Спектр значимых сывороточных биомолекул и генетических предикторов в антенатальной диагностике патологической инвазии плаценты

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Актуальность: Патологическая инвазия плаценты (PAS) представляет серьезную опасность для жизни матери и плода. Несвоевременная диагностика PAS и возникающая в результате задержка в лечении может быть одной из ключевых причин серьезных неблагоприятных исходов беременности. В последних публикациях все больше внимания уделяется различным биомолекулам, которые обладают потенциалом для своевременной диагностики PAS.

Цель: Сравнительная оценка эффективности использования различных молекулярно-биологических маркеров в антенатальной диагностике патологической инвазии плаценты.

Материалы и методы: По ключевым словам «патологическая инвазия плаценты», «врастание плаценты», «placenta accreta spectrum», «биомаркеры», «антенатальная диагностика», «эпителиально-мезенхимальный переход», «биомолекулы» проведен анализ отечественных и зарубежных литературных баз данных: eLibrary, Medline, PubMed, Embase, Crossref, РИНЦ. В соответствии с поставленной целью было отобрано для анализа 68 источников литературы.

Результаты: Результатом поиска явилось сравнительное описание представленных в данном обзоре значимых биомаркеров патологической инвазии плаценты и их динамическое изменение в различные сроки гестации.

Биомолекулы, участвующие в патогенезе патологической инвазии плаценты, условно можно разделить на несколько групп. Это факторы роста, интерлейкины, сигнальные молекулы, продукты оксидативного стресса, микро-РНК, ДНК, циркулирующие клетки. Их содержание в биологических жидкостях и плаценте отражает активность патофизиологических процессов, участвующих в формировании патологической инвазии плаценты.

Заключение: Исследование спектра и концентрации биомаркеров патологической инвазии плаценты может способствовать антенатальному подтверждению диагноза и степени тяжести данной патологии и иметь решающее значение для улучшения материнских и перинатальных исходов.

Об авторах

Алена Владимировна Каюмова

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт охраны материнства и младенчества» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Автор, ответственный за переписку.
Email: kaum-doc@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2685-4285

к.м.н., в.н.с., заместитель главного врача по контролю качества и безопасности медицинской деятельности, НИИ ОММ Минздрава России

Россия, Екатеринбург

Оксана Александровна Мелкозерова

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт охраны материнства и младенчества» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: abolmed1@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-4090-0578

д.м.н., заместитель директора по научной работе, НИИ ОММ Минздрава России

Россия, Екатеринбург

Надежда Васильевна Башмакова

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт охраны материнства и младенчества» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: bashmakovanv@niiomm.ru
ORCID iD: 0000-0001-5746-316X

д.м.н., профессор, Главный н.с., НИИ ОММ Минздрава России

Россия, Екатеринбург

Галина Борисовна Мальгина

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт охраны материнства и младенчества» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: galinamalgina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5500-6296

д.м.н., профессор, директор, НИИ ОММ Минздрава России

Россия, Екатеринбург

Гузель Нуховна Чистякова

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт охраны материнства и младенчества» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: guzel@niiomm.ru
ORCID iD: 0000-0002-0852-6766

д.м.н., профессор, руководитель научного отделения иммунологии и микробиологии, НИИ ОММ Минздрава России

Россия, Екатеринбург

Татьяна Борисовна Третьякова

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт охраны материнства и младенчества» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: TBTretyakova@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-5715-7514

к.м.н., доцент, с.н.с. группы генетических исследований отделения биохимических методов исследования, врач лабораторный генетик, НИИ ОММ Минздрава России

Россия, Екатеринбург

Анастасия Александровна Гришкина

ФГБУ «Уральский научно-исследовательский институт охраны материнства и младенчества» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: xumukyc.ru@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7433-2217

к.м.н., с.н.с. отделения иммунологии, клинической микробиологии, патоморфологии и цитодиагностики, врач-патологоанатом, НИИ ОММ Минздрава России

Россия, Екатеринбург

Список литературы

  1. Jauniaux E., Ayres-de-Campos D.; FIGO Placenta Accreta Diagnosis and Management Expert Consensus Panel. FIGO consensus guidelines on placenta accrete spectrum disorders: Introduction. Int. J. Gynaecol. Obstet. 2018; 140(3):261-4. https://dx.doi.org/10.1002/ijgo.12406.
  2. Jauniaux E., Bunce C., Gronbeck L., Langhoff-Roos J. Prevalence and main outcomes of placenta accreta spectrum: a systematic review and meta-analysis. Am. J. Obstet. Gynecol. 2019; 221(3): 208-18. https://dx.doi.org/10.1016/ j.ajog.2019.01.233.
  3. Ali H., Chandraharan E. Etiopathogenesis and risk factors for placental accrete spectrum disorders. Best. Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. 2021; 72: 4-12. https://dx.doi.org/10.1016/j.bpobgyn.2020.07.006.
  4. Jauniaux E., Bhide A., Kennedy A., Woodward P., Hubinont C., Collins S. FIGO consensus guidelines on placeta accreta spectrum disorders: prenatal diagnosis and screening, Int. J. Gynaecol Obstet. 2018; 140(3): 274-80. https://dx.doi.org/ 10.1002/ijgo.12408.
  5. Tinari S., Buca D., Cali G., Timor-Tritsch I., Palacios-Jaraquemada J., Rizzo G. et al. Risk factors, histopathology and diagnostic accuracy in posterior placenta accreta spectrum disorders: systematic review and meta-analysis. Ultrasound Obstet. Gynecol. 2021; 57(6): 903-9. https://dx.doi.org/10.1002/ uog.22183.
  6. Scott A., Robert M., Anna M., Michele R., Jonathan L., Saira S. et al. Placenta accreta spectrum: biomarker discovery using plasma proteomics. Am. J. Obstet. Gynecol. 2020; 223(3): 433.e1-433.e14. https://dx.doi.org/10.1016/ j.ajog.2020.03.019.
  7. Guo Z., Yang H., Ma J. Maternal circulating biomarkers associated with placenta accreta spectrum disorders. Chin. Med. J. (Engl). 2023; 136(8): 995-7. https://dx.doi.org/10.1097/CM9.0000000000002241.
  8. Tianyue Z., Shaowei W. Potential serum biomarkers in prenatal diagnosis of placenta accreta spectrum. Front Med. (Lausanne). 2022; 3: 860186. https://dx.doi.org/10.3389/fmed.2022.860186.
  9. Al-Khan A., Youssef Y., Feldman K. Illsley N., Remache Y., Alvarez-Perezet J. et al. Biomarkers of abnormally invasive placenta. Placenta. 2020; 91: 37-42. https://dx.doi.org/10.10.1016/j.placenta.2020.01.007.
  10. Krstic J., Deutsch A., Fuchs J. Gauster M., Gorsek Sparovec T., Hiden U. et al. (Dis)Similarities between the decidual and tumor microenvironment. Biomedicines. 2022; 10(5): 1065. https://dx.doi.org/10.3390/biomedicines10051065.
  11. Pekar-Zlotin M., Melcer Y., Maymon R. Jauniaux E. Second-trimester levels of fetoplacental hormones among women with placenta accreta spectrum disorders. J. Gynaecol. Obstet. 2018; 140(3): 377-8. https://dx.doi.org/10.1002/ijgo.12352.
  12. Fyala E.A. Value of measurement of maternal serum alpha fetoprotien in diagnosis of pathologically adherent placenta in cases of placenta pravia. The Egyptian Journal of Fertility and Sterility. 2018; 22(2): 25-31. https://dx.doi.org/10.21608/egyfs.2018.65838.
  13. Berezowsky A., Pardo J., Ben-Zion M., Wiznitzer A., Aviram A. Second trimester biochemical markers as possible predictors of pathological placentation: a retrospective case-control study. Fetal Diagn. Ther. 2019; 46(3): 187-92. https://dx.doi.org/10.1159/000492829.
  14. Morlando M., Collins S. Placenta accreta spectrum disorders: challenges, risks, and management strategies. Int. J. Womens Health. 2020; 12: 1033-45. https://dx.doi.org/10.2147/IJWH.S224191.
  15. Arcade A., Li Z., Jianwen Z. Placenta accreta spectrum diagnosis challenges and controversies in current obstetrics: a review. Int. J. Womens Health. 2023; 15: 635-54. https://dx.doi.org/10.2147/IJWH.S395271.
  16. Uldbjerg C.S., Lim Y.H., Glazer C.H., Hauser R., Juul A., Bräuner E.V. Maternal serum α-fetoprotein levels during pregnancy and testicular cancer in male offspring: a cohort study within a Danish pregnancy screening registry. Int. J. Environ Res. Public. Health. 2022; 19(21): 14112. https://dx.doi.org/10.3390/ ijerph192114112.
  17. Aboughalia H., Bastawrous S., Revzin M.V., Delaney S.S., Katz D.S., Moshiri M. Imaging findings in association with altered maternal alpha-fetoprotein levels during pregnancy. Abdominal. Radiol. 2020; 45(10): 3239-57. https://dx.doi.org/10.1007/s00261-020-02499-2.
  18. Zhang T., Wang S. Potential serum biomarkers in prenatal diagnosis of placenta accreta spectrum. Front Med. 2022; 9: 860186. https://dx.doi.org/10.3389/ fmed.2022.860186.
  19. Penzhoyan G.A., Makukhina T.B. Significance of the routine first-trimester antenatal screening program for aneuploidy in the assessment of the risk of placenta accreta spectrum disorders. J. Perinat. Med. 2019; 48(1): 21-6. https://dx.doi.org/10.1515/jpm-2019-0261.
  20. Wang F., Chen S., Wang J., Wang Y., Ruan F., Shu H. et al. First trimester serum PAPP-A is associated with placenta accreta: a retrospective study. Arch. Gynecol. Obstet. 2021; 303(3): 645-52. https://dx.doi.org/10.1007/ s00404-020-05960-1.
  21. Bartels H.С., Postle J.D., Downey P., Brennan D.J. Placenta accreta spectrum: a review of pathology, molecular biology, and biomarkers. Dis. Markers. 2018; 2018: 1507674. https://dx.doi.org/10.1155/2018/1507674.
  22. Ophir E., Tendler R., Odeh M., Khouri S., Oettinger M. Creatine kinase as a biochemical marker in diagnosis of placenta increta and percreta. Am. J. Obstet. Gynecol. 1999; 180(4): 1039-40. https://dx.doi.org/10.1016/ S0002-9378(99)70683-6.
  23. Ersoy A.O., Oztas E., Ozler S., Ersoy E., Erkenekli K., Uyguret D. et al. Can venous ProBNP levels predict placenta accreta? J. Matern. Fetal Neonatal. Med. 2016; 29(24): 4020-4. https://dx.doi.org/10.3109/ 14767058.2016.1152576.
  24. Fayed M., Mourad A., Mahmoud M., Mohamed A. Role of Doppler ultrasound and creatine kinase as a biochemical marker in diagnosis of placenta accreta. J. Benha. J. Appl. Sci. 2020; 5(1): 1-7. https://dx.doi.org/1010.21608/bjas.2020.135124.
  25. Illsley N.P., Dasilva-Arnold S.C., Zamudio S., Alvarez M., Al-Khan A. Trophoblast invasion: lessons from abnormally invasive placenta (placenta accreta). Placenta 2020; 102: 61-6. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2020.01.004.
  26. Araujo Júnior E., Zamarian A.C., Caetano A.C., Peixoto A.B., Nardozza L.M. Physiopathology of late-onset fetal growth restriction. Minerva Obstet. Gynecol. 2021; 73(4): 392-408. https://dx.doi.org/10.23736/S2724-606X.21.04771-7
  27. Umapathy A., Chamley L.W, James J.L. Reconciling the distinct roles of angiogenic/anti-angiogenic factors in the placenta and maternal circulation of normal and pathological pregnancies. Angiogenesis. 2020; 23(2): 105-17. https://dx.doi.org/10.1007/s10456-019-09694-w.
  28. Geindreau M., Ghiringhelli F., Bruchard M. Vascular endothelial growth factor, a key modulator of the anti-tumor immune response. Int. J. Mol. Sci. 2021; 22(9): 4871. https://dx.doi.org/10.3390/ijms22094871.
  29. Wang F., Zhang L., Zhang F. Wang J., Wang Y., Man D. First trimester serum PIGF is associated with placenta accreta. Placenta. 2020; 101: 39-44. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2020.08.023.
  30. Faraji A., Akbarzadeh-Jahromi M., Bahrami S., Gharamani S., Raeisi Shahraki H., Kasraeian M. at al. Predictive value of vascular endothelial growth factor and placenta growth factor for placenta accreta spectrum. J. Obstet. Gynaecol. 2022; 42(5): 900-5. https://dx.doi.org/10.1080/01443615.2021.1955337.
  31. Zhang F., Gu M., Chen P., Wan S., Zhou Q., Lu Y. et al. Distinguishing placenta accreta from placenta previa via maternal plasma levels of SFlt-1 and PLGF and the SFlt-1/PLGF Ratio. Placenta 2022; 124: 48-54. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2022.05.009.
  32. Макухина Т.Б., Пенжоян Г.А., Морозова Р.В., Задорная О.И., Донцова М.В., Кривоносова Н.В., Амирханян А.М. Роль факторов ангиогенеза в патогенезе врастания плаценты у женщин с предлежанием плаценты. Акушерство и гинекология. 2022; 9: 42-53. [Makukhina T.B., Penzhoyan G.A., Morozova R.V., Zadornaya O.I., Dontsova M.V., Krivonosova N.V., Amirkhanyan A.M. The role of angiogenic factors in the pathogenesis of placenta accreta spectrum in women with placenta previa. Obstetrics and Gynecology. 2022; (9): 42-53. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.9.42-53.
  33. Годзоева А.О., Зазерская И.Е., Васильева Е.Ю., Мащенко И.А., Яковлева Н.Ю., Ли О.А. Прогностическая значимость sFlt-1 и PIGF в диагностике глубокой инвазии плаценты. Журнал акушерства и женских болезней. 2022; 71(2): 39-48. [Godzoeva A.O., Zazerskaya I.E., Vasilyeva E.Y., Mashchenko I.A., Yakovleva N.Y., Li O.A. Prognostic value of sFlt-1 and PlGF in the diagnosis of abnormally deep placental invasion. Journal of Obstetrics and Women's Diseases. 2022; 71(2): 39-48. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.17816/JOWD88697.
  34. Wang N., Shi D., Li N., Qi H. Clinical value of serum VEGF and SFlt-1 in pernicious placenta previa. Ann. Med. 2021; 53(1): 2041-9. https://dx.doi.org/10.1080/07853890.2021.1999492.
  35. Johns L.E., Ferguson K.K., Cantonwine D.E., Mukherjee B., Meeker J.D., McElrath T.F. Subclinical changes in maternal thyroid function parameters in pregnancy and fetal growth. J. Clin. Endocrinol Metab. 2018; 103(4): 1349-58. https://dx.doi.org/10.1210/jc.2017-01698.
  36. Ozler S., Oztas E., Kebapcilar A., Caglar A.T. The role of thyroid-stimulating hormone and thyroglobulin antibody in abnormally invasive placenta. J. Matern. Fetal Neonatal. Med. 2022; 35(25): 5108-16. https://dx.doi.org/10.1080/ 14767058.2021.1875430.
  37. Milani A., Khadem-Ansari M., Rasmi Y. Effects of thyroid-stimulating hormone on adhesion molecules and pro-inflammatory cytokines secretion in human umbilical vein endothelial cells. Res. Pharm. Sci. 2018; 13(6): 546-56. https://dx.doi.org/10.4103/1735-5362.245966.
  38. Na T.Y., Schecterson L., Mendonsa A.M., Gumbiner B.M. The functional activity of E-Cadherin controls tumor cell metastasis at multiple steps. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2020; 117(11): 5931-7. https://dx.doi.org/10.1073/ pnas.1918167117.
  39. Incebiyik A., Kocarslan S., Camuzcuoglu A., Hilali N., Incebiyik H., Camuzcuoglu H. Trophoblastic E-Cadherin and TGF-Beta expression in placenta percreta and normal pregnancies. J. Matern. Fetal Nejnatal Med. 2016; 29(1): 126-9. https://dx.doi.org/10.3109/14767058.2014.989203.
  40. El-Hussieny M., Mohammed E.M, Zenhom N.M., Refaie M.M., Okasha A.M., Tawab M.A.E. Possible role of TGF-B1, MMP-2, E-CAD, β-Catenin and antioxidants in pathogenesis of placenta accreta. Fetal. Pediatr. Pathol. 2021; 40(3): 222-32. https://dx.doi.org/10.1080/ 15513815.2020.1843574.
  41. Timofeeva A.V., Fedorov I.S., Pirogova M.M., Vasilchenko O.N., Chagovets V.V., Ezhovaet L.S. et al. Clusterin and its potential regulatory microRNAs as a part of secretome for the diagnosis of abnormally invasive placenta: accreta, increta, and percreta cases. Life. 2021; 11(4): 270. https://dx.doi.org/10.3390/life11040270.
  42. Soyama H., Miyamoto M., Ishibashi H., Iwahashi H., Matsuura H., Kakimotoet S. et al. Placenta previa may acquire invasive nature by factors associated with epithelial-mesenchymal transition and matrix metalloproteinases. J. Obstet. Gynaecol. Res. 2020; 2526-33. https://dx.doi.org/10.1111/ jog.14485.
  43. DaSilva-Arnold S.C., Kuo C.Y., Davra V., Remache Y., Kim P.С.W., Fisheret J.P. et al. ZEB2, a master regulator of the epithelial–mesenchymal transition, mediates trophoblast differentiation. MHR Basic Sci. Reprod. Med. 2019; 25(2): 61-75. https://dx.doi.org/10.1093/molehr/gay053.
  44. Li N., Yang T., Yu W., Liu H., Qiao C., Liuet C. et al. The role of Zeb1 in the pathogenesis of morbidly adherent placenta. Mol. Med. Rep. 2019; 20(3): 2812-22. https://dx.doi.org/10.3892/mmr.2019.10490.
  45. Gong H., Lu F., Zeng X., Bai Q. E2F Transcription factor 1 (E2F1) enhances the proliferation, invasion and EMT of trophoblast cells by binding to Zinc Finger E-Box Binding Homeobox 1 (ZEB1). Bioengineered. 2022; 13(2): 2360-70. https://dx.doi.org/10.1080/21655979.2021.2023793.
  46. Fu T., Liu J.Х., Xie J., Gao Z., Yang Z. LAMC2 as a prognostic biomarker in human cancer: a systematic review and meta-analysis. BMJ. 2022; 12(11): e063682. https://dx.doi.org/10.1136/bmjopen-2022-063682.
  47. Sung H., Ferlay J., Siegel R.L, Laversanne M., Soerjomataram I., Jemalet A. et al. Global cancer statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer. J. Clin. 2021; 71(3): 209-49. https://dx.doi.org/10.3322/caac.21660.
  48. Wang R., Liu W., Zhao J., Li Liu 1, Li S., Duanet Y. et al. Overexpressed LAMC2 promotes trophoblast over-Invasion through the PI3K/Akt/MMP2/9 pathway in placenta accreta spectrum. J. Obstet. Gynaecol. Res. 2023; 49(2): 548-59. https://dx.doi.org/10.1111/jog.15493.
  49. Demir-Weusten A.Y., Seval Y., Kaufmann P., Demir R., Yucel G., Huppertz B. Matrix metalloproteinases-2, -3 and -9 in human term placenta. Acta Histochem. 2007; 109(5): 403-12. https://dx.doi.org/10.1016/ j.acthis.2007.04.001.
  50. Anthony C.C., Robbins R.J., Ahmed Y., Lee E. Nuclear |regulation of Wnt/β-Catenin Signaling: It’s a complex situation. Genes. 2020; 4; 11(8): 886. https://dx.doi.org/10.3390/genes11080886.
  51. Han Q., Zheng L., Liu Z., Luo J., Chen R., Yan J. Expression of β-catenin in human trophoblast and its role in placenta accreta and placenta previa. J. Int. Med. Res. 2019; 47(1): 206-14. https://dx.doi.org/10.1177/ 0300060518799265.
  52. Liu C., Wang J., Zheng Y., Zhu Y., Zhou Z., Liu Z. et al. Autocrine pro-legumain promotes breast cancer metastasis via binding to Integrin Avβ3. Oncogene. 2022; 41(34): 4091-103. https://dx.doi.org/10.1038/s41388-022-02409-4.
  53. Cheng T., Chang W.J., Chu H.Y., Luca R., Pedersen J.Z., Incerpi S. et al. Nano-strategies targeting the integrin Avβ3 Network for cancer therapy. Cells. 2021; 10(7): 1684. https://dx.doi.org/10.3390/cells10071684.
  54. Weitzner O., Seraya-Bareket C., Biron-Shental T., Fishamn A., Yagur Y., Tzadikevitch-Geffen K. et al. Enhanced expression of AVβ3 Integrin in villus and extravillous trophoblasts of placenta accreta. Arch. Gynecol. Obstet. 2021; 303(5): 1175-83. https://dx.doi.org/10.1007/s00404-020-05844-4.
  55. Khamoushi T., Ahmadi M., Ali-Hassanzadeh M., Zare M., Hesampour F., Gharesi-Fard B. et al. Evaluation of transforming growth factor-B1 and interleukin-35 serum levels in patients with placenta accreta. Lab. Med. 2021; 52(3): 245-9. https://dx.doi.org/10.1093/labmed/lmaa071.
  56. Ozler S., Oztas E., Guler B.G., Caglar A.T. Increased levels of serum IL-33 is associated with adverse maternal outcomes in placenta previa accreta. J. Matern. Fetal. Neonatal. Med. 2021; 34(19): 3192-9. https://dx.doi.org/10.1080/ 14767058.2019.1679766.
  57. Lombardelli L., Logiodice F., Kullolli O., Haller H., Agostinis C., Bulla R. et al. At embryo implantation site IL-35 secreted by trophoblast, polarizing T cells towards IL-35+ IL-10+ IL-4+ Th2-Type cells, could favour fetal allograft tolerance and pregnancy success. Int. J. Mol. Sci. 2022; 23(9): 4926. https://dx.doi.org/10.3390/ijms23094926.
  58. Chen H.Y., Zhou Z.Y., Luo Y.L., Luo Q., Fan J.T., Fan J. Knockdown of YKL-40 inhibits angiogenesis through regulation of VEGF/VEGFR2 and ERK1/2 signaling in endometrial cancer. Cell. Biology. International. 2021; 45(12): 2557-66. https://dx.doi.org/10.1002/cbin.11699.
  59. Liu W., Wang R., Liu S., Yin X., Huo Y., Zhang R., Li J. YKL-40 promotes proliferation and invasion of HTR-8/SVneo cells by activating akt/MMP9 signalling in placenta accreta spectrum disorders. J. Obstet. Gynaecol. 2023; 43(1): 2211681. https://dx.doi.org/10.1080/01443615.2023.2211681.
  60. Bayramoğlu Tepe N., Bayramoglu D., Taşkum İ. Elevated serum YKL-40 levels as a diagnostic and prognostic marker in the placenta accreta spectrum. Turk. J. Obstet. Gynecol. 2022; 19(2): 98-103. https://dx.doi.org/10.4274/ tjod.galenos.2022.94884.
  61. Afshar Y., Dong J., Zhao P., Li L., Wang S., Zhang R.Y. et al. Circulating trophoblast cell clusters for early detection of placenta accreta spectrum disorders. Nat. Commun. 2021; 12: 4408. https://dx.doi.org/10.1038/ s41467-021-24627-2.
  62. Chen B., Wang D., Bian Y., Li J., Yang T., Li N. et al. Systematic identification of hub genes in placenta accreta spectrum based on integrated transcriptomic and proteomic analysis. Front Genet. 2020; 11: 551495. https://dx.doi.org/10.3389/fgene.2020.551495.
  63. Yang T., Li N., Hou R., Qiao C., Liu C. Development and validation of a four-microRNA signature for placenta accreta spectrum: an integrated competing endogenous RNA network analysis. Ann. Transl. Med. 2020; 8(15): 919. https://dx.doi.org/10.21037/atm-20-1150.
  64. Chen S., Pang D., Li Y., Zhou J., Liu Y., Yang S. et al. Serum miRNA biomarker discovery for placenta accreta spectrum. Placenta. 2020; 101: 215-20. https://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2020.09.068.
  65. Uyanikoglu H., Sak M.E., Tatli F., Hilali N.G., Sak S., Incebiyik A. et al. Serum ischemia modified albumin level and its relationship with the thiol/disulfide balance in placenta percreta patients. J. Obstet. Gynaecol. 2018;38(8): 1073-7. https://dx.doi.org/10.1080/01443615.2018.1450369.
  66. Виницкий А.А., Шмаков Р.Г. Современные представления об этиопатогенезе врастания плаценты и перспективы его прогнозирования молекулярными методами диагностики. Акушерство и гинекология. 2017; 2: 5-10. [Vinitskiy A.A., Shmakov R.G. The modern concepts of etiology and pathogenesis placenta accreta and prospects of its prediction by molecular diagnostics. Obstetrics and Gynecology. 2017; (2): 5-10. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2017.2.5-10.
  67. Лисицына О.И., Низяева Н.В., Михеева А.А. Врастание плаценты. Эволюция знаний и умений. Акушерство и гинекология. 2021; 6: 34-40. [Lisitsyna O.I., Nizyaeva N.V., Mikheeva A.A. Placenta increta: Evolution of knowledge and skills. Obstetrics and Gynecology. 2021; (6): 34-40. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2021.6.34-40.
  68. Каюмова А.В., Мелкозерова О.А., Башмакова Н.В., Мальгина Г.Б., Косовцова Н.В. Современные инструментальные методы диагностики патологической инвазии плаценты. Акушерство и гинекология. 2023; 6: 5-14. [Kayumova A.V., Melkozerova O.A., Bashmakova N.V., Malgina G.B., Kosovtsova N.V. Modern instrumental methods for the diagnosis of placental pathological invasion. Obstetrics and Gynecology. 2023; (6): 5-14. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2023.57.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».