Персистентная форма вирусной диареи крупного рогатого скота

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

В обзоре приведен анализ данных литературы по проблеме персистентной формы вирусной диареи – болезни слизистых оболочек (ВД-БС) крупного рогатого скота, особенностях возбудителя, организма-хозяина и иммунной системы, приводящих к персистенции вируса. ВД-БС крупного рогатого скота – заболевание, широко распространенное во всем мире, которое наносит значительный экономический ущерб молочному и мясному скотоводству и характеризуется многообразием клинических признаков и симптомов, в том числе поражением органов пищеварения и дыхания, абортами, мертворождениями и рождением нежизнеспособных телят, а также нарушением функции воспроизводства.

Об авторах

Алексей Владимирович Мищенко

ФГБНУ «Федеральный научный центр – Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»

Email: studebaker@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-9752-6337

д-р ветеринар. наук, главный научный сотрудник ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН, Москва, Россия

Россия, 109428, г. Москва

Владимир Александрович Мищенко

ФГБНУ «Федеральный научный центр – Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»; ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»

Email: mishenko@arriah.ru
ORCID iD: 0000-0003-3751-2168

профессор, д-р ветеринар. наук, главный научный сотрудник ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН, Москва, Россия; главный научный сотрудник ФГБУ «ВНИИЗЖ», Владимир, Россия

Россия, 109428, г. Москва; 111622, г. Владимир

Михаил Иванович Гулюкин

ФГБНУ «Федеральный научный центр – Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»

Email: admin@viev.ru
ORCID iD: 0000-0002-7489-6175

академик РАН, профессор, д-р ветеринар. наук, руководитель научного направления ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН, Москва, Россия

Россия, 109428, г. Москва

Андрей Серожович Оганесян

ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»

Email: oganesyan@arriah.ru
ORCID iD: 0000-0002-0061-5799

канд. ветеринар. наук, заведующий сектором анализа риска ФГБУ «ВНИИЗЖ», Владимир, Россия

Россия, 111622, г. Владимир

Светлана Валерьевна Алексеенкова

ФГБНУ «Федеральный научный центр – Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»

Email: admin@viev.ru
ORCID iD: 0000-0001-9580-6047

канд. биол. наук, ведущий научный сотрудник ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН, Москва, Россия

Россия, 109428, г. Москва

Алексей Дмитриевич Забережный

ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности»

Автор, ответственный за переписку.
Email: zaberezhny@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7635-2596

член-корр. РАН, д-р биол. наук, директор ФГБНУ ВНИТИБП, Московская обл., п. Биокомбината, Россия

Россия, 141142, Московская обл., п. Биокомбината

Алексей Михайлович Гулюкин

ФГБНУ «Федеральный научный центр – Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»

Email: admin@viev.ru
ORCID iD: 0000-0003-2160-4770

член-корр. РАН, д-р ветеринар. наук, директор ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН, Москва, Россия

Россия, 109428, г. Москва

Список литературы

  1. Алексеенкова С.В., Юров К.П., Гальнбек Т.В., Калита И.А., Юров К.П. Проверка клеточных культур на контаминацию вирусом диареи КРС – необходимое условие производства биологических препаратов. Российский сельскохозяйственный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2013; (1): 15–8. https://elibrary.ru/pyednf
  2. Алипер Т.И., Верховская А.Е., Верховский О.А. Вирусная диарея крупного рогатого скота. В кн.: Львов Д.К., ред. Руководство по вирусологии: Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. М.: Медицинское информационное агентство; 2013: 890–6.
  3. Блохин А.А., Молев А.И. Клинико-морфологическая манифестация вирусной диареи крупного рогатого скота у новорожденных телят. Аграрная наука Евро-Северо-Востока. 2013; (6) 42–6. https://elibrary.ru/rknyyv
  4. Нефедченко А.В., Котенева С.В., Глотова Т.И., Глотов А.Г. Выявление пестивирусов крупного рогатого скота при помощи мультиплексной полимеразной цепной реакции в режиме реального времени. Вопросы вирусологии. 2020; 65(2): 95–102. https://doi.org/10.36233/0507-4088-2020-65-2-95-102 https://elibrary.ru/rddyvy
  5. Глотов А.Г., Глотова Т.И., Нефедченко А.В., Котенева С.В. Генетический полиморфизм и распространение пестивирусов (Flaviviridae: Pestivirus) крупного рогатого скота в мире и в Российской Федерации. Вопросы вирусологии. 2022; 67(1): 18–26. https://doi.org/10.36233/0507-4088-96 https://elibrary.ru/volumf
  6. Глотов А.Г., Глотова Т.И. Вирусная диарея: значение в патологии воспроизводства крупного рогатого скота. Ветеринария. 2015; (4): 3–8. https://elibrary.ru/tolyrt
  7. Глотов А.Г., Глотова Т.И. Стратегия и принципы контроля вирусной диареи крупного рогатого скота. Ветеринария. 2018; (8): 3–12. https://doi.org/10.30896/004224846.2018.21.8.03212 https://elibrary.ru/xvlrzb
  8. Глотов А.Г., Глотова Т.И., Зайцев Ю.Н., Пьянков О.В., Сергеев А.Н., Гулюкин М.И. Патогенность нецитопатогенных изолятов вируса диареи-болезни слизистых оболочек для серонегативных телят. Вопросы вирусологии. 2014; 59(4): 46–9. https://elibrary.ru/sxuxkf
  9. Глотов А.Г., Глотова Т.И., Семенова О.В., Котенева С.В., Сергеев А.А., Сергеев А.Н. Патогенность изолятов различных биотипов вируса вирусной диареи-болезни слизистых оболочек для серонегативных телят. Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2015; (1): 19–22. https://elibrary.ru/tilnnf
  10. Глотов А.Г., Глотова Т.И., Южаков А.Г., Иванов Е.В. Вирусная диарея-болезнь слизистых оболочек крупного рогатого скота. В кн.: Алипер Т.И., ред. Актуальные инфекционные болезни крупного рогатого скота: Руководство. М.: Сельскохозяйственные технологии; 2021: 291–324. https://doi.org/10.31016/viev-2020-6 https://elibrary.ru/qxnytt
  11. Глотов А.Г., Глотова Т.И., Южаков А.Г., Забережный А.Д., Алипер Т.И. Выделение на территории Российской Федерации нецитопатогенного агента 2-го генотипа вируса диареи-болезни слизистых оболочек КРС. Вопросы вирусологии. 2009; 54(5): 43–7. https://elibrary.ru/lajykf
  12. Глотов А.Г., Никонова А.А., Котенева С.В., Глотов А.Г. Способ борьбы с персистентной инфекцией при вирусной диарее. Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2019; 49(2): 49–56. https://doi.org/10.26898/0370-8799-2019-2-6 https://elibrary.ru/zhfukt
  13. Гулюкин М.И., Юров К.П., Глотов А.Г., Донченко Н.А. Стратегия борьбы с вирусной диареей-болезнью слизистых КРС в животноводческих хозяйствах Российской Федерации. Вопросы вирусологии. 2013; 58(6): 13–8. https://elibrary.ru/rpbqup
  14. Дубаневич О.В. Вирусная диарея-болезнь слизистых КРС (обзор). Эпизоотология, иммунология, фармакология и санитария. 2012; (3): 13–21.
  15. Дубаневич О.В., Тяпша Ю. Выявление и генетическое типирование (по региону 5-UTR) вирусов диареи КРС, циркулирующих на территории Республики Беларусь. Эпизоотология, иммунология, фармакология и санитария. 2021; (2): 7–11. https://doi.org/10.47612/2224-168X-2021-2-7-11 https://elibrary.ru/uiedov
  16. Мищенко В.А., Черных О.Ю., Мищенко А.В., Якубенко Е.В., Думова В.В. Превалентность антител к вирусу вирусной диареи крупного рогатого скота в сыворотке крови жвачных животных. Ветеринария Кубани. 2012; (5): 19–20. https://elibrary.ru/pfxhlx
  17. Котенева С.В., Нефедченко А.В., Глотова Т.И., Глотов А.Г. Генетический полиморфизм возбудителя вирусной диареи (болезни слизистых оболочек) КРС на молочных комплексах Сибири. Сельскохозяйственная биология. 2018; 53(6): 1238–46. https://doi.org/10.15389/agrobiology.2018.6.1238rus https://elibrary.ru/yyfqkl
  18. Михайлова В.В., Лобова Т.П., Шишкина М.С., Скворцова А.Н. Анализ результатов эпизоотологического мониторинга вирусной диареи болезни слизистых крупного рогатого скота в Российской Федерации по данным отчетности 4-вет за 2020 год. Аграрная наука. 2021; 354(11-12): 36–9. https://doi.org/10.32634/0869-8155-2021-354-11-12-36-39
  19. Нефедченко А.В., Глотов А.Г., Глотова Т.И., Кунгурцева О.В. Выявление животных, персистентно инфицированных вирусом ВД-БС КРС, методом ПЦР. Ветеринария. 2011; (12): 21–5. https://elibrary.ru/oouolv
  20. Нефедченко А.В., Котенева С.В., Глотова Т.И., Глотов А.Г. Мониторинг инфицированности спермы быков-производителей вирусами на головном предприятии. Ветеринария. 2022; (9): 18–23. https://doi.org/10.30896/0042-4846.2022.25.9.18-23 https://elibrary.ru/njavrn
  21. Черных О.Ю., Мищенко А.В., Мищенко В.А., Кривонос Р.А., Дробин Ю.Д., Лысенко А.А. Проблема контаминаций противовирусных вакцин в мире и в России. Ветеринария Кубани. 2019; (3): 3–6. https://elibrary.ru/zjdbfu
  22. Черных О.Ю., Шевченко А.А., Джаилиди Г.А., Мищенко В.А., Мищенко А.В., Шевкопляс В.Н. Проблема вирусной диареи крупного рогатого скота. Труды Кубанского государственного аграрного университета. 2016; 58(1): 195–8. https://elibrary.ru/whwkcb
  23. Шилова Е.Н. Ликвидация вирусной диареи крупного рогатого скота в молочных стадах как мера повышения репродуктивного потенциала. Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. 2019; (4): 45–7. https://doi.org/10.17238/issn2072-6023.2019.4.45 https://elibrary.ru/bonxoa
  24. Южаков А.Г., Устинова Г.И., Глотов А.Г., Глотова Т.И., Нефедченко А.В., Кунгурцева О.В. и др. Филогенетический анализ нецитопатогенных изолятов вируса вирусной диареи крупного рогатого скота. Ветеринария. 2009; (6): 29–32. https://elibrary.ru/kwzdpt
  25. Юров Г.К., Алексеенкова С.В., Диас-Хименес К.А., Неутроев М.П., Юров К.П. Антигенные свойства нецитопатогенных штаммов вируса диареи-болезни слизистых крупного рогатого скота. Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2013; (2): 24–6. https://elibrary.ru/rxglhp
  26. Agapov E.V., Murray C.L., Frolov I., Qu L., Myers T.M., Rice C.M. Uncleaved NS2-3 is required for production of infectious bovine viral diarrhea virus. J. Virol. 2004; 78(5): 2414–25. https://doi.org/10.1128/jvi.78.5.2414-2425.2004
  27. Bachofen C., Braun U., Hilbe M., Ehrensperger F., Stalder H., Peterhans E. Clinical appearance and pathology of cattle persistently infected with bovine viral diarrhoea virus of different genetic subgroups. Vet. Microbiol. 2010; 141(3-4): 258–67. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2009.09.022.
  28. Bachofen C., Vogt H-R., Stalder H., Mathys T., Zanoni R., Hilbe M., et al. Persistent infections after natural transmission of bovine viral diarrhea virus from cattle to goats and among goats. Vet. Res. 2013; 44(1): 32. https://doi.org/10.1186/1297-9716-44-32
  29. Baigent S.J., Goodbourn S., McCauley J.W. Differential activation of interferon regulatory factors-3 and -7 by non-cytopathogenic and cytopathogenic bovine viral diarrhoea virus. Vet. Immunol. Immunopathol. 2004; 100(3-4): 135–44. https://doi.org/10.1016/j.vetimm.2004.04.003
  30. Baigent S.J., Zhang G., Fray M.D., Flick-Smith H., Goodbourn S., McCauley J.W. Inhibition of beta interferon transcription by noncytopathogenic bovine viral diarrhea virus is through an interferon regulatory factor 3-dependent mechanism. J. Virol. 2002; 76(18): 8979–88. https://doi.org/10.1128/jvi.76.18.8979-8988.2002
  31. Baker J.C. The clinical manifestations of bovine viral diarrhoea infection. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 1995; 11(3): 425–46. https://doi.org/10.1016/s0749-0720(15)30460-6
  32. Barkema H.W., Bartek C.J., Van Wuyckhuise L., Hesselink J.W., Holzhauer M., Weber M.F., et al. Outbreak of bovine virus diarrhea on Dutch dairy farms induced by bovine herpesvirus 1 marker vaccine contaminated with bovine virus diarrhea virus type 2. Tijdschr. Diergeneeskd. 2001; 126(6): 158–65. (in Dutch)
  33. Becher P., Tautz N. RNA recombination in pestiviruses: Cellular RNA sequences in viral genomes highlight the role of host factors for viral persistence and lethal disease. RNA Biol. 2011; 8(2): 216–24. https://doi.org/10.4161/rna.8.2.14514
  34. Becher P., Orlich M., Thiel H.J. RNA recombination between persisting pestivirus and a vaccine strain: generation of cytopathogenic virus and induction of lethal disease. J. Virol. 2001; 75(14): 6256–64. https://doi.org/10.1128/jvi.75.14.6256-6264.2001
  35. Blanchard P.C., Ridpath J.F., Walker J.B., Hietala S.K. An outbreak of late-term abortions, premature births, and congenital deformities associated with a bovine viral diarrhea virus 1 subtype b that induces thrombocytopenia. J. Vet. Diagn. Invest. 2010; 22(1): 128–31. https://doi.org/10.1177/104063871002200127
  36. Booth R.E., Brownlie J. Establishing a pilot bovine viral diarrhoea virus eradication scheme in Somerset. Vet. Rec. 2012; 170(3): 73. https://doi.org/10.1136/vr.100191
  37. Chapter 3.4.7. Bovine viral diarrhea. In: Manual of Standards for Diagnostic and Vaccines for Terrestrial Animals. WOAH Terrestrial Manual; 2018: 1075–96.
  38. Braun U., Thür B., Weiss M., Giger T. Bovine virus diarrhea/mucosal disease in cattle--clinical findings in 103 calves and cattle. Schweiz. Arch. Tierheilkd. 1996; 138(10): 465–75. (in German)
  39. Brock K.V., Cortese V.S. Experimental fetal challenge using type II bovine viral diarrhea virus in cattle vaccinated with modified-live virus vaccine. Vet. Ther. 2001; 2(4): 354–60.
  40. Brock K.V. The many faces of bovine viral diarrhoea virus. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 2004; 20(1): 1–3. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2003.12.002
  41. Brown T.T., DeLahunta A., Bistner S.I., Scott F.W., McEntee K. Pathogenetic studies of infection of the bovine fetus with bovine viral diarrhea virus. I. Cerebellar atrophy. Vet. Pathol. 1974; 11(6): 486–505. https://doi.org/10.1177/030098587401100604
  42. Brownlie J., Clarke M.C., Howard C.J. Experimental infection of cattle in early pregnancy with a cytopathic strain of bovine virus diarrhea virus. Res. Vet. Sci. 1989; 46(3): 307–11.
  43. Brownlie J., Clarke M.C., Howard C.J. Experimental production of fatal mucosal disease in cattle. Vet. Rec. 1984; 114(22): 535–6. https://doi.org/10.1136/vr.114.22.535
  44. Brownlie J., Clarke M.C., Howard C.J., Pocock D.H. Pathogenesis and epidemiology of bovine virus diarrhoea infection of cattle. Ann. Rech. Vet. 1987; 18(2): 157–66.
  45. Charleston B., Fray M.D., Baigent S., Carr B.V., Morrison W.I. Establishment of persistent infection with non-cytopathic bovine viral diarrhea virus in cattle is associated with a failure to induce type I interferon. J. Gen. Virol. 2001; 82(Pt. 8): 1893–7. https://doi.org/10.1099/0022-1317-82-8-1893
  46. Chase C.C.L. The impact of BVDV infection on adaptive immunity. Biologicals. 2013; 41(1): 52–60. https://doi.org/10.1016/j.biologicals.2012.09.009
  47. Chen Z., Rijnbrand R., Jangra R.K., Devaraj S.G., Qu L., Ma Y., et al. Ubiquitination and proteasomal degradation of interferon regulatory factor-3 induced by Npro from a cytopathic bovine viral diarrhea virus. Virology. 2007; 366(2): 277–92. https://doi.org/10.1016/j.virol.2007.04.023
  48. Chi S., Chen S., Jia W., He Y., Ren L., Wang X. Non-structural proteins of bovine viral diarrhea virus. Virus Genes. 2022; 58(6): 491–500. https://doi.org/10.1007/s11262-022-01914-8
  49. Collins M.E., Heaney J., Thomas C.J., Brownlie J. Infectivity of pestivirus following persistence of acute infection. Vet. Microbiol. 2009; 138(3-4): 289–96. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2009.04.022
  50. Constable P.D., Hull B.L., Wicks J.R., Myer W. Femoral and tibial fractures in a newborn calf after transplacental infection with bovine viral diarrhea virus. Vet. Rec. 1993; 132(15): 383–5. https://doi.org/10.1136/vr.132.15.383
  51. Cortese V.S., Grooms D.L., Ellis J., Bolin S.R., Ridpath J.F., Brock K.V. Protection of pregnant cattle and their fetuses against infection with bovine viral diarrhea virus type 1 by use of a modified-live virus vaccine. Am. J. Vet. Res. 1998, 59(11): 1409–13.
  52. Deregt D., Loewen K.G. Bovine viral diarrhea virus: biotypes and disease. Can. Vet. J. 1995; 36(6): 371–8.
  53. Ficken M.D., Ellsworth M.A., Tucker C.M., Cortese V.S. Effects of modified-live bovine viral diarrhea virus vaccines containing either type 1 or types 1 and 2 BVDV on heifers and their offspring after challenge with noncytopathic type 2 BVDV during gestation. J. Am. Vet. Med. Assoc. 2006; 228(10): 1559–64. https://doi.org/10.2460/javma.228.10.1559
  54. Fulton R.W., Cook B.J., Payton M.E., Burge L.J., Step D.L. Immune response to bovine viral diarrhea virus (BVDV) vaccines detecting antibodies to BVDV subtypes 1a, 1b, 2a, and 2c. Vaccine. 2020; 38(24): 4032–7. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2020.03.058
  55. Fulton R.W., Whitley E.M., Johnson B.J., Ridpath J.F., Kapil S., Burge L.J., et al. Prevalence of bovine viral diarrhea virus (BVDV) in persistently infected cattle and BVDV subtypes in affected cattle in beef herds in south central United States. Can. J. Vet. Res. 2009; 73(4): 283–91.
  56. Fulton R.W., Saliki J.T., Confer A.W., Burge L.J., d’Offay J.M., Helman R.G., et al. Bovine viral diarrhea virus cytopathic and noncytopathic biotypes and type 1 and 2 genotypes in diagnostic laboratory accessions: clinical and necropsy samples from. J. Vet. Diagn. Invest. 2000; 12(1): 33–8. https://doi.org/10.1177/104063870001200106
  57. García-Sastre A. Ten strategies of interferon evasion by viruses. Cell Host Microbe. 2017; 22(2): 176–84. https://doi.org/10.1016/j.chom.2017.07.012
  58. Глотов А.Г., Котенева С.В., Глотова Т.И., Трегубчак Т.В., Максютов Р.А. Молекулярная эпизоотология вирусной диареи крупного рогатого скота в Сибири. Ветеринария. 2018; (12): 14–20. https://elibrary.ru/zvmhpj
  59. Grooms D.L. Reproductive consequences of infection with bovine viral diarrhea virus. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 2004; 20(1): 5–19. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2003.11.006
  60. Hanon J., van der Stede Y., Antonissen A., Mullender C., Tignon M., van den Berg T., et al. Distinction between persistent and transient infection in a bovine viral diarrhea control programme: appropriate interpretation of real-time RT-PCR and antigen-ELISA test result. Transbound. Emerg. Dis. 2014; 61(2): 156–62. https://doi.org/10.1111/tbed.12011
  61. Hansen T.R., Smirnova N.P., Webb B.T., Bielefeldt-Ohmann H., Sacco R.E., Van Campen H. Innate and adaptive immune responses to in utero infection with bovine viral diarrhea virus. Anim. Health Res. Rev. 2015; 16(1): 15–26. https://doi.org/10.1017/s1466252315000122
  62. Houe H. Epidemiological features and economic importance of bovine virus diarrhea virus (BVDV) infection. Vet. Microbiol. 1999; 64(2-3): 89–107. https://doi.org/10.1016/s0378-1135(98)00262-4
  63. Houe H. Survivorship of animals persistently infected with bovine virus diarrhea virus (BVDV). Prev. Vet. Med. 1993; 15(4): 275–83. https://doi.org/10.1016/0167-5877(93)90099-F
  64. Houe H., Lindberg A., Moennig V. Test strategies in bovine viral diarrhea virus control eradication campaigns in Europe. J. Vet. Diagn. Invest. 2006; 18(5): 427–36. https://doi.org/10.1177/104063870601800501
  65. Houe Н. Economic impact of BVDV infection in dairies. Biologicals. 2003; 31(2): 137–43. https://doi.org/10.1016/s1045-1056(03)00030-7
  66. Howard C.J. Immunological responses to bovine virus diarrhea virus infections. Rev. Sci. Tech. 1990; 9(1): 95–103. https://doi.org/10.20506/rst.9.1.488
  67. Knapek K.J., Georges H.M., Van Campen H., Bishop J.V., Bielefeldt-Ohmann H., Smirnova N.P., et al. Fetal lymphoid organ immune responses to transient and persistent infection with bovine viral diarrhea virus. Viruses. 2020; 12(8): 816. https://doi.org/10.3390/v12080816
  68. Kümmerer B.M., Stoll D., Meyers G. Bovine viral diarrhea virus strain Oregon: a novel mechanism for processing of NS2-3 based on point mutations. J. Virol. 1998; 72(5): 4127–38. https://doi.org/10.1128/jvi.72.5.4127-4138.1998
  69. Lanyon S.R., Hill F.I., Reichel M.P., Brownlie J. Bovine viral diarrhea: pathogenesis and diagnosis. Vet. J. 2014; 199(2): 201–9. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2013.07.024
  70. Larsson B., Tråvén M., Hultén C., Hård af Segerstad C., Belák K., Alenius S. Serum concentrations of thyroid hormones in calves with a transient or persistent infection with bovine viral diarrhoea virus. Res. Vet. Sci. 1995; 58(2): 186–9. https://doi.org/10.1016/0034-5288(95)90075-6
  71. Lee S.R., Nanduri B., Pharr G.T., Stokes J.V., Pinchuk L.M. Bovine viral diarrhoea virus infection affects the expression of proteins related to professional antigen presentation in bovine monocytes. Biochim. Biophys. Acta. 2009; 1794(1): 14–22. https://doi.org/10.1016/j.bbapap.2008.09.005
  72. Liebler E.M., Küsters C., Pohlenz J.F. Experimental mucosal disease in cattle: changes of lymphocyte subpopulations in Peyer’s patches and in lymphoid nodules of large intestine. Vet. Immunol. Immunopathol. 1995; 48(3-4): 233–48. https://doi.org/10.1016/0165-2427(95)05440-h
  73. Liebler-Tenorio E.M., Greiser-Wilke I., Pohlenz J.F. Organ and tissue distribution of the antigen of the cytopathogenic bovine virus diarrhea virus in the early and advanced phase of experimental mucosal disease. Arch. Virol. 1997; 142(8): 1613–34. https://doi.org/10.1007/s007050050184
  74. Liebler-Tenorio E.M., Lanwehr A., Greiser-Wilke I., Loehr B.I., Pohlenz J. Comparative investigation of tissue alterations and distribution of BVD-viral antigen in cattle with early onset versus late onset mucosal disease. Vet. Microbiol. 2000; 77(1-2): 163–74. https://doi.org/10.1016/s0378-1135(00)00273-x
  75. Liebler-Tenorio E.M., Ridpath J.F., Neill J.D. Distribution of viral antigen and tissue lesions in persistent and acute infection with the homologous strain of noncytopathic bovine viral diarrhoea virus. J. Vet. Diagn. Invest. 2004; 16(5): 388–96. https://doi.org/10.1177/104063870401600504
  76. Magouras I., Mätzener P., Rümenapf T., Peterhans E., Schweizer M. RNase-dependent inhibition of extracellular, but not intracellular, dsRNA-induced interferon synthesis by Erns of pestiviruses. J. Gen. Virol. 2008; 89(Pt. 10): 2501–6. https://doi.org/10.1099/vir.0.2008/003749-0
  77. Makoschey B., Janssen M.G., Vrijenhoek M.P., Korsten J.H., Marel P. An inactivated bovine virus diarrhea virus (BVDV) type 1 vaccine affords clinical protection against BVDV type 2. Vaccine. 2001; 19(23-24): 3261–8. https://doi.org/10.1016/s0264-410x(01)00003-2
  78. Marshall D.J., Moxley R.A., Kelling C.L. Distribution of virus and viral-antigen in specific pathogen-free calves following inoculation with noncytopathic bovine viral diarrhea virus. Vet. Pathol. 1996; 33(3): 311–8. https://doi.org/10.1177/030098589603300308
  79. McGowan M.R., Kirkland P.D., Richards S.G., Littlejohns I. Increased reproductive losses in cattle infected with bovine pestivirus around the time of insemination. Vet. Rec. 1993; 133(2): 39–43. https://doi.org/10.1136/vr.133.2.39
  80. Meyers G., Thiel H.J. Molecular characterization of pestiviruses. Adv. Virus Res. 1996; 47: 53–118. https://doi.org/10.1016/s0065-3527(08)60734-4
  81. Moennig V., Becher P. Control of bovine viral diarrhea. Pathogens. 2018; 7(1): 29. https://doi.org/10.3390/pathogens7010029
  82. Müller-Doblies D., Arquint A., Schaller P., Heegaard P.M., Hilbe M., Albini S., et al. Innate immune responses of calves during transient infection with a noncytopathic strain of bovine viral diarrhea virus. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2004; 11(2): 302–12. https://doi.org/10.1128/cdli.11.2.302-312.2004
  83. Nettleton P.F., Entrican G. Ruminant pestiviruses. Br. Vet. J. 1995; 151(6): 615–42. https://doi.org/10.1016/s0007-1935(95)80145-6
  84. Nilson S.M., Workman A.M., Sjeklocha D., Brodersen B., Grotelueschen D.M., Petersen J.L. Upregulation of the type I interferon pathway in feedlot cattle persistently infected with bovine viral diarrhea virus. Virus Res. 2020; 278: 197862. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2020.197862
  85. Palomares R.A., Marley S.M., Givens M.D., Gallardo R.A., Brock K.V. Bovine viral virus fetal persistent infection after immunization with a contaminated modified-live virus vaccine. Theriogenology. 2013; 79(8): 1184–95. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2013.02.017
  86. Passler T., Walz H., Ditchkoff S., van Santen E., Brock K.V., Walz P.H. Distribution of bovine viral diarrhea virus antigen in persistently infected white tailer deer (Odocoileus virginianus). J. Comp. Pathol. 2012; 147(4): 433–51. https://doi.org/10.1016/j.jcpa.2012.02.008
  87. Patel J., Shilleto R., Williams J., Alexander D.C. Prevention of transplacental infection of bovine foetus by bovine viral diarrhoea virus through vaccination. Arch. Virol. 2002; 147(12): 2453–63. https://doi.org/10.1007/s00705-002-0878-3
  88. Pedrera M., Gómez-Villamandos J.C., Molina V., Risalde M.A., Rodriguez-Sanchez B., Sanchez-Cordon P.J. Quantification and determination of spread mechanisms of bovine viral diarrhoea virus in blood and tissues from colostrum-deprived calves during an experimental acute infection induced by a non-cytopathic genotype 1 strain. Transbound. Emerg. Dis. 2011; 59(5): 377–84. https://doi.org/10.1111/j.1865-1682.2011.01281.x
  89. Pedrera M., Gómez-Villamandos J.C., Risalde M.A., Molina V., Sanchez-Cordon P.J. Characterization of apoptosis pathways (intrinsic and extrinsic) in lymphoid tissues of calves inoculated with non-cytopathic bovine viral diarrhea virus genotype 1. J. Comp. Pathol. 2012; 146(1): 30–9. https://doi.org/10.1016/j.jcpa.2011.03.015
  90. Peterhans E., Bachofen C., Stalder H., Schweizer M. Cytopathic bovine viral diarrhea viruses (BVDV): emerging pestiviruses doomed to extinction. Vet. Res. 2010; 41(6): 44. https://doi.org/10.1051/vetres/2010016
  91. Peterhans E., Jungi T.W., Schweizer M. BVDV and innate immunity. Biologicals. 2003, 31(2): 107–12. https://doi.org/10.1016/s1045-1056(03)00024-1
  92. Peterhans E., Jungi T.W., Schweizer M. How the bovine viral diarrhea virus outwits the immune system. Dtsch. Tierarztl. Wochenschr. 2006; 113(4): 124–9. (in German)
  93. Peterhans E., Schweizer M. Pestiviruses: How to outmaneuver your hosts. Vet. Microbiol. 2010; 142(1-2): 18–25. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2009.09.038
  94. Peterhans E., Schweizer M. BVDV: A pestivirus inducing tolerance of the innate immune response. Biologicals. 2013; 41(1): 39–51. https://doi.org/10.1016/j.biologicals.2012.07.006
  95. Pinior B., Firth C.L., Richter V., Lebl K., Trauffler M., Dzieciol M., et al. A systematic review of financial and economic assessments of bovine viral diarrhea virus (BVDV) prevention and mitigation activities worldwide. Prev. Vet. Med. 2017; 137(Pt. A): 77–92. https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2016.12.014
  96. Potgieter L.N. Immunology of bovine viral diarrhea virus. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 1995; 11(3): 501–20. https://doi.org/10.1016/s0749-0720(15)30464-3
  97. Potgieter L.N. Immunosuppression in cattle because of bovine viral diarrhea virus infection. Agri. Pract. 1988; (9): 7–14.
  98. Qu L., McMullan L.K., Rice C.M. Isolation and characterization of noncytopathic pestivirus mutants reveals a role for nonstructural protein NS4B in viral cytopathogenicity. J. Virol. 2001; 75(22): 10651–62. https://doi.org/10.1128/jvi.75.22.10651-10662.2001
  99. Quinn H.E., Windsor P.A., Kirkland P.D., Ellis T.J. An outbreak of abortion in a dairy herd associated with Neospora caninum and bovine pestivirus infection. Aust. Vet. J. 2004; 82(1-2): 99–101. https://doi.org/10.1111/j.1751-0813.2004.tb14656.x
  100. Ridpath J.F. Bovine viral diarrhea virus: global status. Vet. Clin. North Am. Food. Anim. Pract. 2010; 26(1): 105–21. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2009.10.007
  101. Ridpath J.F., Neill J.D., Peterhans E. Impact of variation in acute virulence of BVDV1 strains on design of better vaccine efficacy challenge models. Vaccine. 2007; 25(47): 8058–66. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2007.09.014
  102. Rinaldo C.R. Jr, Isackson D.W., Overall J.C., Glasgow L.A., Brown T.T., Bistner S.I., et al. Fetal and adult bovine interferon production during bovine viral diarrhea virus infection. Infect. Immun. 1976; 14(3): 660–6. https://doi.org/10.1128/iai.14.3.660-666.1976
  103. Sauter-Louis C.M., Staubach C., Reichmann F., Stoll A., Rademacher G., Cussler K., et al. Spatial distribution and incidence of bovine neonatal pancytopenia in Bavaria, Germany. BMC Vet. Res. 2020; 16(1): 155. https://doi.org/10.1186/s12917-020-02371-x
  104. Schweizer M., Matzener P., Pfaffen G., Stalder H., Peterhans E. “Self” and “nonself” manipulation of interferon defense during persistent infection: bovine viral diarrhea virus resists alpha/beta interferon without blocking antiviral activity against unrelated viruses replicating in its host cells. J. Virol. 2006; 80(14): 6926–35. https://doi.org/10.1128/JVI.02443-05
  105. Seong G., Lee J.S., Lee K.H., Shin S.U., Yoon J.Y., Choi K.S. Noncytopathic bovine viral diarrhea virus 2 impairs virus control in a mouse model. Arch. Virol. 2016; 161(2): 395–403. https://doi.org/10.1007/s00705-015-2665-y
  106. Tautz N., Tews B.A., Meyers G. The molecular biology of pestiviruses. Adv. Virus Res. 2015; 93: 47–160. https://doi.org/10.1016/bs.aivir.2015.03.002
  107. Taylor L.F., Janzen E.D., Ellis J.A., van den Hurk J.V., Ward P. Performance, survival, necropsy, and virological findings from calves persistently infected with the bovine viral diarrhea virus originating from a single Saskatchewan beef herd. Can. Vet. J. 1997; 38(1): 29–37.
  108. Voges H., Young S., Nash M. Direct adverse effects of persistent BVDv infection in dairy heifers – A retrospective case control study. VetScript. 2006; 19(8): 22–5.
  109. Walz P.H., Grooms D.L., Passler T., Ridpath J.F., Tremblay R., Step D.L., et al. Control of bovine viral diarrhea virus in ruminants. J. Vet. Intern. Med. 2010; 24(3): 476–86. https://doi.org/10.1111/j.1939-1676.2010.0502.x
  110. Webb B.T., Norrdin R.W., Smirnova N.P., Van Campen H., Weiner C.M., Antoniazzi A.Q., et al. Bovine viral diarrhea virus cyclically impairs long bone trabecular modeling in experimental persistently infected fetuses. Vet. Pathol. 2012; 49(6): 930–40. https://doi.org/10.1177/0300985812436746
  111. Wilhelmsen C.L., Bolin S.R., Ridpath J.F., Cheville N.F., Kluge J.P. Experimental primary postnatal bovine viral diarrhea viral infections in six-month-old calves. Vet. Pathol. 1990; 27(4): 235–43. https://doi.org/10.1177/030098589002700404
  112. Woodardt L. BVD virus associated with outbreaks of abortion, stillbirths and weak calves. Vet. Med. 1994; (4): 379–84.
  113. Yeşilbağ K., Alpay G., Becher R. Variability and global distribution of subgenotypes of bovine viral diarrhea virus. Viruses. 2017; 9(6): 128. https://doi.org/10.3390/v9060128

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Мищенко А.В., Мищенко В.А., Гулюкин М.И., Оганесян А.С., Алексеенкова С.В., Забережный А.Д., Гулюкин А.М., 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».