Роль микробиоты полости матки в генезе полипов эндометрия

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Полипы эндометрия (ПЭ) являются разновидностью доброкачественной внутриматочной патологии. Этиология возникновения ПЭ до конца неизвестна. Одним из возможных факторов развития ПЭ является нарушение микробиоты полости матки. Рядом научных исследований было доказано, что микробиота эндометрия не является полным продолжением микробиоты влагалища и шейки матки и обладает своим собственным, уникальным микробным составом. Данная концепция позволила опровергнуть нулевую гипотезу «стерильной» полости матки. Было предложено выделять микробиоту эндометрия с доминированием бактерий Lactobacillus (≥90%) и микробиоту с недостатком бактерий Lactobacillus (<90%). Согласно литературным данным, при различных видах доброкачественной внутриматочной патологии отмечено изменение микробиологического состава эндометрия. При ПЭ микробиота полости матки включает анаэробные и аэробные бактерии. Ранее считалось, что ПЭ являются проявлением хронического эндометрита (ХЭ) вследствие реактивной пролиферации эндометрия при длительной механической стимуляции или воздействии биологических факторов воспаления. На сегодняшний день существуют данные о различии состава микробиоты эндометрия у пациенток с ПЭ в сочетании с ХЭ и без.

Заключение: Дальнейшее изучение микробиоты эндометрия может предоставить новые возможности для дальнейшего совершенствования диагностики и стратегий лечения ПЭ и ХЭ.

Об авторах

Ангелина Игоревна Ванакова

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)

Автор, ответственный за переписку.
Email: angelinavanakova@gmail.com
ORCID iD: 0009-0007-8048-1682

аспирант кафедры акушерства, гинекологии, перинатологии и репродуктологии ИПО

Россия, 119991, Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Наталия Витальевна Долгушина

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: n_dolgushina@oparina4.ru
ORCID iD: 0000-0003-1116-138X

доктор медицинских наук, профессор, заместитель директора по научной работе

Россия, 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Татьяна Валерьевна Припутневич

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: priput1@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4126-9730

чл.-корр. РАН, доктор медицинских наук, директор института микробиологии, антимикробной терапии и эпидемиологии

Россия, 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4

Список литературы

  1. Nijkang N.P., Anderson L., Markham R., Manconi F. Endometrial polyps: pathogenesis, sequelae and treatment. SAGE Open Med. 2019; 7: 2050312119848247. https://dx.doi.org/10.1177/2050312119848247.
  2. Fatemi H.M., Kasius J.C., Timmermans A., van Disseldorp J., Fauser B.C., Devroey P., Broekmans F.J. Prevalence of unsuspected uterine cavity abnormalities diagnosed by office hysteroscopy prior to in vitro fertilization. Hum. Reprod. 2010; 25(8): 1959-65. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deq150.
  3. Paradisi R., Rossi S., Scifo M.C., Dall'O' F., Battaglia C., Venturoli S. Recurrence of endometrial polyps. Gynecol. Obstet. Invest. 2014; 78(1): 26-32. https://dx.doi.org/ 10.1159/000362646.
  4. AlHilli M.M., Nixon K.E., Hopkins M.R., Weaver A.L., Laughlin-Tommaso S.K., Famuyide A.O. Long-term outcomes after intrauterine morcellation vs hysteroscopic resection of endometrial polyps. J. Minim. Invasive. Gynecol. 2013; 20(2): 215-21. https://dx.doi.org /10.1016/j.jmig.2012.10.013.
  5. Yang J.H., Chen C.D., Chen S.U., Yang Y.S., Chen M.J. Factors influencing the recurrence potential of benign endometrial polyps after hysteroscopic polypectomy. PLoS One. 2015; 10(12): e0144857. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0144857.
  6. Clark T.J., Stevenson H. Endometrial polyps and abnormal uterine bleeding (AUB-P): What is the relationship, how are they diagnosed and how are they treated? Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. 2017; 40: 89-104. https://dx.doi.org/10.1016/j.bpobgyn.2016.09.005.
  7. Di Spiezio Sardo A., Di Carlo C., Minozzi S., Spinelli M., Pistotti V., Alviggi C. et al. Efficacy of hysteroscopy in improving reproductive outcomes of infertile couples: a systematic review and meta-analysis. Hum. Reprod. Update. 2016; 22(4): 479-96. https://dx.doi.org/ 10.1093/humupd/dmw008.
  8. Cicinelli E., Bettocchi S., de Ziegler D., Loizzi V., Cormio G., Marinaccio M. et al. Chronic endometritis, a common disease hidden behind endometrial polyps in premenopausal women: first evidence from a case-control study. J. Minim. Invasive Gynecol. 2019; 26(7): 1346-50. https://dx.doi.org/10.1016/ j.jmig.2019.01.012.
  9. Indraccolo U., Di Iorio R., Matteo M., Corona G., Greco P., Indraccolo S.R. The pathogenesis of endometrial polyps: a systematic semi-quantitative review. Eur. J. Gynaecol. Oncol. 2013; 34(1): 5-22.
  10. Ansbacher R., Boyson W.A., Morris J.A. Sterility of the uterine cavity. Am. J. Obstet. Gynecol. 1967; 99(3): 394-6. https://dx.doi.org/10.1016/ s0002-9378(16)34549-5.
  11. Mitchell C.M., Haick A., Nkwopara E., Garcia R., Rendi M., Agnew K., Fredricks D.N., Eschenbach D. Colonization of the upper genital tract by vaginal bacterial species in nonpregnant women. Am. J. Obstet. Gynecol. 2015; 212(5): 611.e1-9. https://dx.doi.org /10.1016/j.ajog.2014.11.043.
  12. Verstraelen H., Vilchez-Vargas R., Desimpel F., Jauregui R., Vankeirsbilck N., Weyers S. et al. Characterisation of the human uterine microbiome in non-pregnant women through deep sequencing of the V1-2 region of the 16S rRNA gene. PeerJ. 2016; 4: e1602. .https://dx.doi.org/10.7717/peerj.1602.
  13. Giudice L.C. Challenging dogma: the endometrium has a microbiome with functional consequences! Am. J. Obstet. Gynecol. 2016; 215(6): 682-3. https://dx.doi.org/ 10.1016/j.ajog.2016.09.085.
  14. Chen C., Song X., Wei W., Zhong H., Dai J., Lan Z. et al. The microbiota continuum along the female reproductive tract and its relation to uterine-related diseases. Nat. Commun. 2017; 8(1): 875. https://dx.doi.org/10.1038/ s41467-017-00901-0.
  15. Miles S.M., Hardy B.L., Merrell D.S. Investigation of the microbiota of the reproductive tract in women undergoing a total hysterectomy and bilateral salpingo-oopherectomy. Fertil. Steril. 2017; 107(3): 813-20. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2016.11.028.
  16. Koedooder R., Mackens S., Budding A., Fares D., Blockeel C., Laven J., Schoenmakers S. Identification and evaluation of the microbiome in the female and male reproductive tracts. Hum. Reprod. Update. 2019; 25(3): 298-325. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmy048.
  17. Zhu N., Yang X., Liu Q., Chen Y., Wang X., Li H., Gao H. "Iron triangle" of regulating the uterine microecology: endometrial microbiota, immunity and endometrium. Front. Immunol. 2022; 9:(13): 928475. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2022.928475.
  18. Кебурия Л.К., Смольникова В.Ю., Припутневич Т.В., Муравьева В.В. Микробиота полости матки и ее влияние на репродуктивные исходы. Акушерство и гинекология. 2019; 2: 22-7. [Keburiya L.K., Smolnikova V.Yu., Priputnevich T.V., Muravieva V.V. Uterine microbiota and its effect on reproductive outcomes. Obstetrics and Gynecology. 2019; (2): 22-7. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2019.2.22-27.
  19. Peterson J., Garges S., Giovanni M., McInnes P., Wang L., Schloss J.A. et al. The NIH Human Microbiome Project. Genome Res. 2009; 19(12): 2317-23. https://dx.doi.org/10.1101/gr.096651.109.
  20. Cicinelli E., De Ziegler D., Nicoletti R., Tinelli R., Saliani N., Resta L. et al. Poor reliability of vaginal and endocervical cultures for evaluating microbiology of endometrial cavity in women with chronic endometritis. Gynecol. Obstet. Invest. 2009; 68(2): 108-15. https://dx.doi.org/10.1159/000223819.
  21. Kitaya K., Matsubayashi H., Yamaguchi K., Nishiyama R., Takaya Y., Ishikawa T. et al. Chronic Endometritis: potential cause of infertility and obstetric and neonatal complications. Am. J. Reprod. Immunol. 2016; 75(1): 13-22. https://dx.doi.org/10.1111/aji.12438.
  22. Liang J., Li M., Zhang L., Yang Y., Jin X., Zhang Q. et al. Analysis of the microbiota composition in the genital tract of infertile patients with chronic endometritis or endometrial polyps. Front. Cell Infect. Microbiol. 2023; 22(13): 1125640. https://dx.doi.org/ 10.3389/fcimb.2023.1125640.
  23. Riganelli L., Iebba V., Piccioni M., Illuminati I., Bonfiglio G., Neroni B. et al. Structural variations of vaginal and endometrial microbiota: hints on female infertility. Front. Cell Infect. Microbiol. 2020; 14(10): 350. https://dx.doi.org/10.3389/fcimb.2020.00350.
  24. Moore D.E., Soules M.R., Klein N.A., Fujimoto V.Y., Agnew K.J., Eschenbach D.A. Bacteria in the transfer catheter tip influence the live-birth rate after in vitro fertilization. Fertil. Steril. 2000; 74(6): 1118-24. https://dx.doi.org/10.1016/s0015-0282(00)01624-1.
  25. Moreno I., Codoñer F.M., Vilella F., Valbuena D., Martinez-Blanch J.F., Jimenez-Almazán J. et al. Evidence that the endometrial microbiota has an effect on implantation success or failure. Am. J. Obstet. Gynecol. 2016; 215(6): 684-703. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2016.09.075.
  26. Franasiak J.M., Werner M.D., Juneau C.R., Tao X., Landis J., Zhan Y. et al. Endometrial microbiome at the time of embryo transfer: next-generation sequencing of the 16S ribosomal subunit. J. Assist. Reprod. Genet. 2016; 33(1): 129-36. https://dx.doi.org/10.1007/s10815-015-0614-z.
  27. Critchley H.O.D., Babayev E., Bulun S.E., Clark S., Garcia-Grau I., Gregersen P.K. et al. Menstruation: science and society. Am. J. Obstet. Gynecol. 2020; 223(5): 624-64. https://dx.doi.org/10.1016/j.ajog.2020.06.004.
  28. Kadogami D., Nakaoka Y., Morimoto Y. Use of a vaginal probiotic suppository and antibiotics to influence the composition of the endometrial microbiota. Reprod. Biol. 2020; 20(3): 307-14. https://dx.doi.org/10.1016/ j.repbio.2020.07.001.
  29. Pelzer E.S., Willner D., Buttini M., Huygens F. A role for the endometrial microbiome in dysfunctional menstrual bleeding. Antonie Van Leeuwenhoek. 2018; 111(6): 933-43. doi: 10.1007/s10482-017-0992-6.
  30. Margulies S.L., Flores V., Parkash V., Pal L. Chronic endometritis: a prevalent yet poorly understood entity. Int. J. Gynaecol. Obstet. 2022; 158(1): 194-200. https://dx.doi.org/10.1002/ijgo.13962.
  31. Kubyshkin A.V., Aliev L.L., Fomochkina I.I., Kovalenko Y.P., Litvinova S.V., Filonenko T.G. et al. Endometrial hyperplasia-related inflammation: its role in the development and progression of endometrial hyperplasia. Inflamm. Res. 2016; 65(10): 785-94. https://dx.doi.org/10.1007/s00011-016-0960-z.
  32. Cai L. Preliminary study on the mechanism of uterine flora on the occurrence and development of endometrial hyperplasia. Jinan University. 2021; 2: 44. https://doi.org/10.27167/d.cnki.gjinu.2019.000458.
  33. Khan K.N., Fujishita A., Masumoto H., Muto H., Kitajima M., Masuzaki H., Kitawaki J. Molecular detection of intrauterine microbial colonization in women with endometriosis. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2016; 199: 69-75. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejogrb.2016.01.040.
  34. Khan K.N., Fujishita A., Kitajima M., Hiraki K., Nakashima M., Masuzaki H. Intra-uterine microbial colonization and occurrence of endometritis in women with endometriosis. Hum. Reprod. 2014; 29(11): 2446-56. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/deu222.
  35. Fang R.L., Chen L.X., Shu W.S., Yao S.Z., Wang S.W., Chen Y.Q. Barcoded sequencing reveals diverse intrauterine microbiomes in patients suffering with endometrial polyps. Am. J. Transl. Res. 2016; 8(3): 1581-92.
  36. Teame T., Wang A., Xie M., Zhang Z., Yang Y., Ding Q. Paraprobiotics and postbiotics of probiotic Lactobacilli, their positive effects on the host and action mechanisms: a review. Front. Nutr. 2020; 22(7): 570344. https://dx.doi.org/10.3389/fnut.2020.570344.
  37. Wang J., Li Z., Ma X., Du L., Jia Z., Cui X. et al. Translocation of vaginal microbiota is involved in impairment and protection of uterine health. Nat. Commun. 2021; 12(1): 4191. https://dx.doi.org/10.1038/s41467-021-24516-8.
  38. Qiu T., Liu L., Zhou H., Sheng H., He Y., Liu M., Cai H. Analysis of endometrial microbiota in intrauterine adhesion by high-throughput sequencing. Ann. Transl. Med. 2021; 9(3): 195. https://dx.doi.org/10.21037/ atm-20-2813.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».