Молекулярно-биологические закономерности сохранения циркуляции вируса SARS-CoV-2 в человеческой популяции
- Авторы: Кустова Д.Д.1,2, Почтовый А.А.1,2,3, Шпакова О.Г.4, Штинова И.А.4, Кузнецова Н.А.1, Клейменов Д.А.1, Комаров А.Г.4, Гущин В.А.1,2,3
-
Учреждения:
- ФГБУ «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. почетного академика Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России
- ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»
- ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)
- Департамент здравоохранения Москвы
- Выпуск: Том 69, № 4 (2024)
- Страницы: 329-340
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://ogarev-online.ru/0507-4088/article/view/265959
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-242
- EDN: https://elibrary.ru/uxnluj
- ID: 265959
Цитировать
Аннотация
Введение. Вирус SARS-CoV-2, являющийся возбудителем COVID-19, циркулирует в человеческой популяции 4 года. При этом уже к концу 2-го года не осталось иммунологически наивных лиц в результате активной иммунизации населения вакцинами и естественного контакта с вирусом. Понимание закономерностей, способствующих сохранению вируса в человеческой популяции, позволит лучше прогнозировать эпидемический потенциал COVID-19 и своевременно адаптировать средства противодействия продолжающейся пандемии.
Целью данной работы являлось описание выявленных молекулярно-биологических закономерностей, способствующих сохранению вируса в человеческой популяции.
Материалы и методы. В течение более 3 лет с начала пандемии COVID-19 проводили молекулярно-генетический мониторинг SARS-CoV-2, включавший в себя сбор назофарингеальных мазков от инфицированных, оценку вирусной нагрузки и последующее полногеномное секвенирование.
Результаты. Был установлен профиль доминирующих генетических линий на фоне роста заболеваемости и его изменение на протяжении всего периода мониторинга. Дополнительно изучен состав аминокислотных замен в различных белках SARS-CoV-2 и уровень вирусной нагрузки в составе мазков у последовательно сменявшихся вариантов возбудителя COVID-19. Предложена модель сохранения вируса в человеческой популяции, в рамках которой вирус способен: 1) к периодической смене серотипа (падение вируснейтрализующей активности сывороток более чем в 10 раз); 2) к накоплению дополнительных точечных аминокислотных замен в составе RBD в пределах серотипа для частичного ухода от нейтрализующих антител (снижение вируснейтрализующей активности в 2‒3 раза) и повышения сродства к рецептору; 3) к постепенному увеличению количества выделяемого вируса на слизистых оболочках в пределах одного серотипа.
Заключение. Предложенная модель в существенной степени объясняет динамику заболеваемости COVID-19 в Москве. Для более полной характеристики наблюдаемой динамики необходимо получение популяционных данных о динамике напряженности иммунитета и нейтрализующей способности антител в отношении актуального состава генетических линий.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Дарья Дмитриевна Кустова
ФГБУ «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. почетного академика Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России; ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»
Email: kustovadaria@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-8382-275X
младший научный сотрудник лаборатории механизмов популяционной изменчивости патогенных микроорганизмов; аспирант кафедры вирусологии Биологического факультета
Россия, 123098, г. Москва; 119991, г. МоскваАндрей Андреевич Почтовый
ФГБУ «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. почетного академика Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России; ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»; ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)
Автор, ответственный за переписку.
Email: a.pochtovyy@gamaleya.org
ORCID iD: 0000-0003-1107-9351
канд. биол. наук, старший научный сотрудник лаборатории механизмов популяционной изменчивости патогенных микроорганизмов
Россия, 123098, г. Москва; 119991, г. Москва; 119435, г. МоскваОльга Геннадьевна Шпакова
Департамент здравоохранения Москвы
Email: shpakovaog@dcli.ru
заведующая лабораторией МНПЦЛИ
Россия, 127006, г. МоскваИрина Александровна Штинова
Департамент здравоохранения Москвы
Email: shtinovaia@dcli.ru
заведующая лабораторным центром МНПЦЛИ
Россия, 127006, г. МоскваНадежда Анатольевна Кузнецова
ФГБУ «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. почетного академика Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России
Email: nadyakuznetsova0@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-7399-7628
канд. биол. наук, старший научный сотрудник лаборатории механизмов популяционной изменчивости патогенных микроорганизмов
Россия, 123098, г. МоскваДенис Александрович Клейменов
ФГБУ «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. почетного академика Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России
Email: mne10000let@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9422-7238
канд. мед. наук, заведующий лабораторией трансляционной биомедицины
Россия, 123098, г. МоскваАндрей Григорьевич Комаров
Департамент здравоохранения Москвы
Email: komarovag@zdrav.mos.ru
ORCID iD: 0009-0000-8597-7125
канд. мед. наук, директор МНПЦЛИ
Россия, 127006, г. МоскваВладимир Алексеевич Гущин
ФГБУ «Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии им. почетного академика Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России; ФГБОУ ВО «Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова»; ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)
Email: wowaniada@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-9397-3762
д-р биол. наук, заведующий лабораторией механизмов популяционной изменчивости патогенных микроорганизмов и референс-центра по коронавирусной инфекции; старший научный сотрудник кафедры вирусологии Биологического факультета
Россия, 123098, г. Москва; 119991, г. Москва; 119435, г. МоскваСписок литературы
- COVID-19 epidemiological update – 12 April 2024. Available at: https://who.int/publications/m/item/covid-19-epidemiological-update-edition-166
- CDC: SARS-CoV-2 Variant Classifications and Definitions. Available at: https://www.cdc.gov/coronavirus/2019-ncov/variants/variant-classifications.html
- Polack F.P., Thomas S.J., Kitchin N., Absalon J., Gurtman A., Lockhart S., et al. Safety and efficacy of the BNT162b2 mRNA COVID-19 vaccine. N. Engl. J. Med. 2020; 383(27): 2603–15. https://doi.org/10.1056/NEJMoa2034577
- Baden L.R., El Sahly H.M., Essink B., Kotloff K., Frey S., Novak R., et al. Efficacy and safety of the mRNA-1273 SARS-CoV-2 vaccine. N. Engl. J. Med. 2021; 384(5): 403–16. https://doi.org/10.1056/nejmoa2035389
- Logunov D.Y., Dolzhikova I.V., Shcheblyakov D.V., Tukhvatulin A.I., Zubkova O.V., Dzharullaeva A.S., et al. Safety and efficacy of an rAd26 and rAd5 vector-based heterologous prime-boost COVID-19 vaccine: an interim analysis of a randomised controlled phase 3 trial in Russia. Lancet. 2021; 397(10275): 671–81. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(21)00234-8
- Voysey M., Clemens S.A.C., Madhi S.A., Weckx L.Y., Folegatti P.M., Aley P.K., et al. Safety and efficacy of the ChAdOx1 nCoV-19 vaccine (AZD1222) against SARS-CoV-2: an interim analysis of four randomised controlled trials in Brazil, South Africa, and the UK. Lancet. 2021; 397(10269): 99–111. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(20)32661-1
- Lau J.J., Cheng S.M.S., Leung K., Lee C.K., Hachim A., Tsang L.C.H., et al. Real-world COVID-19 vaccine effectiveness against the Omicron BA.2 variant in a SARS-CoV-2 infection-naive population. Nat. Med. 2023; 29(2): 348–57. https://doi.org/10.1038/s41591-023-02219-5
- Kurhade C., Zou J., Xia H., Liu M., Chang H.C., Ren P., et al. Low neutralization of SARS-CoV-2 Omicron BA.2.75.2, BQ.1.1 and XBB.1 by parental mRNA vaccine or a BA.5 bivalent booster. Nat. Med. 2023; 29(2): 344–7. https://doi.org/10.1038/s41591-022-02162-x
- Miteva D., Kitanova M., Batselova H., Lazova S., Chervenkov L., Peshevska-Sekulovska M., et al. The end or a new era of development of SARS-CoV-2 virus: genetic variants responsible for severe COVID-19 and clinical efficacy of the most commonly used vaccines in clinical practice. Vaccines (Basel). 2023; 11(7): 1181. https://doi.org/10.3390/vaccines11071181
- Munro A.P.S., Janani L., Cornelius V., Aley P.K., Babbage G., Baxter D., et al. Safety and immunogenicity of seven COVID-19 vaccines as a third dose (booster) following two doses of ChAdOx1 nCov-19 or BNT162b2 in the UK (COV-BOOST): a blinded, multicentre, randomised, controlled, phase 2 trial. Lancet. 2021; 398(10318): 2258–76. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(21)02717-3
- Chenchula S., Karunakaran P., Sharma S., Chavan M. Current evidence on efficacy of COVID-19 booster dose vaccination against the Omicron variant: A systematic review. J. Med. Virol. 2022; 94(7): 2969–76. https://doi.org/10.1002/jmv.27697
- Chalkias S., Harper C., Vrbicky K., Walsh S.R., Essink B., Brosz A., et al. A bivalent Omicron-containing booster vaccine against COVID-19. N. Engl. J. Med. 2022; 387(14): 1279–91. https://doi.org/10.1056/NEJMoa2208343
- Scheaffer S.M., Lee D., Whitener B., Ying B., Wu K., Liang C.Y., et al. Bivalent SARS-CoV-2 mRNA vaccines increase breadth of neutralization and protect against the BA.5 Omicron variant in mice. Nat. Med. 2023; 29(1): 247–57. https://doi.org/10.1038/s41591-022-02092-8
- Winokur P., Gayed J., Fitz-Patrick D., Thomas S.J., Diya O., Lockhart S., et al. Bivalent Omicron BA.1-adapted BNT162b2 booster in adults older than 55 years. N. Engl. J. Med. 2023; 388(3): 214–27. https://doi.org/10.1056/NEJMoa2213082
- Kirsebom F.C.M., Andrews N., Stowe J., Ramsay M., Lopez Bernal J. Duration of protection of ancestral-strain monovalent vaccines and effectiveness of bivalent BA.1 boosters against COVID-19 hospitalisation in England: a test-negative case-control study. Lancet Infect. Dis. 2023; 23(11): 1235–43. https://doi.org/10.1016/S1473-3099(23)00365-1
- Iketani S., Mohri H., Culbertson B., Hong S.J., Duan Y., Luck M.I., et al. Multiple pathways for SARS-CoV-2 resistance to nirmatrelvir. Nature. 2023; 613(7944): 558–64. https://doi.org/10.1038/s41586-022-05514-2
- Stevens L.J., Pruijssers A.J., Lee H.W., Gordon C.J., Tchesnokov E.P., Gribble J., et al. Mutations in the SARS-CoV-2 RNA-dependent RNA polymerase confer resistance to remdesivir by distinct mechanisms. Sci. Transl. Med. 2022; 14(656): eabo0718. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.abo0718
- Imai M., Ito M., Kiso M., Yamayoshi S., Uraki R., Fukushi S., et al. Efficacy of Antiviral Agents against Omicron Subvariants BQ.1.1 and XBB. N. Engl. J. Med. 2023; 388(1): 89–91. https://doi.org/10.1056/NEJMc2214302
- Cao Y., Wang J., Jian F., Xiao T., Song W., Yisimayi A., et al. Omicron escapes the majority of existing SARS-CoV-2 neutralizing antibodies. Nature. 2022; 602(7898): 657–63. https://doi.org/10.1038/s41586-021-04385-3
- Wang Q., Guo Y., Iketani S., Nair M.S., Li Z., Mohri H., et al. Antibody evasion by SARS-CoV-2 Omicron subvariants BA.2.12.1, BA.4 and BA.5. Nature. 2022; 608(7923): 603–8. https://doi.org/10.1038/s41586-022-05053-w
- Pochtovyi A.A., Kustova D.D., Siniavin A.E., Dolzhikova I.V., Shidlovskaya E.V., Shpakova O.G., et al. In vitro efficacy of antivirals and monoclonal antibodies against SARS-CoV-2 Omicron lineages XBB.1.9.1, XBB.1.9.3, XBB.1.5, XBB.1.16, XBB.2.4, BQ.1.1.45, CH.1.1, and CL.1. Vaccines (Basel). 2023; 11(10): 1533. https://doi.org/10.3390/vaccines11101533
- Puhach O., Meyer B., Eckerle I. SARS-CoV-2 viral load and shedding kinetics. Nat. Rev. Microbiol. 2023; 21(3): 147–61. https://doi.org/10.1038/s41579-022-00822-w
- Gushchin V.A., Pochtovyi A.A., Kustova D.D., Ogarkova D.A., Tarnovetskii I.Y., Belyaeva E.D., et al. Dynamics of SARS-CoV-2 major genetic lineages in moscow in the context of vaccine prophylaxis. Int. J. Mol. Sci. 2022; 23(23): 14670. https://doi.org/10.3390/ijms232314670
- Wickham H., François R., Henry L., Müller K., Vaughan D. dplyr: A Grammar of Data Manipulation. Available at: https://dplyr.tidyverse.org/reference/dplyr-package.html
- Wickham H. ggplot2. New York, NY: Springer; 2009. https://doi.org/10.1007/978-0-387-98141-3
- Patil I. Visualizations with statistical details: The “ggstatsplot” approach. J. Open. Source. Softw. 2021; 6(61): 3167. https://doi.org/10.21105/joss.03167
- Korber B., Fischer W.M., Gnanakaran S., Yoon H., Theiler J., Abfalterer W., et al. Tracking changes in SARS-CoV-2 spike: evidence that D614G increases infectivity of the COVID-19 virus. Cell. 2020; 182(4): 812–27.e19. https://doi.org/10.1016/j.cell.2020.06.043
- Markov P.V., Ghafari M., Beer M., Lythgoe K., Simmonds P., Stilianakis N.I., et al. The evolution of SARS-CoV-2. Nat. Rev. Microbiol. 2023; 21(6): 361–79. https://doi.org/10.1038/s41579-023-00878-2
- Klink G.V., Safina K.R., Nabieva E., Shvyrev N., Garushyants S., Alekseeva E., et al. The rise and spread of the SARS-CoV-2 AY.122 lineage in Russia. Virus Evol. 2022; 8(1): veac017. https://doi.org/10.1093/ve/veac017
- Teyssou E., Delagrèverie H., Visseaux B., Lambert-Niclot S., Brichler S., Ferre V., et al. The Delta SARS-CoV-2 variant has a higher viral load than the Beta and the historical variants in nasopharyngeal samples from newly diagnosed COVID-19 patients. J. Infect. 2021; 83(4): e1–3. https://doi.org/10.1016/j.jinf.2021.08.027
- von Wintersdorff C.J.H., Dingemans J., van Alphen L.B., Wolffs P.F.G., van der Veer B.M.J.W., Hoebe C.J.P.A., et al. Infections with the SARS-CoV-2 Delta variant exhibit fourfold increased viral loads in the upper airways compared to Alpha or non-variants of concern. Sci. Rep. 2022; 12(1): 13922. https://doi.org/10.1038/s41598-022-18279-5
- Guo H., Jiang J., Shen S., Ge X., Fan Q., Zhou B., et al. Additional mutations based on Omicron BA.2.75 mediate its further evasion from broadly neutralizing antibodies. IScience. 2023; 26(4): 106283. https://doi.org/10.1016/j.isci.2023.106283
- Motozono C., Toyoda M., Zahradnik J., Saito A., Nasser H., Tan T.S., et al. SARS-CoV-2 spike L452R variant evades cellular immunity and increases infectivity. Cell Host Microbe. 2021; 29(7): 1124–36.e11. https://doi.org/10.1016/j.chom.2021.06.006
- Singh P., Sharma K., Singh P., Bhargava A., Negi S.S., Sharma P., et al. Genomic characterization unravelling the causative role of SARS-CoV-2 Delta variant of lineage B.1.617.2 in 2nd wave of COVID-19 pandemic in Chhattisgarh, India. Microb. Pathog. 2022; 164: 105404. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2022.105404
- Sarkar P., Banerjee S., Saha S.A., Mitra P., Sarkar S. Genome surveillance of SARS-CoV-2 variants and their role in pathogenesis focusing on second wave of COVID-19 in India. Sci. Rep. 2023; 13(1): 4692. https://doi.org/10.1038/s41598-023-30815-5
- Lin X., Sha Z., Trimpert J., Kunec D., Jiang C., Xiong Y., et al. The NSP4 T492I mutation increases SARS-CoV-2 infectivity by altering non-structural protein cleavage. Cell Host Microbe. 2023; 31(7): 1170–84. https://doi.org/10.1016/j.chom.2023.06.002
- Kim S.M., Kim E.H., Anthony M., Casel B., Kim Y.I., Sun R., et al. SARS-CoV-2 variants show temperature-dependent enhanced polymerase activity in the upper respiratory tract and high transmissibility. bioRxiv. 2022. Preprint. https://doi.org/10.1101/2022.09.27.509689.
- Campbell F., Archer B., Laurenson-Schafer H., Jinnai Y., Konings F., Batra N., et al. Increased transmissibility and global spread of SARS-CoV-2 variants of concern as at June 2021. Euro Surveill. 2021; 26(24): 2100509. https://doi.org/10.2807/1560-7917.ES.2021.26.24.2100509
- Earnest R., Uddin R., Matluk N., Renzette N., Turbett S.E., Siddle K.J., et al. Comparative transmissibility of SARS-CoV-2 variants Delta and Alpha in New England, USA. Cell Rep. Med. 2022; 3(4): 100583. https://doi.org/10.1016/j.xcrm.2022.100583
- Fan Y., Li X., Zhang L., Wan S., Zhang L., Zhou F. SARS-CoV-2 Omicron variant: recent progress and future perspectives. Signal Transduct. Target. Ther. 2022; 7(1): 141. https://doi.org/10.1038/s41392-022-00997-x
- Sukhikh G.T., Priputnevich T.V., Ogarkova D.A., Pochtovyi A.A., Kustova D.D., Zlobin V.I., et al. Sputnik light and Sputnik V vaccination is effective at protecting medical personnel from COVID-19 during the period of Delta variant dominance. Vaccines (Basel). 2022; 10(11): 1804. https://doi.org/10.3390/vaccines10111804
- Planas D., Veyer D., Baidaliuk A., Staropoli I., Guivel-Benhassine F., Rajah M.M., et al. Reduced sensitivity of SARS-CoV-2 variant Delta to antibody neutralization. Nature. 2021; 596(7871): 276–80. https://doi.org/10.1038/s41586-021-03777-9
- Simon-Loriere E., Schwartz O. Towards SARS-CoV-2 serotypes? Nat. Rev. Microbiol. 2022; 20(4): 187–8. https://doi.org/10.1038/s41579-022-00708-x
- Wu H., Xing N., Meng K., Fu B., Xue W., Dong P., et al. Nucleocapsid mutations R203K/G204R increase the infectivity, fitness, and virulence of SARS-CoV-2. Cell Host Microbe. 2021; 29(12): 1788–801. https://doi.org/10.1016/j.chom.2021.11.005
- Bills C.J., Xia H., Chen J.Y.C., Yeung J., Kalveram B.K., Walker D., et al. Mutations in SARS-CoV-2 variant nsp6 enhance type-I interferon antagonism. Emerg. Microbes Infect. 2023; 12(1): 2209208. https://doi.org/10.1080/22221751.2023.2209208
- Liu Y., Liu J., Plante K.S., Plante J.A., Xie X., Zhang X., et al. The N501Y spike substitution enhances SARS-CoV-2 infection and transmission. Nature. 2022; 602(7896): 294–99. https://doi.org/10.1038/s41586-021-04245-0
- Escalera A., Gonzalez-Reiche A.S., Aslam S., Mena I., Laporte M., Pearl R.L., et al. Mutations in SARS-CoV-2 variants of concern link to increased spike cleavage and virus transmission. Cell Host Microbe. 2022; 30(3): 373–87.e7. https://doi.org/10.1016/j.chom.2022.01.006
- Starr T.N., Greaney A.J., Hannon W.W., Loes A.N., Hauser K., Dillen J.R., et al. Shifting mutational constraints in the SARS-CoV-2 receptor-binding domain during viral evolution. Science. 2022; 377(6604): 420–4. https://doi.org/10.1126/science.abo7896
- Hirotsu Y., Maejima M., Shibusawa M., Natori Y., Nagakubo Y., Hosaka K., et al. SARS-CoV-2 Omicron sublineage BA.2 replaces BA.1.1: Genomic surveillance in Japan from September 2021 to March 2022. J. Infect. 2022; 85(2): 174–211. https://doi.org/10.1016/j.jinf.2022.04.040
- Mastrorosa I., Cozzi-Lepri A., Colavita F., Lalle E., Mazzotta V., Cimaglia C., et al. SARS-CoV-2 nasopharyngeal viral load in individuals infected with BA.2, compared to Alpha, Gamma, Delta and BA.1 variants: A single-center comparative analysis. J. Clin. Virol. 2022; 157: 105299. https://doi.org/10.1016/j.jcv.2022.105299
- Tozer K., Sjaarda C.P., Moslinger E., Wong H., Mubareka S., Maguire F., et al. Comparison of SARS-CoV-2 viral loads in the nasal mucosa of patients infected with BA.1, BA.2, or BA.5 Omicron lineages. Open Forum Infect. Dis. 2022; 9(12): ofac564. https://doi.org/10.1093/ofid/ofac564
- Takatsuki Y., Takahashi Y., Nakajima J., Iwasaki Y., Nagano K., Tani-Sassa C., et al. Viral load of SARS-CoV-2 Omicron BA.5 is lower than that of BA.2 despite the higher infectivity of BA.5. Immun. Inflamm. Dis. 2023; 11(2): e783. https://doi.org/10.1002/iid3.783
- Cao Y., Yisimayi A., Jian F., Song W., Xiao T., Wang L., et al. BA.2.12.1, BA.4 and BA.5 escape antibodies elicited by Omicron infection. Nature. 2022; 608(7923): 593–602. https://doi.org/10.1038/s41586-022-04980-y
- Tuekprakhon A., Nutalai R., Dijokaite-Guraliuc A., Zhou D., Ginn H.M., Selvaraj M., et al. Antibody escape of SARS-CoV-2 Omicron BA.4 and BA.5 from vaccine and BA.1 serum. Cell. 2022; 185(14): 2422–33. https://doi.org/10.1016/j.cell.2022.06.005
- Rashid F., Xie Z., Suleman M., Shah A., Khan S., Luo S. Roles and functions of SARS-CoV-2 proteins in host immune evasion. Front. Immunol. 2022; 13: 940756. https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.940756
- Github. BA.5.1.29 sublineage with S:K150E, S:460K, Orf8:F41C. Available at: https://github.com/cov-lineages/pango-designation/issues/1187
- Khare S., Gurry C., Freitas L., Schultz M.B., Bach G., Diallo A., et al. GISAID’s role in pandemic response. China CDC Wkly. 2021; 3(49): 1049–51. https://doi.org/10.46234/ccdcw2021.255
- Haslwanter D., Dieterle M.E., Wec A.Z., O’Brien C.M., Sakharkar M., Florez C., et al. A combination of receptor-binding domain and N-terminal domain neutralizing antibodies limits the generation of SARS-CoV-2 spike neutralization-escape mutants. mBio. 2021; 12(5): e0247321. https://doi.org/10.1128/mBio.02473-21
- Kee J., Thudium S., Renner D.M., Glastad K., Palozola K., Zhang Z., et al. SARS-CoV-2 disrupts host epigenetic regulation via histone mimicry. Nature. 2022; 610(7931): 381–8. https://doi.org/10.1038/s41586-022-05282-z
- Hossain A., Akter S., Rashid A.A., Khair S., Alam A.S.M.R.U. Unique mutations in SARS-CoV-2 Omicron subvariants’ non-spike proteins: Potential impacts on viral pathogenesis and host immune evasion. Microb. Pathog. 2022; 170: 105699. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2022.105699
- Github. BJ.1/BM.1.1.1 (=BA.2.75.3.1.1.1) recombinant with breakpoint in S1 (>=5 sequences, 3x Singapore, 2x US as of 2022-09-12). Available at: https://github.com/cov-lineages/pango-designation/issues/1058
- Tamura T., Ito J., Uriu K., Zahradnik J., Kida I., Anraku Y., et al. Virological characteristics of the SARS-CoV-2 XBB variant derived from recombination of two Omicron subvariants. Nat. Commun. 2023; 14(1): 2800. https://doi.org/10.1038/s41467-023-38435-3
- Ao D., He X., Hong W., Wei X. The rapid rise of SARS-CoV-2 Omicron subvariants with immune evasion properties: XBB.1.5 and BQ.1.1 subvariants. MedComm. (2020). 2023; 4(2): e239. https://doi.org/10.1002/mco2.239
- Parums D.V. Editorial: The XBB.1.5 (‘Kraken’) subvariant of Omicron SARS-CoV-2 and its rapid global spread. Med. Sci. Monitor. 2023; 29: e939580. https://doi.org/10.12659/MSM.939580
Дополнительные файлы
