Влияние паразитарной инвазии трипаносомами на гематологические показатели тюльки (Clupeonella cultriventris) Иваньковского Водохранилища

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Впервые методом световой микроскопии исследованы показатели клеток крови у тюльки (Clupeonella cultriventris Nordmann, 1840) Иваньковского водохранилища, в периферической крови которой обнаружены трипаносомы. Показаны сдвиг состава эритроцитов в сторону незрелых клеток, лимфопения, увеличение долей незрелых гранулоцитов, уменьшение доли тромбоцитов. Отмечено, что ранее у этого вида рыб в Иваньковском водохранилище не выявляли инвазии трипаносомами.

Полный текст

Тюлька (Clupeonella cultriventris Nordmann 1840) – один из самых ярких представителей видов-вселенцев в водохранилища р. Волги. Попадая в новые местообитания, в процессе адаптации вид не только занимает определенную экологическую нишу, но и постепенно становится подвергаемым заражению “местными” паразитами. В водохранилищах Верхней Волги тюлька отмечена в уловах с конца XX в.: в Рыбинском водохранилище ‒ в 1994 г., в Иваньковском и Угличском водохранилищах — в 1999 г. (Slynko et al., 2002). По исследованию 1996 г. в Рыбинском водохранилище трипаносомы отмечены только у карповых видов рыб (Колесникова, 1996).

Трипаносомы присутствуют в периферической крови многих видов рыб. Среди пресноводных видов они обнаружены у карповых (Колесникова, 1996; Grybchuk-Ieremenko et al., 2014), окуневых (Gupta N., Gupta D.K., 2012), угреобразных (Zintl et al., 2000), бычковых, щуковых, сиговых, тресковых и сомовых (Жохов, Молодожникова, 2006).

Основные переносчики этого заболевания у пресноводных видов — пиявки и паразитические ракообразные (Фролов и др., 2015). Зрелые трипаносомы поглощают пищу всей поверхностью тела, а токсичные для рыбы продукты обмена выделяют в кровоток хозяина и могут вызывать тяжелые, порой смертельные интоксикации хозяев. Тяжесть заболевания определяется как состоянием организма хозяина, так и условиями среды обитания (Gupta N., Gupta D.K., 2012).

Известно, что трипаносомы вызывают сдвиг физиолого-биохимических показателей, изменения в паренхиматозных органах и жабрах (Osman et al., 2009), снижают выживаемость и темпы роста рыб (Головина и др., 2007; Clauss et al., 2008). Ранее было показано, что у леща из Угличского водохранилища трипаносомы оказали существенное влияние на показатели красной и белой крови, вызывая увеличение индекса обилия лейкоцитов, эозинофилию, лимфопению, увеличение относительного количества незрелых эритроцитов в крови, уменьшение площади зрелых клеток, уровня гемоглобина в крови (Lapirova, Zabotkina, 2018). У тюльки, как вида-вселенца, паразитарную инвазию трипаносомами ранее не отмечали.

Материал для исследования отлавливали мальковым тралом в августе 2019 г. в Иваньковском водохранилище в ходе рейса научно-исследовательского судна “Академик Топчиев”. Для исследования отбирали рыб (20 экз.) в возрасте 1+, 2+ длиной 47‒58 мм и массой 1.1‒2.4 г. Для исследования клеток приготавливали мазки периферической крови. Высушенные на воздухе мазки фиксировали этиловым спиртом и окрашивали краской Романовского–Гимза на фосфатном буфере при pH 7.0. Мазки просматривали под цифровым микроскопом Keyence VHX-1000 с объективом Z-500 и встроенной программой морфометрического анализа. Определяли индекс обилия лейкоцитов, состав лейкоцитов и тромбоцитов, состав эритроцитов и наличие патологических форм эритроцитов, при морфометрии эритроцитов рассчитывали площадь клеток и их ядер, ядерно-цитоплазматическое отношение (ЯЦО), индекс формы клеток (If). Подробно методы исследования лейкоцитов и тромбоцитов описаны ранее (Трофимов и др., 2022). Соотношение различных форм эритроцитов и амитозы рассчитывали как доли при просмотре 500 клеток (%), микроядра ‒ 1000 клеток (‰). Для морфометрических исследований на каждом мазке измеряли по 100 зрелых эритроцитов. Индекс формы эритроцитов рассчитывали как отношение малого и большого диаметра клетки (усл. ед.).

Результаты исследования представляли в виде средних и их ошибок. Статистическую обработку данных проводили при помощи программ пакета Microsoft Office 2010 и STATISTICA с оценкой значимости различий по U-тесту Уилкинсона (p <0.05, p <0.01).

Была поставлена задача провести сравнительное исследование гематологических параметров клеток белой и красной крови у неинвазированной и инвазированной трипаносомами тюльки.

 

Рис. 1. Картина крови инвазированной трипаносомами тюльки. 1 – трипаносома, 2 – незрелый эритроцит, 3 – зре- лый эритроцит, 4 – амитотически делящееся ядро в эритроците тюльки.

 

Результаты исследования показали, что в августе 2019 г. в периферической крови двух особей присутствовали трипаносомы (Trypanosoma sp.) на стадии промастиготы и взрослых особей (рис. 1). Это вызвало существенное изменение показателей клеток красной и белой крови у инвазированных рыб (табл. 1): снижение относительного количества зрелых эритроцитов и тромбоцитов и повышение долей эритробластов и незрелых эритроцитов, незрелых гранулоцитов (двукратное миелоцитов и более чем трехкратное — метамиелоцитов), увеличение индекса обилия лейкоцитов. У инвазированных рыб увеличились доли округлых и голоядерных тромбоцитов, а доля веретеновидных — уменьшилась. Анализ морфометрических данных эритроцитов показал у инвазированных рыб увеличение площади клеток и уменьшение ядерно-цитоплазматического отношения.

 

Таблица 1. Показатели клеток периферической крови тюльки, неинвазированной и инвазированной трипаносомами

Показатели

Неинвазированные

рыбы

Инвазированные

рыбы

Обилие лейкоцитов

(клеток/поле зрения)

2.13 ± 0.76

4.00 ± 0.90*

Лейкоциты, %

Гемоцитобласты

0.71 ± 0.53

6.25 (0.50– 12.00)

Лимфоциты

66.79 ± 11.83

34.00 (30.00– 38.00)*

Моноциты

7.13 ± 4.06

4.00 (3.50– 4.50)

Миелоциты

6.75 ± 2.79

13.00 (11.00– 15.00)*

Метамиелоциты

12.04 ± 5.88

39.00 (25.50– 52.50)*

Нейтрофилы палочкоядерные

5.71 ± 2.59

3.50 (1.50– 5.50)

Нейтрофилы сегментоядерные

0.88 ± 1.00

0.25 (0.00– 0.50)

Тромбоциты, %

Тромбоциты

63.76 ± 9.84

39.88 (36.10–43.66)*

Тромбоциты округлые

20.97 ± 7.10

32.53 (22.58–42.48)

Тромбоциты веретеновидные

51.94 ± 10.55

30.18 (20.35–40.00)**

Тромбоциты голоядерные

27.08 ± 7.30

37.30 (37.17–37.42)**

Эритроциты, %

Эритробласты

0.38 ± 0.16

1.70 ± 0.16*

Незрелые эритроциты

3.68 ± 0.67

11.68 ± 2.57*

Зрелые эритроциты

95.94 ± 0.59

86.63 ± 2.41*

Амитозы

0.28 ± 0.33

1.69 ± 1.54

Микроядра

1.28 ± 1.99

2.01 ± 2.85

Морфометрические показатели эритроцитов

Площадь клеток, мкм2

68.38 ± 7.47

77.74 ± 5.72

Площадь ядер, мкм2

11.35 ± 1.49

10.49 ± 1.24

ЯЦО, усл. ед.

0.20 ± 0.03

0.14 ± 0.04*

Индекс формы, усл. ед.

0.66 ± 0.07

0.62 ± 0.07

Примечание. ЯЦО — ядерно-цитоплазматическое отношение. В скобках приведены минимальные и максимальные значения.

Результаты инвазированных и неинвазированных рыб достоверно отличаются: ** при p <0.01; ** при p <0.05.

 

Ранее было показано, что в водохранилищах р. Волги трипаносомоз — достаточно частая инвазия в крови карповых и окуневых рыб, щуки, сома (Колесникова, 1996; Жохов, Молодожникова, 2006; Кириллов и др., 2018; Lapirova, Zabotkina, 2018). У половозрелых рыб, инвазированных трипаносомами, выявлены анемия, лимфопения и гранулоцитоз, в основном за счет эозинофилии (Lapirova, Zabotkina, 2018; De Sousa et al., 2020), отмечена гибель инвазированной молоди (Головина и др., 2007). Картина крови тюльки при инвазировании ее трипаносомами в целом соответствует таковой у других видов рыб, гранулоцитоз при этом происходит за счет возрастания долей незрелых нейтрофильных гранулоцитов. Н.Т. Ивановой (1983) отмечены псевдобазо- и эозинофилы в крови донской сельди. В нашем исследовании у инвазированных рыб были встречены две клетки, которые обладали оксифильной цитоплазмой, но без характерной для эозинофилов зернистости. Наличие у тюльки одного или более типов гранулоцитов нуждается в уточнении другими методами исследований.

Анализ литературы показал, что трипаносомы — случайные паразиты для этого вида рыб и могут быть примером экзотрансформации жизненного цикла паразитов (Фролов, 2015), хотя пути передачи инфекции не очень понятны. Учитывая распространенность и численность тюльки в водоемах Верхней Волги (Карабанов, 2009), она может представлять дополнительный резервуар для инфекции. В то же время, инвазирование тюлек трипаносомами, что ранее было для них нехарактерно, может свидетельствовать о включении вида в новые пищевые цепочки в водоемах.

Увеличение площади эритроцитов у инфицированных рыб при уменьшении доли зрелых клеток в крови, по-видимому, одна из компенсаторных реакций и способ увеличения переноса кислорода в крови. Ранее у лещей, напротив, было обнаружено уменьшение площади клеток и возрастание ядерно-цитоплазматического отношения (Lapirova, Zabotkina, 2018). Возможно, это связано с длительностью инвазии, ее стадией, возрастом рыб и их физиологическими особенностями.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Заражение тюльки трипаносомами вызывает уменьшение в крови доли зрелых эритроцитов и их ядерно-цитоплазматического отношения, увеличение обилия лейкоцитов и сдвиг соотношения лейкоцитов в сторону лимфопении и гранулоцитоза. По-видимому, как и у других рыб, паразитарная инвазия вызывает анемию у тюльки, изменения лейкоцитарного звена соответствуют таковым, обнаруженным у других видов рыб.

БЛАГОДАРНОСТИ

Авторы выражают благодарность М.И. Базарову и Ю.И. Соломатину (Институт биологии внутренних вод РАН) за помощь в сборе материала.

ФИНАНСИРОВАНИЕ

Работа выполнена в рамках государственного задания г/р № 121050500046-8.

×

Об авторах

Д. Ю. Трофимов

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: dytrof@ibiw.ru
Россия, пос. Борок, Некоузский р-н, Ярославская обл.

Е. А. Заботкина

Институт биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина Российской академии наук

Email: dytrof@ibiw.ru
Россия, пос. Борок, Некоузский р-н, Ярославская обл.

Список литературы

  1. Головина Н.А., Стрелков В.Н., Воронин П.П. и др. 2007. Ихтиопатология. М.: Мир.
  2. Жохов А.Е., Молодожникова Н.М. 2006. Таксономическое разнообразие паразитов рыбообразных и рыб бассейна Волги I. Паразитические простейшие (Protozoa) // Паразитология. Т. 40. № 3. С. 244.
  3. Иванова Н.Т. 1983. Атлас клеток крови рыб. М.: Лег. и пищ. пром-сть
  4. Карабанов Д.П. 2009. Генетико-биохимические адаптации черноморско-каспийской тюльки Clupeonella cultriventris (Nordmann, 1840) при расширении ареала: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Москва. 24 с.
  5. Кириллов А.А., Кириллова Н.Ю., Чихляев И.В. 2018. Паразиты позвоночных животных Самарской области. Тольятти: Полиар.
  6. Колесникова И.Я. 1996. Экология и фауна паразитических простейших рыб Рыбинского и Шекснинского водохранилищ: Автореф. дис. … канд. биол. наук. Борок: Ин-т биологии внутр. вод РАН.
  7. Трофимов Д.Ю., Цельмович О.Л., Заботкина Е.А. 2022. Лейкоциты и тромбоциты периферической крови тюльки черноморско-каспийской (Clupeonella cultriventris Nordmann, 1840) Иваньковского и Угличского водохранилищ // Тр. Ин-та биологии внутр. вод им. И.Д. Папанина РАН. № 100(103). С. 17. https://doi.org/.org/47021/0320-3557-2022-17-34
  8. Фролов А.О., Малышева М.Н., Костыгов А.Ю. 2015. Трансформации жизненных циклов в эволюционной истории трипаносоматид. Макротрансформации // Паразитология. Т. 49. № 4. С. 233.
  9. Clauss T.M., Dove A.D.M., Arnold J.E. 2008. Hematologic disorders of fish // Veterinary clinics of North America: exotic animal practice. V. 11. № 3. P. 445. https://doi.org/.org/10.1016/j.cvex.2008.03.007
  10. De Souza W., Barrias E.S. 2020. May the epimastigote form of Trypanosoma cruzi be infective? // Acta Tropica. V. 212. P. 105688. https://doi.org/.org/10.1016/j.actatropica.2020.105688
  11. Grybchuk-Ieremenko A., Losev A., Kostygov A.Y. et al. 2014. High prevalence of trypanosome co-infections in freshwater fishes // Folia Parasitologica. V. 61. № 6. P. 495. https://doi.org/.org/10.14411/fp.2014.064
  12. Gupta N., Gupta D.K. 2012. Erythropenia in piscine trypanosomiasis // Trends Parasitol. Res. V. 1. № 1. P. 1.
  13. Lapirova T.B., Zabotkina E.A. 2018. Effect of trypanosomiasis on hematologic characteristics of bream (Abramis brama) // Regul. Mechanism Biosyst. V. 9. №. 3. P. 309. https://doi.org/.org/10.15421/021845
  14. Osman H.A.M., Fadel N.G., Ali A.T. 2009. Biochemical and histopathological alterations in catfish, Clarias gariepinus, infected with trypanosomiasis with special reference to immunization // Egypt J. ComP. Pathol. Clinical Pathol. V. 22. P. 164.
  15. Slynko Yu.V., Korneva L.G., Rivier I.K. et al. 2002. The Caspian-Volga-Baltic invasion corridor // Invasive aquatic species of Europe. Distribution, impacts and management. P. 399. https://doi.org/.org/10.1007/978-94-015-9956-6_40
  16. Zintl A., Voorheis H.P., Holland C.V. 2000. Experimental infections of farmed eels with different Trypanosoma granulosum life-cycle stages and investigation of pleomorphism // J. Parasitol. V. 86. № 1. P. 56. https://doi.org/.org/10.2307/3284908

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Картина крови инвазированной трипаносомами тюльки. 1 – трипаносома, 2 – незрелый эритроцит, 3 – зрелый эритроцит, 4 – амитотически делящееся ядро в эритроците тюльки.

Скачать (320KB)

© Российская академия наук, 2024

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).