Оценка эффективности химической инактивации и иммуногенности варианта Омикрон вируса SARS-CoV-2
- Авторы: Жаппарова Г.А.1, Мырзахметова Б.Ш.1, Тленчиева Т.М.1, Тусипова А.А.1, Бисенбаева К.Б.1, Тойтанова А.С.1, Кутумбетов Л.Б.1
-
Учреждения:
- ТОО «Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности»
- Выпуск: Том 69, № 5 (2024)
- Страницы: 459-469
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://ogarev-online.ru/0507-4088/article/view/269835
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-253
- EDN: https://elibrary.ru/vpecfj
- ID: 269835
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Введение. Быстрое распространение новой коронавирусной инфекции (COVID-19) среди населения многих стран мира способствовало появлению множества генетических вариантов вируса SARS-CoV-2. По сравнению с предыдущими вариантами коронавируса, новые субварианты варианта Омикрон продемонстрировали заметную степень мутации. Инактивация вируса является одним из наиболее важных этапов разработки инактивированных вакцин. В качестве химического инактиванта в настоящее время используют β-пропиолактон и формальдегид, однако не существует единого стандарта для проектирования и определения процесса инактивации.
Цель работы. Оценка и сравнение эффективности химической инактивации двух агентов: формальдегида и β-пропиолактона в отношении иммуногенности варианта Омикрон вируса SARS-CoV-2.
Материалы и методы. Для получения варианта Омикрон вируса SARS-CoV-2 использованы назофарингеальные мазки. Для выделения, репродукции, титрования вируса, а также постановки реакции нейтрализации использовали культуру клеток Vero. Проведена кинетика изучения инактивации вируса химическими агентами: формальдегидом и β-пропиолактоном.
Результаты. Проведены исследования по сравнительной оценке эффективности химических инактивантов, используемых для инактивации варианта Омикрон вируса SARS-CoV-2, планируемого для использования в изготовлении инактивированной цельновирионной вакцины. В качестве инактивантов использованы формальдегид и β-пропиолактон в концентрациях 0,05, 0,1, 0,5% от общего объема суспензии вируса. Установлено, что полная инактивация вируса формальдегидом в использованных концентрациях при температуре 37 °С происходит в течение 2 ч, а при использовании β-пропиолактона ‒ в течение 12 ч.
Заключение. Образцы вируса, инактивированные использованными инактивантами, обладают разной антигенной активностью в зависимости от концентрации инактивантов. Наиболее выраженная антигенная активность проявляется у образцов возбудителя, которые подвергались обработке инактивантом в щадящей концентрации, равной 0,05%. Повышение концентрации инактивантов в 5 раз и более кратно приводит к значимому снижению антигенности вируса SARS-CoV-2. При использованных режимах инактивации потеря биологической активности вируса происходит быстрее, антигенность сохраняется в большей степени при обработке формальдегидом.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Гулжан Амировна Жаппарова
ТОО «Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности»
Автор, ответственный за переписку.
Email: Gulzhan1003@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5382-831X
магистр биологии, старший научный сотрудник лаборатории «Особо опасные инфекционные заболевания»
Казахстан, 080409, пгт. ГвардейскийБалжан Шайзадаевна Мырзахметова
ТОО «Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности»
Email: b.myrzakhmetova@biosafety.kz
ORCID iD: 0000-0002-4141-7174
канд. биол. наук, заведующая лабораторией «Особо опасные инфекционные заболевания»
Казахстан, 080409, пгт. ГвардейскийТалшынгул Муратовна Тленчиева
ТОО «Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности»
Email: t.m.tlenchieva@mail.ru
ORCID iD: 0009-0006-7831-4212
магистр химии, младший научный сотрудник лаборатории «Особо опасные инфекционные заболевания»
Казахстан, 080409, пгт. ГвардейскийАйганым Айткаликызы Тусипова
ТОО «Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности»
Email: aiganym.t24@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-7767-0542
магистр естественных наук, старший лаборант лаборатории «Особо опасные инфекционные заболевания»
Казахстан, 080409, пгт. ГвардейскийКарина Бисенбаевна Бисенбаева
ТОО «Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности»
Email: bisenbayeva.karina@bk.ru
ORCID iD: 0000-0001-5788-6074
магистр биологии, младший научный сотрудник лаборатории «Особо опасные инфекционные заболевания»
Казахстан, 080409, пгт. ГвардейскийАйжан Сейткаримовна Тойтанова
ТОО «Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности»
Email: aizhana-1308@mail.ru
ORCID iD: 0009-0004-9526-3539
магистр биологии, младший научный сотрудник лаборатории «Особо опасные инфекционные заболевания»
Казахстан, 080409, пгт. ГвардейскийЛеспек Бекболатович Кутумбетов
ТОО «Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности»
Email: lespek.k@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-8481-0673
д-р вет. наук, профессор, главный научный сотрудник лаборатории «Особо опасные инфекционные заболевания»
Казахстан, 080409, пгт. ГвардейскийСписок литературы
- Han Q., Lin Q., Jin S., You L. Coronavirus 2019-nCoV: A brief perspective from the front line. J. Infect. 2020; 80(4): 373–7. https://doi.org/10.1016/j.jinf.2020.02.010
- Wrapp D., Wang N., Corbett K.S., Goldsmith J.A., Hsieh C.L., Abiona O., et al. Cryo-EM structure of the 2019-nCoV spike in the prefusion conformation. Science. 2020; 367(6483): 1260–3. https://doi.org/10.1126/science.abb2507
- Xu D., Zhang Z., Chu F., Li Y., Jin L., Zhang L., et al. Genetic variation of SARS coronavirus in Beijing Hospital. Emerg. Infect. Dis. 2004; 10(5): 789–94. https://doi.org/10.3201/eid1005.030875
- Bai Y., Du Z., Xu M., Wang L., Wu P., Lau E.H.Y., et al. International risk of SARS-CoV-2 Omicron variant importations originating in South Africa. medRxiv. 2021; 2021.12.07.21267410. Preprint. https://doi.org/10.1101/2021.12.07.21267410
- Viana R., Moyo S., Amoako D.G., Tegally H., Scheepers C., Althaus C.L., et al. Rapid epidemic expansion of the SARS-CoV-2 Omicron variant in southern Africa. Nature. 2022; 603(7902): 679–86. https://doi.org/10.1038/s41586-022-04411-y
- Tegally H., Moir M., Everatt J., Giovanetti M., Scheepers C., Wilkinson E., et al. Emergence of SARS-CoV-2 Omicron lineages BA.4 and BA.5 in South Africa. Nat. Med. 2022; 28(9): 1785–90. https://doi.org/10.1038/s41591-022-01911-2
- Rahimi F., Bezmin Abadi A.T. The Omicron subvariant BA.2: Birth of a new challenge during the COVID-19 pandemic. Int. J. Surg. 2022; 99: 106261. https://doi.org/10.1016/j.ijsu.2022.106261
- Fonager J, Bennedbæk M, Bager P., Wohlfahrt J., Ellegaard K.M., Ingham A.C., et al. Molecular epidemiology of the SARS-CoV-2 variant Omicron BA.2 sub-lineage in Denmark, 29 November 2021 to 2 January 2022. Euro Surveill. 2022; 27(10): 2200181. https://doi.org/10.2807/1560-7917.ES.2022.27.10.2200181
- Chen L.L., Abdullah S.M.U., Chan W.M., Chan B.P., Ip J.D., Chu A.W., et al. Contribution of low population immunity to the severe Omicron BA.2 outbreak in Hong Kong. Nat. Commun. 2022; 13(1): 3618. https://doi.org/10.1038/s41467-022-31395-0
- O’Toole Á., Pybus O.G., Abram M.E., Kelly E.J., Rambaut A. Pango lineage designation and assignment using SARS-CoV-2 spike gene nucleotide sequences. BMC Genomics. 2022; 23(1): 121. https://doi.org/10.1186/s12864-022-08358-2
- Rambaut A., Holmes E.C., O’Toole Á., Hill V., McCrone J.T., Ruis C., et al. A dynamic nomenclature proposal for SARS-CoV-2 lineages to assist genomic epidemiology. Nat. Microbiol. 2020; 5(11): 1403–7. https://doi.org/10.1038/s41564-020-0770-5
- Jung C., Kmiec D., Koepke L., Zech F., Jacob T., Sparrer K.M.J., et al. Omicron: what makes the latest SARS-CoV-2 variant of concern so concerning? J. Virol. 2022; 96(6): e020772. https://doi.org/10.1128/jvi.02077-21
- Our world in data. Mathieu E., Ritchie H., Rodés-Guirao L., Appel C., Giattino C., Hasell J., et al. Coronavirus Pandemic (COVID-19); 2020. Available at: https://ourworldindata.org/coronavirus
- Malik J.A., Ahmed S., Mir A., Shinde M., Bender O., Alshammari F., et al. The SARS-CoV-2 mutations versus vaccine effectiveness: New opportunities to new challenges. J. Infect. Public Health. 2022; 15(2): 228–40. https://doi.org/10.1016/j.jiph.2021.12.014
- Wang Q., Ye S.B., Zhou Z.J., Song A.L., Zhu X., Peng J.M., et al. Key mutations in the spike protein of SARS-CoV-2 affecting neutralization resistance and viral internalization. J. Med. Virol. 2023; 95(1): e28407. https://doi.org/10.1002/jmv.28407
- Murdin A.D., Barreto L., Plotkin S. Inactivated poliovirus vaccine: past and present experience. Vaccine. 1996; 14(8): 735–46. https://doi.org/10.1016/0264-410x(95)00211-i
- Zakarya K., Kutumbetov L., Orynbayev M., Abduraimov Y., Sultankulova K., Kassenov M., et al. Safety and immunogenicity of a QazCovid-in® inactivated whole-virion vaccine against COVID-19 in healthy adults: A single-centre, randomised, single-blind, placebo-controlled phase 1 and an open-label phase 2 clinical trials with a 6 months follow-up in Kazakhstan. EClinicalMedicine. 2021; 39: 101078. https://doi.org/10.1016/j.eclinm.2021.101078
- Gupta D., Parthasarathy H., Sah V., Tandel D., Vedagiri D., Reddy S., et al. Inactivation of SARS-CoV-2 by β-propiolactone causes aggregation of viral particles and loss of antigenic potential. Virus Res. 2021; 305: 198555. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2021.198555
- Widera M., Westhaus S., Rabenau H.F., Hoehl S., Bojkova D., Cinatl J., et al. Evaluation of stability and inactivation methods of SARS-CoV-2 in context of laboratory settings. Med. Microbiol. Immunol. 2021; 210(4): 235–44. https://doi.org/10.1007/s00430-021-00716-3
- Awadasseid A., Wu Y., Tanaka Y., Zhang W. Current advances in the development of SARS-CoV-2 vaccines. Int. J. Biol. Sci. 2021; 17(1): 8–19. https://doi.org/10.7150/ijbs.52569
- Herrera-Rodriguez J., Signorazzi A., Holtrop M., de Vries-Idema J., Huckriede A. Inactivated or damaged? Comparing the effect of inactivation methods on influenza virions to optimize vaccine production. Vaccine. 2019; 37(12): 1630–7. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2019.01.086
- Patterson E.I., Prince T., Anderson E.R., Casas-Sanchez A., Smith S.L., Cansado-Utrilla C., et al. Methods of inactivation of SARS-CoV-2 for downstream biological assays. J. Infect. Dis. 2020; 222(9): 1462–7. https://doi.org/10.1093/infdis/jiaa507
- Auerswald H., Yann S., Dul S., In S., Dussart P., Martin N.J., et al. Assessment of inactivation procedures for SARS-CoV-2. J. Gen. Virol. 2021; 102(3): 001539. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001539
- Goldstein M.A., Tauraso N.M. Effect of formalin, beta-propiolactone, merthiolate, and ultraviolet light upon influenza virus infectivity chicken cell agglutination, hemagglutination, and antigenicity. Appl. Microbiol. 1970; 19(2): 290–4. https://doi.org/10.1128/am.19.2.290-294.1970
- Fan C., Ye X., Ku Z., Kong L., Liu Q., Xu C., et al. Beta-propiolactone inactivation of coxsackievirus A16 induces structural alteration and surface modification of viral capsids. J. Virol. 2017; 91(8): e00038-17. https://doi.org/10.1128/JVI.00038-17
- Wang H., Zhang Y., Huang B., Deng W., Quan Y., Wang W., et al. Development of an inactivated vaccine candidate, BBIBP-CorV, with potent protection against SARS-CoV-2. Cell. 2020; 182(3): 713–21.e9. https://doi.org/10.1016/j.cell.2020.06.008
- Gao Q., Bao L., Mao H., Wang L., Xu K., Yang M., et al. Development of an inactivated vaccine candidate for SARS-CoV-2. Science. 2020; 369(6499): 77–81. https://doi.org/10.1126/science.abc1932
- Zhang X.Y., Guo J., Wan X., Zhou J.G., Jin W.P., Lu J., et al. Biochemical and antigenic characterization of the structural proteins and their post-translational modifications in purified SARS-CoV-2 virions of an inactivated vaccine candidate. Emerg. Microbes Infect. 2020; 9(1): 2653–62. https://doi.org/10.1080/22221751.2020.1855945
- Chen H., Xie Z., Long R., Fan S., Li H., He Z., et al. A valid protective immune response elicited in rhesus macaques by an inactivated vaccine is capable of defending against SARS-CoV-2 infection. bioRxiv. 2020; 2020.08.04.235747. Preprint. https://doi.org/10.1101/2020.08.04.235747
- Basso C.R., Malossi C.D., Haisi A., de Albuquerque Pedrosa V., Barbosa A.N., Grotto R.T., et al. Fast and reliable detection of SARS-CoV-2 antibodies based on surface plasmon resonance. Anal. Methods. 2021; 13(29): 3297–306. https://doi.org/10.1039/d1ay00737h
- Reed L., Muench H. A simple method of estimation fifty percent and pints. J. Amer. Hyg. 1938; 27(3): 493–7. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.aje.a118408
- Мырзахметова Б.Ш., Жаппарова Г.А., Бисенбаева К.Б., Тойтанова А.С., Туысканова М.С., Жугунисов К.Д. и др. Иммунная реактивность двух биологических моделей на прививку инактивированной вакциной QazVac против коронавирусной инфекции COVID-19. Вопросы вирусологии. 2024; 69(3): 219–30. https://doi.org/10.36233/0507-4088-222 https://elibrary.ru/mcackf
- Жугунисов К.Д., Керимбаев А.А., Копеев С.К., Мырзахметова Б.Ш., Туысканова М.С., Наханов А.К. и др. Вирус SARS-CoV-2: выделение, культивирование, термостабильность, инактивация и пассирование. Вестник КазНУ. Серия биологическая. 2022; 90(1): 73–89. https://doi.org/10.26577/eb.2022.v90.i1.07
- Chan J.F., Yip C.C., To K.K., Tang T.H., Wong S.C., Leung K.H., et al. Improved molecular diagnosis of COVID-19 by the novel, highly sensitive and specific COVID-19-RdRp/Hel real-time reverse transcription-PCR assay validated in vitro and with clinical specimens. J. Clin. Microbiol. 2020; 58(5): e00310-20. https://doi.org/10.1128/jcm.00310-20
- Yuan Y., Wang R.T., Xia J., Cao H.J. Interventions for preventing influenza: an overview of Cochrane systematic reviews and a Bayesian network meta-analysis. J. Integr. Med. 2021; 19(6): 503–14. https://doi.org/10.1016/j.joim.2021.09.001
- Stuurman A.L., Marano C., Bunge E.M., De Moerlooze L., Shouval D. Impact of universal mass vaccination with monovalent inactivated hepatitis A vaccines – а systematic review. Hum. Vaccin. Immunother. 2017; 13(3): 724–36. https://doi.org/10.1080/21645515.2016.1242539
- Hegde N.R., Gore M.M. Japanese encephalitis vaccines: immunogenicity, protective efficacy, effectiveness, and impact on the burden of disease. Hum. Vaccin. Immunother. 2017; 13(6): 1–18. https://doi.org/10.1080/21645515.2017.1285472
- Yu S., Wei Y., Liang H., Ji W., Chang Z., Xie S., et al. Comparison of physical and biochemical characterizations of SARS-CoV-2 inactivated by different treatments. Viruses. 2022, 14(9): 1938. https://doi.org/10.3390/v14091938
- Kordyukova L.V., Moiseenko A.V., Serebryakova M.V., Shuklina M.A., Sergeeva M.V., Lioznov D.A., et al. Structural and immunoreactivity properties of the SARS-CoV-2 spike protein upon the development of an inactivated vaccine. Viruses. 2023; 15(2): 480. https://doi.org/10.3390/v15020480
Дополнительные файлы
