Циркуляция вирусов герпеса крупного рогатого скота (Herpesviridae: Varicellovirus) и диареи крупного рогатого скота (Flaviviridae: Pestivirus среди диких парнокопытных животных Московской области

Обложка
  • Авторы: Пчельников А.В.1,2, Яцентюк С.П.1,2, Красникова М.С.1
  • Учреждения:
    1. ФГБУ «Всероссийский государственный центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору (Россельхознадзор)
    2. ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина» Министерства сельского хозяйства Российской Федерации
  • Выпуск: Том 68, № 2 (2023)
  • Страницы: 142-151
  • Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • URL: https://ogarev-online.ru/0507-4088/article/view/132626
  • DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-167
  • EDN: https://elibrary.ru/dtkibo
  • ID: 132626

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Введение. Пестивирусы и вирусы семейства Herpesviridae широко распространены среди разных видов копытных, однако основная информация об этих возбудителях связана с их влиянием на сельскохозяйственных животных. Данные о случаях выявления вирусов диареи (BVDV) и герпеса крупного рогатого скота (КРС) у диких копытных, полученные в разных странах в последние годы, ставят вопрос о роли диких животных в эпизоотологии болезней КРС.

Цель работы – изучение распространённости герпесвирусов и пестивирусов в популяции диких парнокопытных Московской области.

Материалы и методы. Образцы паренхиматозных органов и смывы со слизистых от 124 диких парнокопытных (лосей и косуль), добытых в рамках спортивной и любительской охоты сезонов 2019–2022 гг. на территории Московской области, исследовали молекулярно-генетическими (ПЦР) и серологическими методами на наличие генетического материала и антител к возбудителям инфекционного ринотрахеита и вирусной диареи КРС.

Результаты. Генетический материал BVDV выявили в образце от одного лося, ДНК герпесвирусов КРС – в образцах от 3 косуль и 2 лосей, отстрелянных на территории Московской области. Антитела к вирусам находили у животных разного пола и возраста, общая серопревалентность диких парнокопытных к герпесвирусам и пестивирусам составила 46 и 29% соответственно.

Заключение. Дикие жвачные парнокопытные Московской области могут быть естественным резервуаром герпесвирусов КРС, и это необходимо учитывать при планировании и организации мероприятий по контролю и оздоровлению территории от инфекционного ринотрахеита КРС. Случаи инфицирования диких парнокопытных животных BVDV носят менее распространённый характер, поэтому для окончательного установления их роли в эпизоотологии этой болезни у КРС необходимы дополнительные исследования.

Об авторах

Александр Владимирович Пчельников

ФГБУ «Всероссийский государственный центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору (Россельхознадзор); ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина» Министерства сельского хозяйства Российской Федерации

Автор, ответственный за переписку.
Email: vetdr-mom@list.ru
ORCID iD: 0000-0002-9712-3079

кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры эпизоотологии и организации ветеринарного дела; специалист 1 категории

Россия, 123022, г. Москва; 109472, г. Москва

Светлана Петровна Яцентюк

ФГБУ «Всероссийский государственный центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору (Россельхознадзор); ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К.И. Скрябина» Министерства сельского хозяйства Российской Федерации

Email: pcr-lab@vgnki.ru
ORCID iD: 0000-0002-4819-2131
SPIN-код: 9853-2024

кандидат биологических наук, заведующий отелом генодиагностики инфекционных болезней животных; доцент кафедры биологической безопасности объектов ветеринарного надзора и обращения лекарственных средств в ветеринарии

Россия, 123022, г. Москва; 109472, г. Москва

Мария Сергеевна Красникова

ФГБУ «Всероссийский государственный центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору (Россельхознадзор)

Email: m.krasnikova@vgnki.ru
ORCID iD: 0000-0002-6248-419X

кандидат биологических наук, старший научный сотрудник отела генодиагностики инфекционных болезней животных

Россия, 123022, г. Москва

Список литературы

  1. Evans A.L., das Neves C.G., Finstad G.F., Beckmen K.B., Skjerve E., Nymo I.H., et al. Evidence of alphaherpesvirus infections in Alaskan caribou and reindeer. BMC Vet. Res. 2012; 8: 5. https://doi.org/10.1186/1746-6148-8-5
  2. Han Z., Gao J., Li K., Shahzad M., Nabi F., Zhang D., et al. Prevalence of circulating antibodies to bovine herpesvirus 1 in yaks (Bos grunniens) on the Qinghai-Tibetan plateau, China. J. Wildl. Dis. 2016; 52(1): 164–7. https://doi.org/10.7589/2015-01-018
  3. Maidana S.S., Konrad J.L., Craig M.I., Zabal O., Mauroy A., Thiry E., et al. First report of isolation and molecular characterization of bubaline herpesvirus 1 (BuHV1) from Argentinean water buffaloes. Arch. Virol. 2014; 159(11): 2917–23. https://doi.org/10.1007/s00705-014-2146-8
  4. Rola J., Larska M., Socha W., Rola J.G., Materniak M., Urban-Chmiel R., et al. Seroprevalence of bovine herpesvirus 1 related alphaherpesv rus infections in free-living and captive cervids in Poland. Vet. Microbiol. 2017; 204: 77–83. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2017.04.006
  5. Hemmatzadeh F., Boardman W., Alinejad A., Hematzade A., Moghadam M.K. Molecular and serological survey of selected viruses in free-ranging wild ruminants in Iran. PLoS One. 2016; 11(12): e0168756. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0168756
  6. Hedayat N., Haji Hajikolaei M.R., Seyfi Abad Shapouri M.R., Ghadrdan Mashhadi A.R., Izadnia H., Daghari M. Isolation and identification of bubaline herpesvirus 1 (BuHV-1) from latently infected water buffalo (Bubalus bubalis) from Iran. Trop. Anim. Health Prod. 2020; 52(1): 217–26. https://doi.org/10.1007/s11250-019-02007-9
  7. Conner M.M., Ebinger M.R., Blanchong J.A., Cross P.C. Infectious disease in cervids of North America: data, models, and management challenges. Ann. NY Acad. Sci. 2008; 1134: 146–72. https://doi.org/10.1196/annals.1439.005
  8. Cripps J.K., Pacioni C., Scroggie M.P., Woolnough A.P., Ramsey D.S.L. Introduced deer and their potential role in disease transmission to livestock in Australia. Mammal. Rev. 2019; 49(1): 60–77. https://doi.org/10.1111/mam.12142
  9. Lyaku J.R., Nettleton P.F., Marsden H. A comparison of serological relationships among five ruminant alphaherpesviruses by ELISA. Arch. Virol. 1992; 124(3-4): 333–41. https://doi.org/10.1007/BF01309813
  10. Martin W.B., Castrucci G., Frigeri F., Ferrari M. A serological comparison of some animal herpesviruses. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 1990; 13(2): 75–84. https://doi.org/10.1016/0147-9571(90)90519-y
  11. Nixon P., Edwards S., White H. Serological comparisons of antigenically related herpesviruses in cattle, red deer and goats. Vet. Res. Commun. 1988; 12(4-5): 355–62. https://doi.org/10.1007/BF00343256
  12. Thiry J., Keuser V., Muylkens B., Meurens F., Gogev S., Vanderplasschen A., et al. Ruminant alphaherpesviruses related to bovine herpesvirus 1. Vet. Res. 2006; 37(2): 169–90. https://doi.org/10.1051/vetres:2005052
  13. International Committee on Taxonomy of Viruses ICTV. Available at: https://ictv.global/taxonomy
  14. Darbyshire J.H. A serological relationship between swine fever and mucosal disease of cattle. Vet. Rec. 1960; 72: 331.
  15. Becher P., Ramirez R.A., Orlich M., Rosales S.C., Konig M., Schweizer M., et al. Genetic and antigenic characterization of novel pestivirus genotypes: implications for classification. Virology. 2003; 311(1): 96–104. https://doi.org/10.1016/s0042-6822(03)00192-2
  16. Doyle L.G., Heuschele W.P. Bovine viral diarrhea virus infection in captive exotic ruminants. J. Am. Vet. Med. Assoc. 1983; 183(11): 1257–9.
  17. Van Campen H., Ridpath J., Williams E., Cavender J., Edwards J., Smith S., et al. Isolation of bovine viral diarrhea virus from a free-ranging mule deer in Wyoming. J. Wildl. Dis. 2001; 37(2): 306–11. https://doi.org/10.7589/0090-3558-37.2.306
  18. Duncan C., Ridpath J., Palmer M.V., Driskell E., Spraker T. Histopathologic and immunohistochemical findings in two white-tailed deer fawns persistently infected with Bovine viral diarrhea virus. J. Vet. Diagn. Invest. 2008; 20(3): 289–96. https://doi.org/10.1177/104063870802000305
  19. Uttenthal A., Hoyer M.J., Grøndahl C., Houe H., van Maanen C., Rasmussen T.B., et al. Vertical transmission of bovine viral diarrhoea virus (BVDV) in mousedeer (Tragulus javanicus) and spread to domestic cattle. Arch. Virol. 2006; 151(12): 2377–87. https://doi.org/10.1007/s00705-006-0818-8
  20. Casaubon J., Vogt H.R., Stalder H., Hug C., Ryser-Degiorgis M.P. Bovine viral diarrhea virus in free-ranging wild ruminants in Switzerland: low prevalence of infection despite regular interactions with domestic livestock. BMC Vet. Res. 2012; 8: 204. https://doi.org/10.1186/1746-6148-8-204
  21. Fernández-Aguilar X., López-Olvera J.R., Marco I., Rosell R., Colom-Cadena A., Soto-Heras S., et al. Pestivirus in alpine wild ruminants and sympatric livestock from the Cantabrian Mountains, Spain. Vet. Rec. 2016; 178(23): 586. https://doi.org/10.1136/vr.103577
  22. Rodríguez-Prieto V., Kukielka D., Rivera-Arroyo B., Martínez-López B., de las Heras A.I., Sánchez-Vizcaíno J.M., et al. Evidence of shared bovine viral diarrhea infections between red deer and extensively raised cattle in south-central Spain. BMC Vet. Res. 2016; 12: 11. https://doi.org/10.1186/s12917-015-0630-3
  23. Ricci S., Bartolini S., Morandi F., Cuteri V., Preziuso S. Genotyping of pestivirus A (Bovine Viral Diarrhea Virus 1) detected in faeces and in other specimens of domestic and wild ruminants at the wildlife-livestock interface. Vet. Microbiol. 2019; 235: 180–7. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2019.07.002
  24. Fabisiak M., Sałamaszyńska A., Stadejek T. Detection of seroconversion to bovine herpesvirus 1 related alphaherpesvirus and bovine viral diarrhea virus in Polish free-living deer. Pol. J. Vet. Sci. 2018; 21(3): 437–40. https://doi.org/10.24425/122615
  25. Lillehaug A., Vikøren T., Larsen I.L., Akerstedt J., Tharaldsen J., Handeland K. Antibodies to ruminant alpha-herpesviruses and pestiviruses in Norwegian cervids. J. Wildl. Dis. 2003; 39(4): 779–86. https://doi.org/10.7589/0090-3558-39.4.779
  26. Юров К.П., Гулюкин М.И. Контроль и пути оздоровления скота племенных хозяйств и племенных предприятий от инфекционного ринотрахеита и вирусной диареи. Российская сельскохозяйственная наука. 2018; (1): 59–63. EDN: https://www.elibrary.ru/ovumgb
  27. Шуляк А.Ф., Горбатов А.В., Стаффорд В.В., Лощинин М.Н., Величко Г.Н., Соколова Н.А. и др. Смешанная инфекция у диких парнокопытных в охотхозяйстве. Ветеринария: научно-производственный журнал. 2020; (10): 20–5. https://doi.org/10.30896/0042-4846.2020.23.10.20-25 EDN: https://elibrary.ru/jgaust
  28. Ros C., Belák S. Studies of genetic relationships between bovine, caprine, cervine, and rangiferine alphaherpesviruses and improved molecular methods for virus detection and identification. J. Clin. Microbiol. 1999; 37(5): 1247–53. https://doi.org/10.1128/JCM.37.5.1247-1253.1999
  29. Горбачева Н.С., Яцентюк С.П., Красникова М.С., Козлова А.Д., Брюсова М.Б. Выявление пестивирусной контаминации биопрепаратов методом ОТ-ПЦР в режиме реального времени. В кн.: Экономически и социально значимые инфекции сельскохозяйственных животных: меры профилактики и борьбы: Материалы Международной научно-практической конференции. М.; 2022: 145–7.
  30. Yatsentyuk S.P., Pchelnikov A.V., Safina E.R., Krasnikova M.S. The first study on the occurrence of bovine herpesviruses in the wild fauna of the Moscow region, Russia. Vet. World. 2022; 15(8): 2052–8. https://doi.org/10.14202/vetworld.2022.2052-2058
  31. Lyaku J.R., Vilcek S., Nettleton P.F., Marsden H.S. The distinction of serologically related ruminant alphaherpesviruses by the polymerase chain reaction (PCR) and restriction endonuclease analysis. Vet. Microbiol. 1996; 48(1-2): 135–42. https://doi.org/10.1016/0378-1135(95)00136-0
  32. Ros C., Riquelme M.E., Forslund K.O., Belák S. Improved detection of five closely related ruminant alphaherpesviruses by specific amplification of viral genomic sequences. J. Virol. Methods. 1999; 83(1-2): 55–65. https://doi.org/10.1016/s0166-0934(99)00103-2

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Места добычи животных, в материале которых детектирован генетический материал α-герпесвирусов КРС и пестивирусов КРС, в Московской области.

Скачать (514KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Места отстрела животных, в сыворотке крови которых детектированы антитела к α-герпесвирусам КРС и пестивирусам КРС, в Московской области.

Скачать (529KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Регионы Московской области, где проведён отбор проб сыворотки крови и сравнение общего количества исследованных проб и проб, в которых детектированы антитела к α-герпесвирусам КРС и пестивирусам КРС.

Скачать (138KB)
Метаданные
5. Рис. 4. Распределение общего количества проб сыворотки крови к количеству проб, в которых детектированы антитела к α-герпесвирусам КРС и пестивирусам КРС, по видовым, возрастным и половым особенностям добытых животных.

Скачать (144KB)
Метаданные

© Пчельников А.В., Яцентюк С.П., Красникова М.С., 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».