Клетки, умершие зависимым от комплекса АР-3 путем регулируемой смерти, поддерживают выживших в условиях дефицита аминокислот

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Известно, что голодание может инициировать каскад регулируемой клеточной смерти (РКС) у одноклеточных организмов. Считается, что данный механизм служит для поддержания выживших клеток ресурсами, высвобождаемыми из мертвых клеток. Недавно было обнаружено, что при температуре 51 °С клетки дрожжей Saccharomyces cerevisiae гибнут специфическим образом: вначале разрушается мембрана лизосомы, и только через несколько часов после этого пермеабилизуется плазматическая мембрана (ПМ). Поскольку лизосомы содержат гидролазы азотсодержащих биополимеров, этот способ гибели мог бы помочь выжившим клеткам в условиях голодания по азоту. Резкое изменение солевого состава цитозоля после разрушения ПМ может привести к агрегации азотсодержащих макромолекул, белков и нуклеиновых кислот. Однако в таком случае ресурсы погибших клеток остались бы внутри них, поскольку клеточные стенки дрожжей непроницаемы для таких агрегатов. Наши экспериментальные данные согласуются с этой гипотезой. Мы показали, что клетки, убитые нагреванием до 52 °С, стимулируют рост живых клеток в условиях дефицита аминокислот. Мутанты по AP-3-комплексу, не способные разрушить мембрану лизосомы, такой способностью не обладают. Клетки, убитые кипячением, также не поддерживают рост живых клеток в этих условиях. Неожиданно оказалось, что среда от клеток, убитых кипячением, содержит в среднем больше каждой из аминокислот, чем среда от клеток, убитых нагреванием до 52 °С. Тем не менее спектрофотометрия и масс-спектрометрический анализ показали, что среда после нагревания до 52 °С более богата с точки зрения содержания веществ, поглощающих свет с короткой длиной волны. Мы предполагаем, что массовый гидролиз нуклеиновых кислот поддерживает рост выживших клеток в условиях дефицита доступного источника азота.

Об авторах

С. С. Соколов

НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: sviatoslav.sokolov@gmail.com
Москва

Е. А. Смирнова

НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: sviatoslav.sokolov@gmail.com
Москва

Н. А. Киреева

НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: sviatoslav.sokolov@gmail.com
Москва

А. Л. Ксенофонтов

НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: sviatoslav.sokolov@gmail.com
Москва

В. Н. Ташлицкий

НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: sviatoslav.sokolov@gmail.com
Москва

Ф. Ф. Северин

НИИ физико-химической биологии имени А.Н. Белозерского, Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова

Email: sviatoslav.sokolov@gmail.com
Москва

Список литературы

  1. Aubin, H.-J., Berlin, I., and Kornreich, C. (2013) The evolutionary puzzle of suicide, Int. J. Environ. Res. Public Health, 10, 6873-6886, https://doi.org/10.3390/ijerph10126873.
  2. Refardt, D., Bergmiller, T., and Kummerli, R. (2013) Altruism can evolve when relatedness is low: evidence from bacteria committing suicide upon phage infection, Proc. Biol. Sci., 280, 20123035, https://doi.org/10.1098/rspb.2012.3035.
  3. Berngruber, T. W., Lion, S., and Gandon, S. (2013) Evolution of suicide as a defence strategy against pathogens in a spatially structured environment, Ecol. Lett., 16, 446-453, https://doi.org/10.1111/ele.12064.
  4. Ramisetty, B. C. M., and Sudhakari, P. A. (2020) "Bacterial Programmed Cell Death": cellular altruism or genetic selfism? FEMS Microbiol. Lett., 367, fnaa141, https://doi.org/10.1093/femsle/fnaa141.
  5. Popp, P. F., and Mascher, T. (2019) Coordinated cell death in isogenic bacterial populations: Sacrificing some for the benefit of many? J. Mol. Biol., 431, 4656-4669, https://doi.org/10.1016/j.jmb.2019.04.024.
  6. Van Dyken, J. D., and Zee, P. C. (2024) Disentangling the factors selecting for unicellular programmed cell death, Am. Nat., 204, 468-481, https://doi.org/10.1086/732199.
  7. Frohlich, K. U., and Madeo, F. (2000) Apoptosis in yeast - a monocellular organism exhibits altruistic behaviour, FEBS Lett, 473, 6-9, https://doi.org/10.1016/s0014-5793(00)01474-5.
  8. King, A., and Gottlieb, E. (2009) Glucose metabolism and programmed cell death: an evolutionary and mechanistic perspective, Curr. Opin. Cell Biol., 21, 885-893, https://doi.org/10.1016/j.ceb.2009.09.009.
  9. Dubravcic, D., van Baalen, M., and Nizak, C. (2014) An evolutionarily significant unicellular strategy in response to starvation in Dictyostelium social amoebae, F1000Res., 3, 133, https://doi.org/10.12688/f1000research.4218.2.
  10. Kireeva, N., Galkina, K., Sokolov, S., and Knorre, D. (2022) Role of dead cells in collective stress tolerance in microbial communities: evidence from yeast, Biochemistry (Moscow), 87, 1528-1534, https://doi.org/10.1134/S0006297922120100.
  11. Grosfeld, E. V., Bidiuk, V. A., Mitkevich, O. V., Ghazy, E. S. M. O., Kushnirov, V. V., and Alexandrov, A. I. (2021) A systematic survey of characteristic features of yeast cell death triggered by external factors, J. Fungi (Basel), 7, 886, https://doi.org/10.3390/jof7110886.
  12. Chaves, S. R., Rego, A., Martins, V. M., Santos-Pereira, C., Sousa, M. J., and Corte-Real, M. (2021) Regulation of cell death induced by acetic acid in yeasts, Front. Cell Dev. Biol., 9, 642375, https://doi.org/10.3389/fcell.2021.642375.
  13. Pyatrikas, D. V., Fedoseeva, I. V., Varakina, N. N., Rusaleva, T. M., Stepanov, A. V., Fedyaeva, A. V., Borovskii, G. B., and Rikhvanov, E. G. (2015) Relation between cell death progression, reactive oxygen species production and mitochondrial membrane potential in fermenting Saccharomyces cerevisiae cells under heat-shock conditions, FEMS Microbiol. Lett., 362, fnv082, https://doi.org/10.1093/femsle/fnv082.
  14. Phillips, A. J., Sudbery, I., and Ramsdale, M. (2003) Apoptosis induced by environmental stresses and amphotericin B in Candida albicans, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 100, 14327-14332, https://doi.org/10.1073/pnas.2332326100.
  15. Buttner, S., Eisenberg, T., Herker, E., Carmona-Gutierrez, D., Kroemer, G., and Madeo, F. (2006) Why yeast cells can undergo apoptosis: death in times of peace, love, and war, J. Cell Biol., 175, 521-525, https://doi.org/10.1083/jcb.200608098.
  16. Rockenfeller, P., and Madeo, F. (2008) Apoptotic death of ageing yeast, Exp. Gerontol., 43, 876-881, https://doi.org/10.1016/j.exger.2008.08.044.
  17. Fabrizio, P., Battistella, L., Vardavas, R., Gattazzo, C., Liou, L.-L., Diaspro, A., Dossen, J. W., Gralla, E. B., and Longo, V. D. (2004) Superoxide is a mediator of an altruistic aging program in Saccharomyces cerevisiae, J. Cell Biol., 166, 1055-1067, https://doi.org/10.1083/jcb.200404002.
  18. Eastwood, M. D., Cheung, S. W. T., Lee, K. Y., Moffat, J., and Meneghini, M. D. (2012) Developmentally programmed nuclear destruction during yeast gametogenesis, Dev. Cell, 23, 35-44, https://doi.org/10.1016/j.devcel.2012.05.005.
  19. Eastwood, M. D., and Meneghini, M. D. (2015) Developmental coordination of gamete differentiation with programmed cell death in sporulating yeast, Eukaryot. Cell, 14, 858-867, https://doi.org/10.1128/EC.00068-15.
  20. Aram, L., and Arama, E. (2012) Sporoptosis: sowing the seeds of nuclear destruction, Dev. Cell, 23, 5-6, https://doi.org/10.1016/j.devcel.2012.06.016.
  21. Cowles, C. R., Odorizzi, G., Payne, G. S., and Emr, S. D. (1997) The AP-3 adaptor complex is essential for cargo-selective transport to the yeast vacuole, Cell, 91, 109-118, https://doi.org/10.1016/s0092-8674(01)80013-1.
  22. Anand, V. C., Daboussi, L., Lorenz, T. C., and Payne, G. S. (2009) Genome-wide analysis of AP-3-dependent protein transport in yeast, Mol. Biol. Cell, 20, 1592-1604, https://doi.org/10.1091/mbc.e08-08-0819.
  23. Panek, H. R., Stepp, J. D., Engle, H. M., Marks, K. M., Tan, P. K., Lemmon, S. K., and Robinson, L. C. (1997) Suppressors of YCK-encoded yeast casein kinase 1 deficiency define the four subunits of a novel clathrin AP-like complex, EMBO J., 16, 4194-4204, https://doi.org/10.1093/emboj/16.14.4194.
  24. Sun, B., Chen, L., Cao, W., Roth, A. F., and Davis, N. G. (2004) The yeast casein kinase Yck3p is palmitoylated, then sorted to the vacuolar membrane with AP-3-dependent recognition of a YXXPhi adaptin sorting signal, Mol. Biol. Cell, 15, 1397-1406, https://doi.org/10.1091/mbc.E03-09-0682.
  25. Stolp, Z. D., Kulkarni, M., Liu, Y., Zhu, C., Jalisi, A., Lin, S., Casadevall, A., Cunningham, K. W., Pineda, F. J., Teng, X., and Hardwick, J. M. (2022) Yeast cell death pathway requiring AP-3 vesicle trafficking leads to vacuole/lysosome membrane permeabilization, Cell Rep., 39, 110647, https://doi.org/10.1016/j.celrep.2022.110647.
  26. Scherrer, R., Louden, L., and Gerhardt, P. (1974) Porosity of the yeast cell wall and Membrane1, J. Bacteriol., 118, 534-540, https://doi.org/10.1128/jb.118.2.534-540.1974.
  27. De Nobel, J. G., and Barnett, J. A. (1991) Passage of molecules through yeast cell walls: a brief essay-review, Yeast, 7, 313-323, https://doi.org/10.1002/yea.320070402.
  28. Eisler, H., Frohlich, K.-U., and Heidenreich, E. (2004) Starvation for an essential amino acid induces apoptosis and oxidative stress in yeast, Exp. Cell Res., 300, 345-353, https://doi.org/10.1016/j.yexcr.2004.07.025.
  29. Maruyama, Y., Ito, T., Kodama, H., and Matsuura, A. (2016) Availability of amino acids extends chronological lifespan by suppressing hyper-acidification of the environment in Saccharomyces cerevisiae, PLoS One, 11, e0151894, https://doi.org/10.1371/journal.pone.0151894.
  30. Sherman, F. (2002) Getting started with yeast, In Methods in Enzymology (Guthrie, C., and Fink, G. R., eds) Academic Press, p. 3-41, https://doi.org/10.1016/S0076-6879(02)50954-X.
  31. Trofimova, L., Ksenofontov, A., Mkrtchyan, G., Graf, A., Baratova, L., and Bunik, V. (2016) Quantification of rat brain amino acids: Analysis of the data consistency, Curr. Anal. Chem., 2, 349-356, https://doi.org/10.2174/1573411011666151006220356.
  32. Ewald, J. C. (2018) How yeast coordinates metabolism, growth and division, Curr. Opin. Microbiol., 45, 1-7, https://doi.org/10.1016/j.mib.2017.12.012
  33. Soifer, I., and Barkai, N. (2014) Systematic identification of cell size regulators in budding yeast, Mol. Syst. Biol., 10, 761, https://doi.org/10.15252/msb.20145345.
  34. Dorsey, S., Tollis, S., Cheng, J., Black, L., Notley, S., Tyers, M., and Royer, C. A. (2018) G1/S transcription factor copy number is a growth-dependent determinant of cell cycle commitment in yeast, Cell Syst., 6, 539-554.e11, https://doi.org/10.1016/j.cels.2018.04.012.
  35. Friedson, B., and Cooper, K. (2022) Transcriptional role of the Cdk8 kinase module with protein synthesis machinery before and after nitrogen starvation, FASEB J., 36, https://doi.org/10.1096/fasebj.2022.36.S1.L8038.
  36. Ansari, S. A., and Morse, R. H. (2013) Mechanisms of Mediator complex action in transcriptional activation, Cell. Mol. Life Sci., 70, 2743-2756, https://doi.org/10.1007/s00018-013-1265-9.
  37. Hanley, S. E., Willis, S. D., Friedson, B., and Cooper, K. F. (2024) Med13 is required for efficient P-body recruitment and autophagic degradation of Edc3 following nitrogen starvation, Mol. Biol. Cell, 35, ar142, https://doi.org/10.1091/mbc.E23-12-0470.
  38. Hurst, L. R., and Fratti, R. A. (2020) Lipid rafts, sphingolipids, and ergosterol in yeast vacuole fusion and maturation, Front. Cell Dev. Biol., 8, 539, https://doi.org/10.3389/fcell.2020.00539.
  39. Sokolov, S. S., Vorobeva, M. A., Smirnova, A. I., Smirnova, E. A., Trushina, N. I., Galkina, K. V., Severin, F. F., and Knorre, D. A. (2020) LAM genes contribute to environmental stress tolerance but sensibilize yeast cells to azoles, Front. Microbiol., 11, 38, https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.00038.
  40. Choy, H.L., Gaylord, E.A., and Doering, T.L. (2024) LAMinar flow: Sterol transport in a pathogenic yeast, Contact (Thousand Oaks), 7, 25152564241237625, https://doi.org/10.1177/25152564241237625.
  41. Sokolov, S. S., Trushina, N. I., Severin, F. F., and Knorre, D. A. (2019) Ergosterol turnover in yeast: an interplay between biosynthesis and transport, Biochemistry (Moscow), 84, 346-357, https://doi.org/10.1134/S0006297919040023.
  42. Neidhardt, F. C., and Magasanik, B. (1960) Studies on the role of ribonucleic acid in the growth of bacteria, Biochim. Biophys. Acta, 42, 99-116, https://doi.org/10.1016/0006-3002(60)90757-5.
  43. Burdon, R. H. (1971) Ribonucleic acid maturation in animal cells, Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol., 11, 33-79, https://doi.org/10.1016/s0079-6603(08)60325-6.
  44. Huang, H., Kawamata, T., Horie, T., Tsugawa, H., Nakayama, Y., Ohsumi, Y., and Fukusaki, E. (2015) Bulk RNA degradation by nitrogen starvation-induced autophagy in yeast, EMBO J., 34, 154-168, https://doi.org/10.15252/embj.201489083.
  45. Tanguler, H., and Erten, H. (2008) Utilisation of spent brewer's yeast for yeast extract production by autolysis: the effect of temperature, Food Bioprod. Process., 86, 317-321, https://doi.org/10.1016/j.fbp.2007.10.015.
  46. Orban, E., Quaglia, G. B., Casini, I., and Moresi, M. (1994) Effect of temperature and yeast concentration on the autolysis of Kluyverommyces fragilis grown on lactose-based media, J. Food Eng., 21, 245-261, https://doi.org/10.1016/0260-8774(94)90190-2.
  47. Alves, E. M., Souza, J. F., and Oliva Neto, P. (2021) Advances in yeast autolysis technology - a faster and safer new bioprocess, Braz. J. Food Technol., 21, e2020249, https://doi.org/10.1590/1981-6723.24920.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Российская академия наук, 2025

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».