторах

Александр Владимирович Пчельников

ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина»

Email: vetdr-mom@list.ru
ORCID iD: 0000-0002-9712-3079

д-р вет. наук, доцент, доцент кафедры эпизоотологии и организации ветеринарного дела

Россия, 109472, Москва

Антон Геннадиевич Южаков

ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина»

Email: anton_oskol@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0426-9678

канд. биол. наук, старший научный сотрудник научно-исследовательской межкафедральной лаборатории

Россия, 109472, Москва

Ирина Александровна Махова

ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина»

Автор, ответственный за переписку.
Email: makhovairinafvm@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0008-1851-8963

лаборант научно-исследовательской межкафедральной лаборатории

Россия, 109472, Москва

Список литературы

  1. Mayfield J.E., Good P.J., VanOort H.J., Campbell A.R., Reed D.E. Cloning and cleavage site mapping of DNA from bovine herpesvirus 1 (Cooper strain). J. Virol. 1983; 47(1): 259–64. https://doi.org/10.1128/JVI.47.1.259-264.1983
  2. Baumeister J., Klupp B.G., Mettenleiter T.C. Pseudorabies virus and equine herpesvirus 1 share a nonessential gene which is absent in other herpesviruses and located adjacent to a highly conserved gene cluster. J. Virol. 1995; 69(9): 5560–7. https://doi.org/10.1128/JVI.69.9.5560-5567.1995
  3. Henderson G., Zhang Y., Inman M., Jones D., Jones C. Infected cell protein 0 encoded by bovine herpesvirus 1 can activate caspase 3 when overexpressed in transfected cells. J. Gen. Virol. 2004; 85(Pt. 12): 3511–6. https://doi.org/10.1099/vir.0.80371-0
  4. Inman M., Zhou J., Webb H., Jones C. Identification of a novel bovine herpesvirus 1 transcript containing a small open reading frame that is expressed in trigeminal ganglia of latently infected cattle. J. Virol. 2004; 78(10): 5438–47. https://doi.org/10.1128/jvi.78.10.5438-5447.2004
  5. Lipińska A.D., Koppers-Lalic D., Rychłowski M., Admiraal P., Rijsewijk F.A., Bieńkowska-Szewczyk K., et al. Bovine herpesvirus 1 UL49.5 protein inhibits the transporter associated with antigen processing despite complex formation with glycoprotein M. J. Virol. 2006; 80(12): 5822–32. https://doi.org/10.1128/JVI.02707-05
  6. Winkler M.T., Doster A., Jones C. Persistence and reactivation of bovine herpesvirus 1 in the tonsils of latently infected calves. J. Virol. 2000; 74(11): 5337–46. https://doi.org/10.1128/jvi.74.11.5337-5346.2000
  7. Fulton R.W., d’Offay J.M., Eberle R. Bovine herpesvirus-1: comparison and differentiation of vaccine and field strains based on genomic sequence variation. Vaccine. 2013; 31(11): 1471–9. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2013.01.013
  8. Fulton R.W., d’Offay J.M., Dubovi E.J., Eberle R. Bovine herpesvirus-1: Genetic diversity of field strains from cattle with respiratory disease, genital, fetal disease and systemic neonatal disease and their relationship to vaccine strains. Virus Res. 2016; 223: 115–21. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2016.06.017
  9. Fulton R.W., d’Offay J.M., Eberle R., Moeller R.B., Campen H.V., O’Toole D., et al. Bovine herpesvirus-1: evaluation of genetic diversity of subtypes derived from field strains of varied clinical syndromes and their relationship to vaccine strains. Vaccine. 2015; 33(4): 549–58. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2014.11.033
  10. Fulton R.W., d’Offay J.M., Landis C., Miles D.G., Smith R.A., Saliki J.T., et al. Detection and characterization of viruses as field and vaccine strains in feedlot cattle with bovine respiratory disease. Vaccine. 2016; 34(30): 3478–92. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2016.04.020
  11. Chase C.C.L., Fulton R.W., O’Toole D., Gillette B., Daly R.F., Perry G., et al. Bovine herpesvirus 1 modified live virus vaccines for cattle reproduction: Balancing protection with undesired effects. Vet. Microbiol. 2017; 206: 69–77. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2017.03.016
  12. Chothe S.K., Sebastian A., Thomas A., Nissly R.H., Wolfgang D., Byukusenge M., et al. Whole-genome sequence analysis reveals unique SNP profiles to distinguish vaccine and wild-type strains of bovine herpesvirus-1 (BoHV-1). Virology. 2018; 522: 27–36. https://doi.org/10.1016/j.virol.2018.06.015
  13. Пчельников, А.В. Совершенствование и разработка методов диагностики и профилактики герпесвирусных болезней крупного рогатого скота: специальность 4.2.3. Инфекционные болезни и иммунология животных: автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора ветеринарных наук / Пчельников Александр Владимирович. – Москва, 2025. – 34 с.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Пчельников А.В., Южаков А.Г., Махова И.А., 2025

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).