Частота выявления от больных животных и генетический полиморфизм сибирских изолятов респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота (Pneumoviridae: Orthopneumovirus; BRSV), выявленных на территориях Уральского и Сибирского федеральных округов РФ и Республики Казахстан
- Авторы: Глотов А.Г.1, Южаков А.Г.2, Глотова Т.И.1, Нефедченко А.В.1, Котенева С.В.1, Комина А.К.2, Жукова Е.В.2
-
Учреждения:
- Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока ФГБУН «Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий Российской академии наук»
- ФГБНУ «Федеральный научный центр ‒ Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»
- Выпуск: Том 69, № 1 (2024)
- Страницы: 76-87
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://ogarev-online.ru/0507-4088/article/view/254061
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-216
- EDN: https://elibrary.ru/eborho
- ID: 254061
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Введение. Респираторно-синцитиальный вирус крупного рогатого скота (Pneumoviridae: Orthornavirae, Orthopneumovirus; Bovine respiratory syncytial virus, BRSV, Bovine orthopneumovirus) ‒ один из возбудителей респираторных заболеваний животных. Актуально изучение частоты выявления агента у восприимчивых особей и его генетического разнообразия.
Цель работы. Изучение частоты выявления вируса BRSV от больных животных методом ОТ-ПЦР и генетического полиморфизма изолятов на основе определения полной нуклеотидной последовательности гена гликопротеина G.
Материалы и методы. Для выявления генома BRSV использовали последовательности участка гена гликопротеина F размером 381 п.н., а для филогенетического анализа ‒ полные нуклеотидные последовательности гена G. Филогенетические дендрограммы строили с использованием метода максимального правдоподобия в программе MEGA 7.0.
Результаты. При вспышках массовых респираторных болезней РНК BRSV выявляли у животных всех возрастов в пробах легких, носовых выделений, слизистой оболочки трахеи, легочных лимфатических узлов. В результате сиквенса получили полные нуклеотидные последовательности гена гликопротеина G размером 771 п.н. для 5 изолятов вируса и размером 789 п.н. для двух изолятов, нуклеотидное сходство между которыми составило 87‒100%. По результатам филогенетического анализа исследуемые изоляты отнесены к подгруппам вируса II и III, в каждую из которых вошли по два изолята соответственно. Отдельную кладу образовал изолят K18, выделенный от животных, завезенных из Канады, а также образцы вакцин, содержащих аттенуированный штамм «375».
Заключение. Геном вируса BRSV присутствовал у коров и нетелей в 20 и 14,3% случаев соответственно, у телят в возрасте до 1 мес ‒ в 3,05%, у телят в возрасте от 1 до 6 мес ‒ в 6,7%. Полный анализ нуклеотидной последовательности гена G является полезным инструментом для изучения молекулярной эпизоотологии респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота в конкретном регионе.
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Александр Гаврилович Глотов
Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока ФГБУН «Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий Российской академии наук»
Автор, ответственный за переписку.
Email: glotov_vet@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2006-0196
д-р вет. наук, профессор, главный научный сотрудник – заведующий лабораторией биотехнологии – диагностический центр ИЭВСиДВ ФГБУН СФНЦА РАН
Россия, 630501, Новосибирская обл., пос. КраснообскАнтон Геннадьевич Южаков
ФГБНУ «Федеральный научный центр ‒ Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»
Email: anton_oskol@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0426-9678
канд. биол. наук, заведующий лабораторией ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН
Россия, 109428, г. МоскваТатьяна Ивановна Глотова
Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока ФГБУН «Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий Российской академии наук»
Email: t-glotova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3538-8749
SPIN-код: 7488-5915
д-р биол. наук, профессор, главный научный сотрудник лаборатории биотехнологии-диагностический центр ИЭВСиДВ ФГБУН СФНЦА РАН
Россия, 630501, Новосибирская обл., пос. КраснообскАлексей Васильевич Нефедченко
Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока ФГБУН «Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий Российской академии наук»
Email: homeovet@narod.ru
ORCID iD: 0000-0002-4181-4268
SPIN-код: 1583-5776
д-р вет. наук, доцент, ведущий научный сотрудник лаборатории биотехнологии-диагностический центр ИЭВСиДВ ФГБУН СФНЦА РАН
Россия, 630501, Новосибирская обл., пос. КраснообскСветлана Владимировна Котенева
Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока ФГБУН «Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий Российской академии наук»
Email: koteneva-sv@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2649-7505
SPIN-код: 7545-7206
канд. вет. наук, ведущий научный сотрудник лаборатории биотехнологии – диагностический центр ИЭВСиДВ ФГБУН СФНЦА РАН
Россия, 630501, Новосибирская обл., пос. КраснообскАлина Константиновна Комина
ФГБНУ «Федеральный научный центр ‒ Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»
Email: komina.a.k@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-7173-5501
SPIN-код: 3699-2612
аспирант ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН
Россия, 109428, г. МоскваЕлена Вячеславовна Жукова
ФГБНУ «Федеральный научный центр ‒ Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии им. К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»
Email: evz-sk@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7423-6102
канд. биол. наук, ведущий научный сотрудник лаборатории биохимии и молекулярной биологии ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН
Россия, 109428, г. МоскваСписок литературы
- Cummings D.B., Meyer N.F., Step D.L. Bovine respiratory disease considerations in young dairy calves. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 2022; 38(1): 93–105. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2021.11.007
- Gorden P.J., Plummer P. Control, management, and prevention of bovine respiratory disease in dairy calves and cows. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 2010; 26(2): 243–59. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2010.03.004
- Valarcher J.F., Taylor G. Bovine respiratory syncytial virus infection. Vet. Res. 2007; 38(2): 153–80. https://doi.org/10.1051/vetres:2006053
- Kirolos A., Christides A., Xian S., Reeves R., Nair H., Campbell H. A landscape review of the published research output relating to respiratory syncytial virus (RSV) in North & Central America and Europe between 2011–2015. J. Glob. Health. 2019; 9(1): 010425. https://doi.org/10.7189/jogh.09.010425
- Renault V., Damiaans B., Sarrazin S., Humblet M.F., Lomba M., Ribbens S., et al. Classification of adult cattle infectious diseases: A first step towards prioritization of biosecurity measures. Transbound. Emerg. Dis. 2018; 65(6): 1991–2005. https://doi.org/10.1111/tbed.12982
- Makoschey B., Berge A.C. Review on bovine respiratory syncytial virus and bovine parainfluenza – usual suspects in bovine respiratory disease – a narrative review. BMC Vet. Res. 2021; 17(1): 261. https://doi.org/10.1186/s12917-021-02935-5
- Amarasinghe G.K., Bào Y., Basler C.F., Bavari S., Beer M., Bejerman N., et al. Taxonomy of the order Mononegavirales: update 2017. Arch. Virol. 2017; 162(8): 2493–504. https://doi.org/10.1007/s00705-017-3311-7
- Rima B., Collins P., Easton A., Fouchier R., Kurath G., Lamb R.A., et al. ICTV Report Consortium. ICTV virus taxonomy profile: Pneumoviridae. J. Gen. Virol. 2017; 98(12): 2912–3. https://doi.org/10.1099/jgv.0.000959.
- Larsen L.E. Bovine respiratory syncytial virus (BRSV): a review. Acta Vet. Scand. 2000; 41(1): 1–24. https://doi.org/10.1186/bf03549652
- Fulton R.W., Purdy C.W., Confer A.W., Saliki J.T., Loan R.W., Briggs R.E., et al. Bovine viral diarrhea viral infections in feeder calves with respiratory disease: interactions with Pasteurella spp., parainfluenza-3 virus, and bovine respiratory syncytial virus. Can. J. Vet. Res. 2000; 64(3): 151–9.
- Guzman E., Taylor G. Immunology of bovine respiratory syncytial virus in calves. Mol. Immunol. 2015; 66(1): 48–56. https://doi.org/10.1016/j.molimm.2014.12.004
- Larsen L.E., Tjørnehøj K., Viuff B. Extensive sequence divergence among bovine respiratory syncytial viruses isolated during recurrent outbreaks in closed herds. J. Clin. Microbiol. 2000; 38(11): 4222–7. https://doi.org/10.1128/jcm.38.11.4222-4227.2000
- Sarmiento-Silva R.E., Nakamura-Lopez Y., Vaughan G. Epidemiology, molecular epidemiology and evolution of bovine respiratory syncytial virus. Viruses. 2012; 4(12): 3452–67. https://doi.org/10.3390/v4123452
- Leme R.A., Dall Agnol A.M., Balbo L.C., Pereira F.L., Possatti F., Alfieri A.F., et al. Molecular characterization of Brazilian wild-type strains of bovine respiratory syncytial virus reveals genetic diversity and a putative new subgroup of the virus. Vet Q. 2020; 40(1): 83–96. https://doi.org/10.1080/01652176.2020.1733704
- Sacco R.E., McGill J.L., Pillatzki A.E., Palmer M.V., Ackermann M.R. Respiratory syncytial virus infection in cattle. Vet. Pathol. 2014; 51(2): 427–36. https://doi.org/10.1177/0300985813501341
- Valentova V. The antigenic and genetic variability of bovine respiratory syncytial virus with emphasis on the G protein. Veterinární medicína. 2012; 48(9): 254–66. https://doi.org/10.17221/5778-VETMED18
- Doreleijers J.F., Langedijk J.P.M., Hård K., Boelens R., Rull- mann J.A.C., Schaaper W.M., et al. Solution structure of the immunodominant region of protein G of bovine respiratory syncytial virus. Biochemistry. 1996; 35(47): 14684–8. https://doi.org/10.1021/bi9621627
- Valarcher J.F., Schelcher F., Bourhy H. Evolution of bovine respiratory syncytial virus. J. Virol. 2000; 74(22): 10714–28. https://doi.org/10.1128/jvi.74.22.10714-10728.2000
- Furze J.M., Roberts S.R., Wertz G.W., Taylor G. Antigenically distinct G glycoproteins of BRSV strains share a high degree of genetic homogeneity. Virology. 1997; 231(1): 48–58. https://doi.org/10.1006/viro.1997.8490
- Krešić N., Bedeković T., Brnić D., Šimić I., Lojkić I., Turk N. Genetic analysis of bovine respiratory syncytial virus in Croatia. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 2018; 58: 52–7. https://doi.org/10.1016/j.cimid.2018.09.004
- Giammarioli M., Mangili P., Nanni A., Pierini I., Petrini S., Pirani S., et al. Highly pathogenic Bovine Respiratory Syncytial virus variant in a dairy herd in Italy. Vet. Med. Sci. 2020; 6(4): 740–5. https://doi.org/10.1002/vms3.312
- Klem T.B., Rimstad E., Stokstad M. Occurrence and phylogenetic analysis of bovine respiratory syncytial virus in outbreaks of respiratory disease in Norway. BMC Vet. Res. 2014; 10(1): 15. https://doi.org/10.1186/1746-6148-10-15
- Bertolotti L., Giammarioli M., Rosati S. Genetic characterization of bovine respiratory syncytial virus strains isolated in Italy: evidence for the circulation of new divergent clades. J. Vet. Diagn. Invest. 2018; 30(2): 300–4. https://doi.org/10.1177/1040638717746202
- Bidokti M.R., Tråvén M., Ohlson A., Zarnegar B., Baule C., Belák S., et al. Phylogenetic analysis of bovine respiratory syncytial viruses from recent oubreaks in feedlot and dairy cattle herds. Arch. Virol. 2012; 157(4): 601–7. https://doi.org/10.1007/s00705-011-1209-3
- Jia S., Yao X., Yang Y., Niu C., Zhao Y., Zhang X., et al. Isolation, identification, and phylogenetic analysis of subgroup III strain of bovine respiratory syncytial virus contributed to outbreak of acute respiratory disease among cattle in Northeast China. Virulence. 2021; 12(1): 404–14. https://doi.org/10.1080/21505594.2021.1872178
- Chang Y., Yue H., Tang C. Prevalence and molecular characteristics of bovine respiratory syncytial virus in beef cattle in China. Animals (Basel). 2022; 12(24): 3511. https://doi.org/10.3390/ani12243511
- Karayel Hacioğlu İ., Coşkun N., Duran Yelken S., Sevinç S., Alkan F. Phylogenetic analysis of bovine respiratory syncytial viruses from calves with respiratory disorders. Kafkas Univ. Vet. Fak. Derg. 2019; 25(2): 251–6. https://doi.org/10.9775/kvfd.2018.20819
- Ellis J., Marx J., Perumbakkam S., West K., Gow S., Lacoste S., et al. Genealogy of an in-vivo passaged isolate of western Canadian bovine respiratory syncytial virus. Can. J. Vet. Res. 2022; 86(3): 218–28.
- Nettleton P.F., Gilray J.A., Caldow G., Gidlow J.R., Durkovic B., Vilcek S. Recent isolates of bovine respiratory syncytial virus from Britain are more closely related to isolates from the USA than to earlier British and current mainland European isolates. J. Vet. Med. B Infect. Dis. Vet. Public Health. 2003; 50(4): 196–9. https://doi.org/10.1046/j.1439-0450.2003.00647.x
- Krešić N., Bedeković T., Brnić D., Šimić I., Lojkić I., Turk N. Genetic analysis of bovine respiratory syncytial virus in Croatia. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 2018; 58: 52–7. https://doi.org/10.1016/j.cimid.2018.09.004
- Almeida R.S., Domingues H.G., Spilki F.R., Larsen L.E., Hägglund S., Belák S., et al. Circulation of bovine respiratory syncytial virus in Brazil. Vet. Rec. 2006; 158(18): 632–4. https://doi.org/10.1136/vr.158.18.632
- Kumagai A., Kawauchi K., Andoh K., Hatama S. Sequence and unique phylogeny of G genes of bovine respiratory syncytial viruses circulating in Japan. J. Vet. Diagn. Investig. 2021; 33(1): 162–6. https://doi.org/10.1177/1040638720975364
- Глотов А.Г., Глотова Т.И., Котенева С.В., Нефедченко А.В. Синтетические олигонуклеотидные праймеры и способ выявления РНК вируса респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота с помощью синтетических олигонуклеотидных праймеров в полимеразной цепной реакции (ПЦР). Патент RF 2405039 C1; 2010. https://elibrary.ru/ttzyly
- Prozzi D., Walravens K., Langedijk J.P., Daus F., Kramps J.A., Letesson J.J. Antigenic and molecular analyses of the variability of bovine respiratory syncytial virus G glycoprotein. J. Gen. Virol. 1997; 78(Pt. 2): 359–66. https://doi.org/10.1099/0022-1317-78-2-359
- Langedijk J.P., Meloen R.H., Taylor G., Furze J.M., van Oirschot J.T. Antigenic structure of the central conserved region of protein G of bovine respiratory syncytial virus. J. Virol. 1997; 71(5): 4055–61. https://doi.org/10.1128/jvi.71.5.4055-4061.1997
- Глотов А.Г., Глотова Т.И., Котенева С.В., Нефедченко А.В., Войтова К.В. Эпизоотическая ситуация по респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота в хозяйствах по производству молока. Ветеринария. 2010; (7): 21–5. https://elibrary.ru/msrezd
- Нефедченко А.В., Глотов А.Г., Котенева С.В., Глотова Т.И. Разработка и испытание полимеразной цепной реакции в режиме реального времени для идентификации и количественного определения респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2020; 38(3): 145–50. https://doi.org/10.17116/molgen202038031145 https://elibrary.ru/obaant
- Нефедченко А.В., Глотов А.Г., Котенева С.В., Глотова Т.И. Выявление и количественная оценка вирусных и бактериальных возбудителей респираторных болезней крупного рогатого скота при помощи ПЦР в реальном времени. Сельскохозяйственная биология. 2021; 56(4): 695–706. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2021.4.695rus https://elibrary.ru/spttqp
Дополнительные файлы
