Антимикробная резистентность штаммов Klebsiella pneumoniae, выделенных от пациентов с COVID-19: генетический анализ и фенотипическая характеристика

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Введение. Кlebsiella pneumoniae является одним из наиболее значимых условно-патогенных микроорганизмов, вызывает широкий спектр инфекций у госпитализированных пациентов, характеризуется высокой способностью к накоплению генов антимикробной резистентности.

Цель: анализ фенотипического профиля резистентности к антимикробным препаратам (АМП) и молекулярных характеристик (гены резистентности и вирулентности) клинических штаммов K. pneumoniae, выделенных от пациентов с COVID-19, сравнительная оценка взаимосвязи между изученными генетическими и фенотипическими признаками.

Материалы и методы. Обследованы 102 пациента с COVID-19. Исследование мазков из носоглотки проводили классическим бактериологическим методом. Изучение фенотипической устойчивости к АМП выполнили при помощи диско-диффузионного метода. Проведено полногеномное секвенирование 9 изолятов K. pneumoniae с последующим биоинформатическим анализом генетического профиля резистентности к АМП и вирулентности.

Результаты. Проведённый анализ показал, что преобладающим механизмом устойчивости у исследованных штаммов K. pneumoniae является инактивация АМП (42,4%), что подчёркивает значимость ферментативной инактивации как основного механизма резистентности. Значительная доля генетических детерминант относится к эффлюксным насосам (36,3%), что также может свидетельствовать об их важности в обеспечении устойчивости к широкому спектру АМП. Меньшая доля генов ассоциирована с повреждением мишени АМП (9,1%), защитой цели АМП (6,1%) и уменьшением проницаемости к АМП (6,1%), однако их совместное присутствие указывает на комплексный характер устойчивости K. pneumoniae к АМП. Фенотипически все штаммы проявляли устойчивость как минимум к 2 АМП, при этом 67% исследованных изолятов были устойчивыми ко всем тестируемым АМП. Сравнительный анализ распределения генетических детерминант вирулентности и детерминант устойчивости к АМП выявил значимые различия (p < 0,001). Результаты корреляционного анализа продемонстрировали наличие значимой (p = 0,034) обратной корреляции между этими двумя показателями.

Выводы. Фенотипическая чувствительность K. pneumoniae к АМП при наличии генетических детерминант устойчивости может быть обусловлена сложным взаимодействием регуляторных механизмов, стабильности генетических элементов и условий окружающей среды. Полученные данные свидетельствуют о наличии выраженной тенденции к снижению количества генетических детерминант факторов вирулентности при увеличении генов устойчивости к АМП.

Об авторах

Гузель Шавхатовна Исаева

ФГБОУ ВО «Казанский государственный медицинский университет» Минзрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: guisaeva@rambler.ru
ORCID iD: 0000-0002-1462-8734

д-р мед. наук, зав. каф. микробиологии им. акад. В.М. Аристовского

Россия, Казань

Никита Сергеевич Чумарев

ФГБОУ ВО «Казанский государственный медицинский университет» Минзрава России

Email: nikitasergeevichsno@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-6247-6184

аспирант каф. микробиологии им. акад. В.М. Аристовского

Россия, Казань

Марина Николаевна Белова

ГАУЗ «Республиканская клиническая инфекционная больница имени профессора А.Ф. Агафонова»

Email: belova.marina@tatar.ru
ORCID iD: 0000-0001-9579-3370

зав. бактериологической лаб.

Россия, Казань

Наталья Дмитриевна Шайхразиева

ГАУЗ «Городская клиническая больница № 7 имени М.Н. Садыкова» г. Казани

Email: epid-gkb7@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2241-3100

канд. мед. наук, врач-эпидемиолог, зав. эпидемиологическим отделом

Россия, Казань

Список литературы

  1. Dong N., Yang X., Chan E.W., et al. Klebsiella species: Taxonomy, hypervirulence and multidrug resistance. EBioMedicine. 2022;79:103998. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ebiom.2022.103998
  2. Wyres K.L., Holt K.E. Klebsiella pneumoniae as a key trafficker of drug resistance genes from environmental to clinically important bacteria. Curr. Opin. Microbiol. 2018;45:131–9. DOI: https://doi.org/10.1016/j.mib.2018.04.004
  3. Vuotto C., Longo F., Pascolini C., et al. Biofilm formation and antibiotic resistance in Klebsiella pneumoniae urinary strains. J. Appl. Microbiol. 2017;123(4):1003–18. DOI: https://doi.org/10.1111/jam.13533
  4. Чеботарь И.В., Кулешов К.В. Между антибиотикорезистентностью и вирулентностью: диалектика бактериального фитнеса. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2024;26(1):4–17. Chebotar I.V., Kuleshov K.V. Antibiotic resistance vs. Virulence in the context of bacterial fitness dialectics. Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy. 2024;26(1):4–17. DOI: https://doi.org/10.36488/cmac.2024.1.59-66 EDN: https://elibrary.ru/bromnk
  5. Чеботарь И.В., Бочарова Ю.А., Подопригора И.В., Шагин А.В. Геномный анализ вирулентности и антибиотикорезистентности Klebsiella pneumoniae. Современные методы анализа микробиологических сообществ. 2020;22(1):4–19. Chebotar' I.V., Bocharova Yu.A., Podoprigora I.V., Shagin A.V. The reasons why Klebsiella pneumoniae becomes a leading opportunistic pathogen. Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy. 2020;22(1):4–19. DOI: https://doi.org/10.36488/cmac.2020.1.4-19
  6. Ghosh S., Bornman C., Zafer M.M., et al. Antimicrobial resistance threats in the emerging COVID-19 pandemic: Where do we stand? J. Infect. Public Health. 2021;14(5):555–60. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jiph.2021.02.011
  7. Adebisi Y.A., Alaran A.J., Okereke M., et al. COVID-19 and antimicrobial resistance: a review. Infect. Dis. (Auckl). 2021;14:11786337211033870. DOI: https://doi.org/10.1177/11786337211033870
  8. Российские рекомендации. Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам. Версия 2024-02. Смоленск;2024. Russian Guidelines. Determination of Microorganism Susceptibility to Antimicrobial Agents. Version 2024-02. Smolensk;2024.
  9. Nishino K., Yamaguchi A. Role of histone-like protein H-NS in multidrug resistance of Escherichia coli. J. Bacteriol. 2004;186(5):1423–9. DOI: https://doi.org/10.1128/JB.186.5.1423-1429.2004
  10. Sedrakyan A., Gevorgyan Z., Zakharyan M., et al. Molecular epidemiology and in-depth characterization of Klebsiella pneumoniae clinical isolates from Armenia. Int. J. Mol. Sci. 2025;26(2):504. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms26020504
  11. Li J., Zhang H., Ning J., et al. The nature and epidemiology of OqxAB, a multidrug efflux pump. Antimicrob. Resist. Infect. Control. 2019;8:44. DOI: https://doi.org/10.1186/s13756-019-0489-3
  12. Zeng L., Zhang J., Li C., et al. The determination of gyrA and parC mutations and the prevalence of plasmid-mediated quinolone resistance genes in carbapenem resistant Klebsiella pneumonia ST11 and ST76 strains isolated from patients in Heilongjiang Province. China Infect. Genet. Evol. 2020;82:104319. DOI: https://doi.org/10.1016/j.meegid.2020.104319
  13. Martin R.M., Bachman M.A. Colonization, infection, and the accessory genome of Klebsiella pneumoniae. Front. Cell. Infect. Microbiol. 2018;8:4. DOI: https://doi.org/10.3389/fcimb.2018.00004
  14. Yang, J. Exploring multidrug-resistant Klebsiella pneumoniae antimicrobial resistance mechanisms through whole genome sequencing analysis. BMC Microbiology. 2023;23(1):245. DOI: https://doi.org/10.1186/s12866-023-02974-y
  15. Oliveira R., Castro J., Silva S., et al. Exploring the antibiotic resistance profile of clinical Klebsiella pneumoniae isolates in Portugal. Antibiotics (Basel). 2022;11(11):1613. DOI: https://doi.org/10.3390/antibiotics11111613

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Исаева Г.Ш., Чумарев Н.С., Белова М.Н., Шайхразиева Н.Д., 2025

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).