Штаммы диплоидных клеток лёгкого летучей мыши Pipistrellus pipistrellus и их пермиссивность к орбивирусам (Reoviridae: Orbivirus) – возбудителям трансмиссивных болезней животных
- Авторы: Поволяева О.С.1, Чадаева А.А.1, Луницин А.В.1, Юрков С.Г.1
-
Учреждения:
- ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии»
- Выпуск: Том 67, № 3 (2022)
- Страницы: 227-236
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- URL: https://ogarev-online.ru/0507-4088/article/view/118229
- DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-114
- ID: 118229
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Введение. Культуры клеток летучих мышей являются востребованной моделью как для изоляции вирусов трансмиссивных болезней, так и для оценки возможной роли данных видов млекопитающих в формировании природных резервуаров переносчиков возбудителей арбовирусных инфекций.
Цель исследования. Получение и характеристика штаммов диплоидных клеток лёгкого летучей мыши Pipistrellus pipistrellus, оценка их пермиссивности к вирусам блютанга, африканской чумы лошадей (АЧЛ), эпизоотической геморрагической болезни оленей (ЭГБО).
Материалы и методы. Культуры клеток лёгкого нетопыря-карлика получали методом стандартной ферментативной дезагрегации ткани доноров и селекцией клеток по адгезивным свойствам. Биологические свойства штаммов клеток изучены цитологическими, кариологическими методами. Пермиссивность культур клеток определяли к орбивирусам блютанга, АЧЛ, ЭГБО.
Результаты. Диплоидные штаммы клеток (эпителиоподобного и фибробластоподобного типа), сохраняющие цитоморфологические характеристики и стабильность кариотипа, получены из ткани лёгкого нетопыря-карлика Pipistrellus pipistrellus. Установлена их пермиссивность к вирусам рода Orbivirus семейства Reoviridae возбудителям трансмиссивных заболеваний животных. Паспортизированные штаммы диплоидных клеток чувствительны к орбивирусам блютанга, АЧЛ, ЭГБО. Инфекционная активность вирусов в эпителиоподобной культуре клеток соответствовала активности в референтных культурах Vero и CV-1. Фибробластоподная культура клеток была менее пермиссивна к вирусам блютанга и ЭГБО, однако накопление вируса АЧЛ было выше на 1,52,0 lg ТЦД50/см3.
Обсуждение. Пермиссивность полученных штаммов клеток лёгкого летучей мыши Pipistrellus pipistrellus к вирусам блютанга, АЧЛ, ЭГБО согласуется с данными изоляции орбивирусов у летучих мышей видов Pteropus poliocephalus, Pteropus hypomelanus, Rousettus aegyptiacus leachii, Syconycteris crassa, Myotis macrodactylus, Eidolon helvum.
Заключение. Штаммы диплоидных клеток лёгкого нетопыря-карлика пермиссивны к орбивирусам блютанга, АЧЛ, ЭГБО, что позволяет рекомендовать их для изоляции этих вирусов, а вид Pipistrellus pipistrellus рассматривать как потенциальный природный резервуар и переносчик возбудителей данных трансмиссивных болезней.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Ольга Сергеевна Поволяева
ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии»
Email: 2741188@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5635-6677
микробиолог
Россия, 601125, Владимирская обл., п. ВольгинскийАнна Александровна Чадаева
ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии»
Email: a_doct_or@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9615-9758
микробиолог
Россия, 601125, Владимирская обл., п. ВольгинскийАндрей Владимирович Луницин
ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии»
Email: lunicyn@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5043-446X
старший научный сотрудник, заместитель директора по производству и качеству
Россия, 601125, Владимирская обл., п. ВольгинскийСергей Григорьевич Юрков
ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр вирусологии и микробиологии»
Автор, ответственный за переписку.
Email: patronn13@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0002-6801-9424
доктор биологических наук, профессор, главный научный сотрудник
Россия, 601125, Владимирская обл., п. ВольгинскийСписок литературы
- Narladkar B.W. Projected economic losses due to vector and vector-borne parasitic diseases in livestock of India and its significance in implementing the concept of integrated practices for vector management. Vet. World. 2018; 11(2): 151–60. https://doi.org/10.14202/vetworld.2018.151-160
- ВОЗ. Трансмиссивные болезни: Информационный бюллетень; 2020. Available at: https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/vector-borne-diseases
- Еремян А.А., Львов Д.К., Щетинин А.М., Дерябин П.Г., Аристова В.А., Гительман А.К. и др. Генетическое разнообразие вирусов вида Chenuda virus (Orbivirus, Reoviridae), циркулирующих в Средней Азии. Вопросы вирусологии. 2017; 62(2): 81–6. https://doi.org/10.18821/0507-4088-2017-62-2-81-86
- Maclachlan N.J., Guthrie A.J. Re-emergence of bluetongue, African horse sickness, and other orbivirus diseases. Vet. Res. 2010; 41(6): 35. https://doi.org/10.1051/vetres/2010007
- Львов Д.К., Алексеев К.П., Алимбарова Л.М., Алипер Т.И., Альховский С.В., Андронова В.Л. и др. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. Руководство по вирусологии. М.; МИА; 2013.
- Attoui H., Mohd Jaafar F. Zoonotic and emerging orbivirus infections. Rev. Sci. Tech. 2015; 34(2): 353–61. https://doi.org/10.20506/rst.34.2.2362
- Calisher C.H., Childs J.E., Field H.E., Holmes K.V., Schountz T. Bats: Important reservoir hosts of emerging viruses. Clin. Microbiol. Rev. 2006; 19(3): 531–45. https://doi.org/10.1128/CMR.00017-06
- Leroy E.M., Kumulungui B., Pourrut X., Rouquet P., Hassanin A., Yaba P., et al. Fruit bats as reservoirs of Ebola virus. Nature. 2005; 438(7068): 575–6. https://doi.org/10.1038/438575a
- Lau S.K., Woo P.C., Li K.S., Huang Y., Tsoi H.W., Wong B.H., et al. Severe acute respiratory syndrome coronavirus-like virus in Chinese horseshoe bats. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2005; 102(39): 14040–5. https://doi.org/10.1073/pnas.0506735102
- Ge X.Y., Li J.L., Yang X.L., Chmura A.A., Zhu G., Epstein J.H., et al. Isolation and characterization of a bat SARS-like coronavirus that uses the ACE2 receptor. Nature. 2013; 7477(503): 535–8. https://doi.org/10.1038/nature12711
- Aréchiga Ceballos N., Vázquez Morón S., Berciano J.M., Nicolás O., Aznar López C., Juste J., et al. Novel lyssavirus in bat, Spain. Emerg. Infect. Dis. 2013; 19(5): 793–5. https://doi.org/10.3201/eid1905
- Jánoska M., Vidovszky M., Molnár V., Liptovszky M., Harrach B., Benko M. Novel adenoviruses and herpesviruses detected in bats. Vet. J. 2011; 189(1): 118–21. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2010.06.020
- Aurine N., Baquerre C., Gaudino M., Jean C., Dumont C., Rival-Gervier S., et al. Reprogrammed Pteropus bat stem cells as a model to study host-pathogen interaction during Henipavirus infection. Microorganisms. 2021; 9(12): 2567. https://doi.org/10.3390/microorganisms9122567
- Waruhiu C., Ommeh S., Obanda V., Agwanda B., Gakuya F., Ge X.Y., et al. Molecular detection of viruses in Kenyan bats and discovery of novel astroviruses, caliciviruses and rotaviruses. Virol. Sin. 2017; 32(2): 101–14. https://doi.org/10.1007/s12250-016-3930-2
- Kohl C., Lesnik R., Brinkmann A., Ebinger A., Radonić A., Nitsche A., et al. Isolation and characterization of three mammalian orthoreoviruses from European bats. PLoS One. 2012; 7(8): e43106. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0043106
- Chua K.B., Crameri G., Hyatt A., Yu M., Tompang M.R., Rosli J., et al. A previously unknown reovirus of bat origin is associated with an acute respiratory disease in humans. Proc. Natl Acad. Sci. USA. 2007; 104(27): 11424–9. https://doi.org/10.1073/pnas.0701372104
- Макаров В.В., Лозовой Д.А. Новые особо опасные инфекции, ассоциированные с рукокрылыми. Владимир; 2016.
- Gonsalves L., Bicknell B., Law B., Webb C., Monamy V. Mosquito consumption by insectivorous bats: does size matter? PLoS One. 2013; 8(10): e77183. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0077183
- La Motte L.C. Jr. Japanese B encephalitis in bats during simulated hibernation. Am. J. Hyg. 1958; 67(1): 101–8. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.aje.a119912
- Melaun C., Werblow A., Busch M.W., Liston A., Klimpel S. Bats as potential reservoir hosts for vector-borne diseases. In: Klimpel S., Mehlhorn H. Bats (Chiroptera) as Vectors of Diseases and Parasites. Parasitology Research Monographs, Volume 5. Berlin, Heidelberg: Springer; 2014. https://doi.org/10.1007/978-3-642-39333-4_3
- Schuh A.J., Amman B.R., Jones M.E., Sealy T.K., Uebelhoer L.S., Spengler J.R., et al. Modelling filovirus maintenance in nature by experimental transmission of Marburg virus between Egyptian rousette bats. Nat. Commun. 2017; 8: 14446. https://doi.org/10.1038/ncomms14446
- Smith I., Wang L.F. Bats and their virome: an important source of emerging viruses capable of infecting humans. Curr. Opin. Virol. 2013; 3(1): 84–91. https://doi.org/10.1016/j.coviro.2012.11.006
- Gloza-Rausch F., Ipsen A., Seebens A., Göttsche M., Panning M., Drexler J.F., et al. Detection and prevalence patterns of group I coronaviruses in bats, northern Germany. Emerg. Infect. Dis. 2008; 14(4): 626–31. https://doi.org/10.3201/eid1404.071439
- Geldenhuys M., Coertse J., Mortlock M., Markotter W. In Vitro Isolation of Bat Viruses Using Commercial and Bat-Derived Cell Lines. Caister Academic Press; 2020: 149–80. https://doi.org/10.21775/9781912530144.10
- Banerjee A., Misra V., Schountz T., Baker M.L. Tools to study pathogen-host interactions in bats. Virus Res. 2018; 248: 5–12. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2018.02.013
- Crameri G., Todd S., Grimley S., McEachern J.A., Marsh G.A., Smith C., et al. Establishment, immortalisation and characterisation of pteropid bat cell lines. PLoS One. 2009; 4(12): e8266. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0008266
- Hoffmann M., Müller M.A., Drexler J.F., Glende J., Erdt M., Gützkow T., et al. Differential sensitivity of bat cells to infection by enveloped RNA viruses: coronaviruses, paramyxoviruses, filoviruses, and influenza viruses. PLoS One. 2013; 8(8): e72942. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0072942
- Поволяева О.С., Юрков С.Г., Лаптева О.Г., Колбасова О.Л., Чадаева А.А., Кольцов А.Ю. и др. Биологическая характеристика и пермиссивность к вирусам штамма диплоидных клеток почки летучей мыши нетопыря Натузиуса (Pipistrellus nathusii Keyserling & Blasius, 1839; (Chiroptera: Microchiroptera: Vespertilionidae). Вопросы вирусологии. 2021; 66(1): 29–39. https://doi.org/10.36233/0507-4088-12
- OIE; World Animal Health Information System. Disease situation. Available at: https://wahis.oie.int/#/dashboards/country-or-disease-dashboard
- Юрков С.Г., Зуев В.В., Сидоров С.И., Кушнир С.Д., Смыслова Н.Ю., Неверовская Н.С. и др. Каталог коллекции клеточных культур ВНИИВВиМ. Покров; 2010.
- Ford C.E., Hamerton J.L. A colchicine, hypotonic citrate, squash sequence for mammalian chromosomes. Stain Technol. 1956; 31(6): 247–51. https://doi.org/10.3109/10520295609113814
- Rothfels K.H., Siminovitch L. Air drying technique for flattening chromosomes in mammalian cells grown in vitro. Stain Technol. 1958; 33(2): 73–7. https://doi.org/10.3109/10520295809111827
- Baker K.S., Todd S., Marsh G., Fernandez-Loras A., Suu-Ire R., Wood J.L.N., et al. Co-circulation of diverse paramyxoviruses in an urban African fruit bat population. J. Gen. Virol. 2012; 93(Pt. 4): 850–6. https://doi.org/10.1099/vir.0.039339-0
- Directive 2010/63/EU of the European parliament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes. Available at: https://eur-lex.europa.eu/legal-content/EN/TXT/?uri=CELEX%3A32010L0063
- Fagre A.C., Lee J.S., Kityo R.M., Bergren N.A., Mossel E.C., Nakayiki T., et al. Discovery and characterization of Bukakata orbivirus (Reoviridae:Orbivirus), a novel virus from a Ugandan bat. Viruses. 2019; 11(3): 209. https://doi.org/10.3390/v11030209
Дополнительные файлы
