Успешный исход экстракорпорального оплодотворения при абсолютной тератозооспермии после отбора сперматозоида по дзета-потенциалу

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Современные методы отбора сперматозоидов не получили широкого применения в эмбриологической практике, что связано в первую очередь с недостаточным объемом доказательной базы об их эффективности. Одним из немногих методов, клинические результаты применения которых опубликованы в мировой литературе, является отбор сперматозоидов по дзета-потенциалу.

Описание: В данной статье представлено клиническое наблюдение протокола экстракорпорального оплодотворения с отбором сперматозоида по дзета-потенциалу у пары с несколькими неудачными попытками применения методов вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) в анамнезе. Основной причиной бесплодия в паре была абсолютная тератозооспермия (0% морфологически нормальных сперматозоидов по строгим критериям Крюгера). После интрацитоплазматической инъекции в ооциты отобранных по дзета-потенциалу сперматозоидов сформировалось 7 нормальных зигот, развилось 3 эмбриона, криоконсервировано 2 эмбриона и 1 эмбрион перенесен в полость матки с последующим наступлением беременности, которая завершилась рождением ребенка.

Заключение: Отбор сперматозоидов по дзета-потенциалу и другие изучаемые методы отбора мужских гамет заслуживают более активного применения в протоколах ВРТ, особенно у пар с повторными неудачами имплантаций. Накапливаемый таким образом опыт позволит отобрать наиболее эффективные методы, сформулировать показания к каждому из них и обосновать их применение с позиции доказательной медицины.

Об авторах

Парвин Сафаил кызы Гамидова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: gamidova.parvina@yandex.ru

аспирант отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. профессора Б.В. Леонова

Россия, Москва

Наталья Петровна Макарова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: np_makarova@oparina4.ru

д.б.н., в.н.с. отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. профессора Б.В. Леонова

Россия, Москва

Вероника Юрьевна Смольникова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: v_smolnikova@oparina4.ru

д.м.н., акушер-гинеколог, в.н.с. отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. профессора Б.В. Леонова

Россия, Москва

Наталия Николаевна Лобанова

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр акушерства, гинекологии и перинатологии имени академика В.И. Кулакова» Минздрава России

Email: n_lobanova@oparina4.ru

м.н.с. отделения вспомогательных технологий в лечении бесплодия им. профессора Б.В. Леонова

Россия, Москва

Список литературы

  1. Palermo G.D., O’Neill C.L., Chow S., Cheung S., Parrella A., Pereira N., Rosenwaks Z. Intracytoplasmic sperm injection: state of the art in humans. Reproduction. 2017; 154(6): F93-F110. https://dx.doi.org/10.1530/ REP-17-0374.
  2. Tan B.K., Vandekerckhove P., Kennedy R., Keay S.D. Investigation and current management of recurrent IVF treatment failure in the UK. BJOG. 2005; 112(6): 773-80. https://dx.doi.org/10.1111/j.1471-0528.2005.00523.x.
  3. Avendaño C., Franchi A., Taylor S., Morshedi M., Bocca S., Oehninger S. Fragmentation of DNA in morphologically normal human spermatozoa. Fertil. Steril. 2009; 91(4): 1077-84. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2008.01.015.
  4. Гамидова П.С., Смольникова В.Ю., Макарова Н.П., Лобанова Н.Н. Методы улучшения исходов программ вспомогательных репродуктивных технологий путем инновационных подходов к селекции мужских половых клеток. Акушерство и гинекология. 2022; 7: 34-42. [Gamidova P.S., Smolnikova V.Yu., Makarova N.P., Lobanova N.N. Methods for improving the outcomes of assisted reproductive technology programs through innovative approaches to selecting male germ cells. Obstetrics and Gynecology. 2022; (7): 34-42. (in Russian)]. https://dx.doi.org/10.18565/aig.2022.7.34-42.
  5. Sullivan R., Frenette G., Girouard J. Epididymosomes are involved in the acquisition of new sperm proteins during epididymal transit. Asian J. Androl. 2007; 9(4): 483-91. https://dx.doi.org/10.1111/j.1745-7262.2007.00281.x.
  6. Simon L., Ge S.Q., Carrell D.T. Sperm selection based on electrostatic charge. Methods Mol. Biol. 2013; 927: 269-78. https://dx.doi.org/10.1007/ 978-1-62703-038-0_25.
  7. Said T.M., Land J.A. Effects of advanced selection methods on sperm quality and ART outcome: a systematic review. Hum. Reprod. Update. 2011; 17(6): 719-33. https://dx.doi.org/10.1093/humupd/dmr032.
  8. Ainsworth C., Nixon B., Aitken R.J. Development of a novel electrophoretic system for the isolation of human spermatozoa. Hum. Reprod. 2005; 20(8): 2261-70. https://dx.doi.org/10.1093/humrep/dei024.
  9. Nasr-Esfahani M.H., Deemeh M.R., Tavalaee M., Sekhavati M.H., Gourabi H. Zeta sperm selection improves pregnancy rate and alters sex ratio in male factor infertility patients: a double-blind, randomized clinical trial. Int. J. Fertil. Steril. 2016; 10(2): 253-60. https://dx.doi.org/10.22074/ijfs.2016.4917.
  10. Chan P.J., Jacobson J.D., Corselli J.U., Patton W.C. A simple zeta method for sperm selection based on membrane charge. Fertil. Steril. 2006; 85(2): 481-6. https://dx.doi.org/10.1016/j.fertnstert.2005.07.1302.
  11. Malvezzi H., Sharma R., Agarwal A., Abuzenadah A.M., Abu-Elmagd M. Sperm quality after density gradient centrifugation with three commercially available media: a controlled trial. Reprod. Biol. Endocrinol. 2014; 12(1): 121. https://dx.doi.org/10.1186/1477-7827-12-121.
  12. Takeshima T., Yumura Y., Kuroda S., Kawahara T., Uemura H., Iwasaki A. Effect of density gradient centrifugation on reactive oxygen species in human semen. Syst. Biol. Reprod. Med. 2017; 63(3): 192-8. https://dx.doi.org/10.1080/ 19396368.2017.1294214.
  13. Muratori M., Tarozzi N., Cambi M., Boni L., Iorio A.L., Passaro C. et al. Variation of DNA fragmentation levels during density gradient sperm selection for assisted reproduction techniques: a possible new male predictive parameter of pregnancy? Medicine (Baltimore). 2016; 95(20): e3624. https://dx.doi.org/10.1097/MD.0000000000003624.
  14. Shekarriz M., DeWire D.M., Thomas A.J. Jr., Agarwal A. A method of human semen centrifugation to minimize the iatrogenic sperm injuries caused by reactive oxygen species. Eur. Urol. 1995; 28(1): 31-5. https://dx.doi.org/ 10.1159/000475016.
  15. Baldini D., Ferri D., Baldini G.M., Lot D., Catino A., Vizziello D., Vizziello G. Sperm selection for ICSI: do we have a winner? Cells. 2021; 10(12): 3566. https://dx.doi.org/10.3390/cells10123566.
  16. Ionov M., Gontarek W., Bryszewska M. Zeta potential technique for analyzing semen quality. MethodsX. 2020.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).