Viruses of the Ocean: On the Shores of the Aqua Incognita. Horizons of the Taxonomic Diversity

Cover Page

Cite item

Full Text

Abstract

In recent years, marine viruses have evolved into a distinct branch of virology, yet they still represent a sort of “dark matter”, and their role and significance in the evolution and functioning of Earth's biosphere remain unclear. The widespread implementation of the primerless sequencing methods in routine laboratory practice has streamlined the development of marine virology from initial observations of virus-like particles in seawater, once deemed exotic, to comprehensive generalizations that reshape our understanding of global problems in the World Ocean. They include the continuous depletion of biological resources and diversity, marine pollution, and global climate change. Nevertheless, in terms of virology, the World Ocean remains a true aqua incognita, and marine virology, as a subset of general virology, and marine biology are just at the initial stages of their development, standing on the cusp of new discoveries. Those discoveries have the potential to reveal fundamental processes in the origin and evolution of life on Earth, accelerate the development of novel technologies, and even foster innovative approaches to reshaping the noosphere. The aim of this review is to draw scientific attention to the numerous problematic aspects of viruses in the World Ocean. It covers the main topics such as the current taxonomy of marine viruses, their role in marine ecosystems, the presence of viruses in marine species and related diseases, and the role of marine viruses in the context of global climate change, focusing on unexplored area and outlining directions for future research studies.

Full Text

Масштабы морской вирусологии стали понятны лишь в последнее десятилетие в связи со значительными успехами в области молекулярно-генетических технологий.

“Первыми ласточками” в области изучения вирусов Мирового океана можно считать малоизвестную статью Гулина “Бактериофаги и кишечные бактерии морских рыб в контексте проблемы загрязнения вод” на французском языке (Guelin, 1952) и пионерскую работу Спенсера “Морской бактериофаг” в журнале Nature, в которой был описан вирус, выделенный из морской воды и вызывающий лизис светящихся бактерий Bacterium phosphoreum (Spencer, 1955). Однако в 1950−1960 гг. морская вода, содержащая значительное количество ионов, рассматривалась скорее как естественный дезинфектант (Plissier, 1963; Lycke et al., 1965; Magnusson et al., 1966), нежели как естественная среда для вирусов.

В середине прошлого века считалось, что вирусы содержатся в водах морей и океанов в весьма ограниченных количествах. Это представление сформировалось в результате отсутствия в то время эффективных молекулярно-генетических методов идентификации микроорганизмов и адекватных биологических моделей для изоляции вирусов (необходимо отметить, что и в наши дни таких моделей известно недостаточно). Однако уже в конце XX века постепенно пришло осознание того, что концентрация вирусов в морской воде в миллионы раз выше, чем считалось ранее (Børsheim et al., 1990). Количественные оценки, проведенные в начале 1990-х гг. и основанные на окрашивании ДНК вирусоподобных частиц в природных образцах, показали концентрацию вирусов в среднем 106–107/мл (Suttle et al., 1990; Hara et al., 1991). Последние оценки показали, что общая биомасса вирусов в океане достигает 0.03 Гт углерода, что составляет порядка 0.5% от общей биомассы океанов (Bar-On, Milo, 2019). В Мировом океане вирусы встречаются в различных типах биотопов, включая выходы геотермальных вод, “черные курильщики” срединных океанических хребтов, холодные источники и “гипоксические солевые острова”. Морские вирусы содержатся в приповерхностном планктоне, составляя ту его часть, которая получила название “виропланктон” (Wommack et al., 1999), в толще воды (Danovaro et al., 2008) и в донных отложениях (Hurwitz et al., 2015). Общее количество вирусных частиц Мирового океана оценивается приблизительно в 1030 единиц (Breitbart, 2012), и если все морские вирусы соединить в цепочку, ее длина превысит диаметр нашей Галактики – Млечного Пути (Suttle, 2007).

Предполагается, что в Мировом океане количество вирусных частиц в десятки раз превышает количество прокариотических и эукариотических организмов (Suttle, 2007; Gregory et al., 2019), однако их концентрация имеет неравномерное распределение. Обилие вирусов, как правило, возрастает с увеличением продуктивности экосистем и интенсификации популяционных взаимодействий. Поэтому их плотность в высокопродуктивных прибрежных водах выше, чем в открытом море. Концентрация вирусов достигает максимальных значений в эпипелагической зоне (до 108/мл), затем она экспоненциально снижается на глубинах от 200 до 400 м до относительно постоянного значения (порядка 106–107/мл) (Hara et al., 1991; Marie et al., 1999). Около 105/мл вирусных частиц обнаруживается в абиссопелагической зоне глубоководной среды, но эта величина заметно повышается в гидротермальных жерлах и холодных источниках (до 108/мл) (Danovaro et al., 2008; Dell’Anno et al., 2015). Концентрация вирусов в поверхностных слоях Мирового океана подвержена сезонным колебаниям (Hevroni et al., 2020; Dart et al., 2023). При столь высоких концентрациях вирусных частиц в соответствии с формулой Эйнштейна (1906 г.) (Ландау, Лифшиц, 1988) они должны оказывать влияние на динамическую вязкость морской воды и даже модулировать характеристики океанических течений.

Морские вирусы представляют собой обширную экологическую группу домена Virae и являются облигатными внутриклеточными паразитами морских организмов, включая тех из них, что ведут полуводный образ жизни (например, ластоногие млекопитающие или морские птицы). В смысле данного определения, эти вирусы следует четко отделять от той части Virae, которая оказалась в морской среде в результате механических заносов, например, в результате действия ветровых потоков, гидрологических процессов суши, наземными животными или техническими средствами. Вирусы океана – это самые микроскопические и наиболее многочисленные составляющие морских экосистем. Они способны не только заражать представителей иных доменов Мирового океана – архей (Archaea), бактерий (Bacteria) и эукариот (Eukaryota) (He et al., 2019), но и паразитировать на других вирусах (так называемые вирусы-сателлиты способны к продуктивной инфекции лишь в той клетке, которая инфицирована хозяйским вирусом (Руководство ..., 2013)). Большинство морских вирусов поражают бактерии (бактериофаги), археи (археофаги) или водоросли (альговирусы). Альговирусы составляют единую экологическую макрогруппу с фитовирусами наземных растений (Щелканов и др., 2022).

Размеры вирусов меньше клеток хозяев, однако их размеры варьируют значительно (от 18 нм у представителей семейства Parvoviridae до 1500 нм и более у представителей Mimiviridae и других гигантских ДНК-содержащих вирусов) (Campillo-Balderas et al., 2015), а размер генома – от менее двух тысяч пар нуклеотидов (kbp), содержащих всего два гена, до 2500 kbp с более чем 2000 генов (Simmonds, Aiewsakun, 2018). У морских вирусов встречаются те же морфологические формы вирионов, что и у остальных представителей Virae: оболочечные и безоболочечные, икосаэдрические, прямоугольные, нитевидные, пулевидные или бутылкообразные нуклеокапсиды, имеющие хвосты, булавы или другие типы пепломеров.

Гигантские вирусы поражают протозоев, поскольку, во-первых, те не имеют развитых механизмов иммунной защиты, требующих от паразита уменьшения поверхностных эпитопов; а, во-вторых, размер для гигантских вирусов имеет принципиальное значение, поскольку протозои не могут захватывать частички пищи размером менее 400−600 нм, под которые маскируются эти вирусы.

Размер вирусного генома, как правило, отражает его макроэволюционный процесс: например, крупные ДНК-содержащие вирусы, реплицирующиеся в цитоплазме, по-видимому, являются потерявшими самостоятельность бывшими внутриклеточными паразитами бактериальной природы (быть может даже из докембрийского периода). Вирусы с укороченным геномом больше напоминают получившие способность распространяться от клетки к клетке внутриклеточные элементы. Теоретические расчеты на основе анализа генетических сетей демонстрируют слабую тенденцию к снижению репродукции вирусов с увеличением размера их генома. В то же время скорость продуцирования нуклеотидов во время заражения сильно возрастает с увеличением размера вируса, причем самые крупные вирусы в среднем продуцируют вирусные нуклеотиды примерно в 100 раз быстрее, чем самые маленькие вирусы, а самые крупные вирионы собираются примерно в 700 раз быстрее, чем самые мелкие (Edwards et al., 2021). Остаются открытыми вопросы о наличии связи между размерами вирусов (или размерами геномов) и диапазоном их хозяев; являются ли более крупные вирусы более стойкими во внешней среде; действительно ли, что олиготрофная среда обогащена более крупными вирусами. Исследования вирусных РНК- и ДНК-метагеномов в прибрежной зоне Гавайских островов (Steward et al., 2013) и Антарктиды (Miranda et al., 2016) показали, что РНК-содержащие вирусы поражали исключительно эукариот, в то время как большинство ДНК-содержащих вирусов относились к группе бактериофагов. Означает ли это, что РНК-содержащие вирусы, которые, как правило, меньше по размеру, более распространены среди эукариотических вирусов в прибрежной среде, чем более крупные ДНК-содержащие вирусы? Сопоставимых исследований не проводилось, но предполагается, что в более олиготрофных условиях открытого океана более распространены гигантские ДНК-содержащие вирусы (Edwards et al., 2021). Вирусология знает много примеров, когда крупные ДНК-содержащие вирусы (например, из семейств Asfarviridae и Poxviridae) обладают выраженной специфичностью по отношению к хозяевам (Lvov et al., 2015). Вместе с тем, представители Coronaviridae, имеющие самые протяженные РНК-содержащие геномы (порядка 30 kbp), демонстрируют чрезвычайно высокий уровень экологической пластичности, часто преодолевая межвидовой барьер (Щелканов и др., 2020в) и становясь возбудителями опасных эпидемий или даже пандемий, таких как тяжелый острый респираторный синдром (SARS – Severe acute respiratory syndrome) и коронавирусное инфекционное заболевание 2019 года (COVID-19 – Coronavirus disease 2019) (Masood et al., 2020; Щелканов, 2023).

В научной литературе активно обсуждаются взаимосвязи между размерами и экологической ролью вирусов (Steward et al., 2013; Miranda et al., 2016; Record et al., 2016; Edwards et al., 2021). Однако не эти параметры должны находиться в центре обсуждения вирусов. Необходимо помнить о том, что эволюция есть история экологии вида, и этот тезис в полной мере относится к домену Virae. В среднесрочной перспективе необходимо сконцентрировать усилия на изучении механизмов, при помощи которых вирусы, участвуя в популяционных взаимодействиях, модулируют функционирование морских экосистем и даже биосферных процессов. Морские вирусы должны рассматриваться как составляющие природно-очаговых систем с учетом особенностей Мирового океана в соответствии с существующими теоретическими представлениями (Щелканов и др., 2021а). В этой связи, наиболее продвинутые теоретические представления имеются в отношении архео- и бактериофагов. Так, вирулентные фаги, проникнув в клетку-хозяина, не интегрируют свои геномы в геном хозяина, а автономно реплицируются в ней и затем лизируют клетку-хозяина, завершая тем самым цикл репродукции на этапе высвобождения вирусного потомства (Hobbs, Abedon, 2016; Zhu et al., 2022). Умеренные фаги инфицируют клетку-хозяина и встраиваются в ее геном в качестве профага, не вызывая ее лизис (подобно провирусу у Retroviridae (Shchelkanov et al., 1997)). Это состояние сосуществования геномов бактерий и умеренного вируса в виде единой хромосомы, способной к удвоению при каждом делении клетки, носит название лизогении (впоследствии возможен переход из лизогенного состояния в литическое – спонтанно или в результате изменения условий окружающей среды) (Howard-Varona et al., 2017; Mäntynen et al., 2021). В результате накопленных мутаций профаг может стать неспособным переходить в литическое состояние, превращаясь в криптический (латентный) профаг (Howard-Varona et al., 2017). Появляется все больше свидетельств существования и значимости других стратегий заражения вирусами, отличающихся от классической литическо-лизогенной схемы: хроническая инфекция (продуктивная и непродуктивная), псевдолизогения и состояние носительства рассматриваются в качестве альтернативных видов инфекций, которые отмечены среди различных бактериофагов (Mäntynen et al., 2021) и требуют установления их экологического значения.

В ряде работ было показано, что литическая репликация доминирует при высокой бактериальной продукции и численности, тогда как при низкой преобладает лизогения (Paul, 2008). Эта гипотеза остается спорной из-за противоречивых экспериментальных данных: в одних случаях были показаны сильные отрицательные взаимосвязи между лизогенией и бактериальной продукцией (Payet, Suttle, 2013), в других – слабые отрицательные взаимосвязи (Williamson et al., 2002), в третьих – отсутствие таких взаимосвязей (Boras et al., 2009). Более убедительными были результаты, подтверждающие отрицательную взаимосвязь между лизогенией и бактериальной продукцией, полученные в полярных регионах, включая Северный Ледовитый океан (Payet, Suttle, 2013) и Южный океан (Evans, Brussaard, 2012). Возможно, умеренные бактериофаги более распространены в полярных регионах, как это было показано для Южного океана, где преобладают лизогенные вирусы, которых даже называют “сезонными бомбами замедленного действия” (Brum et al., 2016), поскольку они могут переходить к литическому циклу по мере увеличения продукции их бактериальных хозяев (Ambalavanan et al., 2021). Кроме того, было установлено, что в олиготрофных водах относительное количество лизогенных бактериофагов увеличено по сравнению с эвтрофными водами (Weinbauer et al., 2003). Исследования также показали, что бактериальные клетки, содержащие профаги, составляют значительную часть гетеротрофной микробной популяции, и лизогенная инфекция может быть распространена в средах, которые неблагоприятны для выживания вируса, например, в глубоководных донных отложениях (Cai et al., 2019).

Метагеномные исследования морских вирусов

Метагеномные исследования морских вирусов существенно изменили наши представления об этом разделе вирусологии за последнюю четверть века. Классические методы секвенирования нуклеиновых кислот, основанные на использовании специфических праймеров, малопригодны для изучения вирусов с неизвестным геномом, поскольку в домене Virae отсутствует общий для всех представителей консервативный ген, подобный, например, генам рибосомальной РНК у Archaea, Bacteria и Eukaryota. Метагеномные исследования позволили преодолеть это препятствие и создать технологический базис для широкомасштабного изучения вирусных геномов. Предварительным этапом метагеномного секвенирования является концентрирование и очистка вирусоподобных частиц из морской воды и морских отложений (Edwards, Rohwer, 2005).

Исследования показали, что вирусы океана исключительно разнообразны. Было установлено, что в 100 л морской воды содержится более 5000 различных вирусных вариантов, а в 1 кг морских отложений – до 1 млн (Breitbart et al., 2004). Первый надежно установленный вирусный метагеном из некультивируемых морских вирусных сообществ был описан в 2002 г. (Breitbart et al., 2002). Метагеномы морских вирусов (и даже целые виромы конкретных биотопов), собранные со всего мира, показали, что многие вирусы океана имеют глобальное распространение, но относительная численность каждого вида ограничена конкретными селективными условиями местоположения.

Комплексные метагеномные исследования, включающие геномы как вирусов, так и их потенциальных хозяев, позволили установить, что архео- и бактериофаги играют важную роль в регуляции структуры морских микробиомов, осуществляя перенос генетического материала между микроорганизмами. Этот процесс, известный как горизонтальный перенос генов (Rohwer, Thurber, 2009), осуществляющийся не только между прокариотами, но и между прокариотами и одноклеточными эукариотами и даже между многоклеточными эукариотами (Cram et al., 2016), может рассматриваться как важный фактор экологии и эволюции бактерий (Arnold et al., 2022). Обладая огромным генетическим разнообразием, морские вирусные сообщества стимулируют эволюцию и диверсификацию микроорганизмов, выступая в качестве селективного фактора и ключевых посредников в горизонтальном переносе генов (Roux et al., 2016). За последние десятилетия большое количество данных по секвенированию вирусов позволило получить представление о беспрецедентном генетическом разнообразии и потенциальных метаболических функциях морских вирусов (Zhang et al., 2023). Отсутствие моделей для культивирования подавляющего числа этих вирусов существенно ограничивает наши знания об их биологических свойствах и существенно снижает эффективность валидации метагеномных результатов (Brum et al., 2015; Roux et al., 2016).

Вирусы также регулируют микробное разнообразие посредством специфического инфицирования и лизиса наиболее распространенных и доминантных микроорганизмов. Это явление в свое время рассматривалось как гипотеза “убей победителя”, которая предполагает, что высокие темпы роста микробов сопровождаются высокими показателями их смертности. Роль вирусов в этом явлении состоит в регуляции разнообразия бактерий, подавляя превосходящих бактериальных конкурентов и тем самым освобождая низших бактериальных конкурентов от вытеснения (Thingstad, 2000; Coutinho et al., 2017).

Трофика мирового океана и морские вирусы

До недавнего времени трофические процессы и морские вирусы не рассматривались как взаимосвязанные понятия в моделях круговорота питательных веществ в океане, но в последние 10−15 лет ситуация постепенно стала меняться (Weitz et al., 2015). Вирусы активно заражают морские организмы и, в частности, являются основной причиной гибели гетеротрофного и автотрофного планктона. Однако вирусы не только вызывают гибель хозяев. В результате лизиса клеток они оказывают прямое воздействие на функционирование экосистем, способствуя высвобождению органического углерода и других питательных веществ в окружающую среду. Это явление, известное под названием вирусный шунт, способствует накоплению растворенных в морской воде органических соединений, которые непосредственно недоступны для использования организмами более высоких трофических уровней (элементами планктона, беспозвоночными, рыбами), но используются преимущественно гетеротрофными бактериями (Weitz, Wilhelm, 2012). Хотя некоторые высвобождаемые нутриенты, например, железо, могут усваиваться эукариотической составляющей планктона (Poorvin et al., 2004). Высвобождение органики в результате вирусного заражения способствует росту численности морских бактерий и рециркуляции органического материала. Подсчитано, что лизис клеток микроорганизмов, вызванный вирусами, непосредственно влияет на морской углеродный цикл, ежедневно высвобождая порядка 10 млрд т углерода из клеточных организмов в морскую среду (Suttle, 2007; Breitbart, 2012; Zhang et al., 2023). Вирусная инфекция и лизис хозяйских клеток не только способствуют накоплению растворенного органического вещества, но и увеличивают доставку углерода с поверхности океана в его более глубокие слои с помощью так называемого вирусного челнока, когда инфицированные клетки и/или продукты лизиса образуют агрегаты и оседают с повышенной скоростью (Zimmerman et al., 2020).

Таким образом, вирусы океана не просто входят в состав морских экосистем, но являются ключевыми факторами их разнообразия, динамики численности и биогеохимического круговорота, а также вносят вклад в гигантский поток органического вещества. Являясь наиболее распространенными и разнообразными организмами в Мировом океане, вирусы играют важнейшую роль в управлении морскими биогеохимическими циклами и формировании структуры сообществ и функций морских микроорганизмов. Считается, что морские вирусы ответственны за 20−40% ежедневной смертности микробов, тем самым регулируя состав и функциональные процессы морских микробных сообществ (Suttle, 2007; Breitbart, 2012).

Интригующая гипотеза состоит в том, что как гетеротрофы, так и автотрофы могут стимулироваться лизисом микробов (Weinbauer et al., 2011; Middelboe, Brussaard, 2017) в результате высвобождения побочных продуктов (Weitz, Wilhelm, 2012; Eich et al., 2022; Notaro et al., 2022). Характеристика такого стимулирования и его последствий представляет собой важную область будущих исследований.

Хорошо известно, что вирусная инфекция изменяет физиологию хозяйской клетки (Bagga, Bouchard, 2014; Xue et al., 2022), причем степень и динамика такого изменения могут рассматриваться как один из важнейших фенотипических признаков конкретного вирусного штамма (Щелканов и др., 1999). Так, цианофаги увеличивают скорость фотосинтеза у инфицированных цианобактерий, предположительно изменяя скорость фиксации углерода из окружающей среды перед лизисом (Weitz, Wilhelm, 2012). Более того, вирусы также кодируют вспомогательные метаболические гены, которые оказывают влияние на рост и адаптационные способности клетки-хозяина (Thompson et al., 2011; Breitbart, 2012).

Морские микроорганизмы, в свою очередь, способны влиять на численность вирионов в окружающей среде. Следствием этого является наличие антивирусного действия у многих химических соединений, секретируемых морскими микроорганизмами (Беседнова и др., 2022; Besednova et al., 2021). Кроме того, вирусы могут использоваться в пищу протистами, а жизненная стратегия некоторых вирусов включает в себя мимикрию под частички пищи (Claverie et al., 2009; Colson et al., 2017). Показано, что инфузории рода Halteria (Halteriida: Halteriidae) могут длительное время существовать на хлоровирусной (Algavirales: Phycodnaviridae, Chlorovirus) диете (DeLong et al., 2023). Создается впечатление, что воздействие вирусов на экосистемы выходит за рамки вирусного шунта, и, в отличие от него, перенаправляет энергию вверх по пищевым цепям. Некоторые исследователи полагают, что потребление вирусов в качестве пищи для морских микроорганизмов невыгодно с точки зрения калорийности (Deng et al., 2014) и недостаточно для того, чтобы влиять на экосистемные процессы. Тем не менее, вирусы содержат аминокислоты, нуклеиновые кислоты и нередко липиды (Jover et al., 2014), и при потреблении в достаточных количествах они могут влиять на динамику популяций вирусофагов. Каждая инфузория-халтерия потребляет до 104−106 вирусных частиц ежесуточно (DeLong et al., 2023). Учитывая обилие вирусных частиц и мелких водных протистов в фотической зоне Мирового океана, потребление вирусных частиц протистами может представлять собой глобально значимый трофический перенос. Следовательно, энергия и питательные вещества от микроорганизмов-хозяев, по крайней мере, простейших, могут передаваться через вирусы травоядным и продвигаться вверх по пищевой цепи через вирусофаги.

Несмотря на значительные успехи морской вирусологии, следует признать, что преобладающая часть исследований была проведена в эпипелагических зонах (Martinez-Hernandez et al., 2022). Изучение океанических глубин более 1000 м на сегодняшний день является сложной задачей. Считается, что мезопелагическая (200−1000 м) и более глубокие зоны содержат более половины всего обилия морских вирусов (Lara et al., 2017). Уже первые результаты работ, выполненных с помощью современных методов метагеномики, представили доказательства решающей роли вирусов в микробной экологии и биогеохимии глубоководных экосистем (Jin et al., 2020; Zhang et al., 2020).

Наконец, следует принять во внимание, что именно Мировой океан является истинными “легкими планеты”, а фитопланктон производит основное количество (до 85%) кислорода (Diaz, Plummer, 2018). Поэтому модулирующее воздействие виропланктона на фитопланктон может отражаться на содержании кислорода не только в отдельных частях Мирового океана, но и в атмосфере Земли в целом. Кроме того, повышенное поступление субстратов для окисления в придонные уровни в результате вирусных инфекций планктона может приводить к резкому понижению содержания кислорода в воде и как следствие – к локальным заморам в популяциях придонных аэробов.

Таксономия морских вирусов

Домен Virae характеризуется гигантским разнообразием и отчетливо выраженной гетерофилетичностью, поскольку в процессе развития жизни на Земле вирусы несколько раз дифференцировались в качестве паразитов как про-, так и эукариотов (Forterre, Prangishvili, 2013). Нельзя исключать, что часть вирусов представляют собой остатки наиболее древних (докембрийских) форм жизни (Moelling, Broecker, 2019).

На заре становления вирусологии классификация вирусов основывалась на их хозяевах, симптомах связанных с ними заболеваний, тканевом тропизме, стратегии репликации, структуре и антигенных свойствах вирусных частиц (Matthews, 1983). Исходя из этого, морские вирусы в зависимости от хозяев могут быть разделены на вирусы бактерий, архей, водорослей, растений и животных. В середине второй половины прошлого века Дэвид Балтимор (Baltimore, 1971) разделил вирусы на семь групп, основываясь на типе нуклеиновой кислоты (ДНК или РНК), ее молекулярной (смысловая (+) или антисмысловая (-)) и надмолекулярной (одноцепочечная (оц) или двуцепочечная (дц)) структуре, а также по наличию в схеме репликации обратной транскрипции (ОТ), т.е. этапа синтеза ДНК-цепи на матрице РНК. В результате такого подхода были выделены семь групп вирусов: дцДНК (например, Adenoviridae, Polyomaviridae), оцДНК (Circoviridae, Parvoviridae), дцРНК (Birnaviridae, Reoviridae), оцРНК(+) (Astroviridae, Picornaviridae), оцРНК(–) (Filoviridae, Orthomyxoviridae), оцРНК-ОТ (Pseudoviridae, Retroviridae) и дцДНК-ОТ (Caulimoviridae, Hepadnaviridae) (Руководство …, 2013; Baltimore, 1971).

Однако со временем стало очевидно, что подходы к таксономии вирусов должны иметь серьезные отличия от таковых при таксономическом классифицировании как высших организмов, так и бактерий, а номенклатура и классификация вирусов должны развиваться по особому пути (Van Regenmortel, 2016) при обязательном сохранении универсальных биологических критериев. В настоящее время присвоение названий вирусным таксонам вплоть до вида осуществляет Международный Комитет по таксономии вирусов (ICTV – International Committee on Taxonomy of Viruses) (Siddell et al., 2023) (с 1966 по 1975 г. – Международный комитет по номенклатуре вирусов). ICTV на постоянной основе осуществляет: классификацию вирусов до вида и таксонов более высокого уровня в соответствии с генетическими и биологическими свойствами их представителей; присвоение официальных наименований вирусным таксонам; поддержку базы данных (http://ictv.global) с описанием утвержденной на настоящее время таксономической структуры вирусов (Lefkowitz et al., 2018). ICTV ежегодно публикует доклады о текущей ситуации в области таксономии вирусов, которые являются результатом строго регламентированного многоступенчатого процесса отбора рекомендаций, представляемых ведущими экспертами (Adams et al., 2017).

Наиболее радикальным нововведением ICTV последнего времени стал предложенный в марте 2021 г. переход к бинарному формату названий вирусов по принципу род–вид (Genus_name – species_epithet) с латинизированными видовыми названиями (которые до сих пор могут не иметь консенсусного варианта написания). До этого в вирусологии для обозначения вида использовались собственные имена на основе следующих характеристик: ведущая симптоматика ассоциированного заболевания (например, вирус геморрагической лихорадки с почечным синдромом (Bunyavirales: Hantaviridae, Orthohantavirus) (Krylova et al., 2021)); место первой изоляции (вирус Парамушир (Bunyavirales: Nairoviridae, Orthonairovirus) (Safonova et al., 2019)); сочетание места первой изоляции и клинической симптоматики (вирус Крымской-Конго геморрагической лихорадки (Bunyavirales: Nairoviridae, Orthonairovirus) (Аристова и др., 2001)); таксон хозяина (вирус зайца-беляка (Bunyavirales: Peribunyaviridae, Orthobunyavirus) (Львов и др., 2003)); сочетание таксона хозяина и места первой изоляции (вирус северного тамнакона Вэньлин (Mononegavirales: Filoviridae, Thamnovirus) (Shi et al., 2018)); сочетание клинической симптоматики и таксона хозяина (вирус кольцевой пятнистости томата (Picornavirales: Secoviridae, Nepovirus) (Какарека и др., 2017)); морфология вириона и таксон хозяина (коронавирус больших подковоносов HuB-2013 (Nidovirales: Coronaviridae, Alphacoronavirus) (Щелканов и др., 2020а)); сочетание физико-химических свойств вирионов и таксона хозяина (радужный вирус беспозвоночных 6-го типа (Ahlers et al., 2016)). Современные бинарные названия перечисленных вирусов следующие: Orthohantavirus hantaan (или Orthohantavirus seoul), Orthohantavirus paramushir, Orthohantavirus crimean-congo hemorrhagic fever, Orthohantavirus khatangaense, Thamnovirus thamnaconi, Nepovirus lycopersici, Alphacoronavirus rhinolophus ferrumequinum HuB-2013, Iridovirus invertebrate 6. Вирус геморрагической лихорадки с почечным синдромом был дифференцирован на несколько самостоятельных вирусов (Lvov et al., 2015). Следует подчеркнуть, что курсивом выделяются только бинарные, но не собственные названия вирусов, а также названия таксонов от рода и ниже.

Исследовательским группам и экспертам ICTV было предложено преобразовать все ранее установленные названия видов в новый формат (Zerbini et al., 2022). При этом сохранились прежние окончания таксонов:

-virus – для рода и подрода; -virinae – подсемейства; -viridae – семейства; -virineae – подпорядка; -virales – порядка; -viricetes – класса; -viricotina – подтипа; -viricota – типа; -virae – царства; -viria – империи (реалма). Русскоязычные окончания таксонов: -вирусы – для рода и подрода; -вириновые – подсемейства; -виридовые – семейства; -виринэовые – подпорядка; -виралевые – порядка; -вирицетесовые – класса; -вирикотиновые – подтипа; -вирикотовые – типа; -вирэновые – царства; -вириатовые, или -вириаты – империи (реалма).

Высшим таксономическим рангом у вирусов является домен Virae; его совпадение с царственным окончанием “virae” связано с тем, что практически весь XX век считалось, что вирусы формируют отдельное царство живой природы. Первый вирус – вирус табачной мозаики (Martellivirales: Virgaviridae, Tobamovirus) или Tobamovirus tobacco mosaic, был открыт в 1892 г. русским физиологом растений Д.И. Ивановским. В первой половине прошлого века вирусология развивалась, главным образом, в работах патофизиологов растений, потому в вирусологии исторически используется не зоологический термин “отряд”, а ботанический “порядок” (Щелканов и др., 2022).

К 2022 г. таксономическое разнообразие домена Virae выглядело следующим образом: 6 империй, или реалмов, 10 царств, 17 типов, 39 классов, 65 порядков, 233 семейства, 168 подсемейств, 2606 родов, 84 подрода и 10434 вида (Walker et al., 2022). К середине 2023 г. количество классов увеличилось до 40, порядков – 72, семейств – 262, родов – 2826, видов – 11288. Столь впечатляющая динамика заставляет вспомнить работу С. Энтони, который оценивал количество вирусов, инфицирующих только млекопитающих (5.5 тыс. видов), в 320 тыс. видов (Anthony et al., 2013). Что касается вирусов Мирового океана, даже такие смелые оценки выглядят излишне скромными.

Согласно правилам ICTV, включению нового вируса в таксономическую систему Virae должна предшествовать его изоляция с использованием, по меньшей мере, одной из моделей in vivo, ex vivo или in situ с возможностью лабораторной идентификации (предпочтительно – молекулярно-генетическими методами). Даже для вирусов животных это правило не всегда может быть выполнено. Например, открытие вируса гриппа А субтипа H17N10 с помощью метагеномного подхода у желтоплечих листоносов Sturnira lilium в Центральной Америке (2009–2010 гг.) сразу же потребовало внесения изменений в программы эколого-вирусологического мониторинга (Щелканов, Львов, 2012), хотя этот субтип до сих пор не признан ICTV из-за отсутствия адекватных моделей для его изоляции. Однако огромное количество достаточно достоверных метагеномных данных приводит к ситуации, когда все большее количество новых вирусов входит в научный обиход по упрощенной схеме, лишь на основе молекулярно-генетических исследований. По этой причине подавляющее большинство морских вирусов не может быть признано или может быть лишь предварительно учтено ICTV, несмотря на надежные метагеномные данные (Gregory et al., 2019; Zhang et al., 2023). Предварительные результаты позволяют сегодня говорить примерно о 5000 морских вирусов (He et al., 2019).

Империя (реалм) Adnaviria, выделенная в 2020 г., охватывает оболочечные нитчатые (20-40 × 400-2200 нм) вирусы, имеющие геномы в виде дцДНК A-формы (протяженностью 15−60 kbp), что отражено в названии реалма (Adna, т.е. A-DNA). A-форма более компактная по сравнению с основной для дцДНК В-формой. Эти вирусы имеют уникальный основной капсидный белок (MCP – major capsid protein), включающий так называемый структурный мотив SIRV2 в форме пучка из 4 альфа-спиралей. Аббревиатура SIRV2 совпадает с аббревиатурой вируса Sulfolobus islandicus rod-shaped virus 2 (Ligamenvirales: Rudiviridae, Icerudivirus), или Icerudivirus sulfolobus 2, на модели которого этот структурный мотив был впервые детально изучен (Krupovic et al., 2021). Adnaviria включает единственное царство Zilligvirae, в свою очередь содержащее единственный тип Taleaviricota и единственный класс Tokiviricetes, который подразделяется на 3 порядка (Ligamenvirales, Maximonvirales и Primavirales), 5 семейств, 14 родов и 32 вида (табл. 1).

 

Таблица 1. Таксономическая структура домена Virae и представленность вирусов Мирового океана в домене

Империя (реалм)ЦарствоТипКлассПорядокКоличествоПримеры вирусов Мирового океана из соответствующих порядков
семействродоввидовТрадиционное названиеБинарное название
AdnaviriaZilligviraeTaleaviricotaTokiviricetesLigamen- virales31128Палочковидный вирус Sulfolobus islandicus 2-го типа (SIRV-2 – Sulfolobus islandicus rod-shaped virus 2) (Rudiviridae, Icerudivirus)Icerudivirus sulfolobus 2
    Maximon- virales111Вирус архей Впадины Пескадеро (PBAV – Pescadero Basin archea virus) (Ahmunviridae, Yumkaaxvirus)Yumkaaxvirus pescaderoense
    Primavirales123Вирус Thermoproteus tenax 1-го типа (TTV-1 – Thermoproteus tenax virus 1) (Tristromaviridae, Betatristromavirus)Betatristromavirus thermoproteus tenax 1
DuplodnaviriaHeunggong- viraePeploviricotaHerviviricetesHerpesvirales323133Вирус герпеса устриц 1-го типа (OyHV – Oyster herpes virus) (Malacoherpesviridae, Ostreavirus)Ostreavirus ostreidmalaco 1
  UroviricotaCaudoviricetesCrassvirales44273Фаг Cellulophaga baltica phi14:2 (CBPh-phi14:2 – Cellulophaga baltica phage phi14:2) (Steigviridae, Akihdevirus)Akihdevirus balticus
    Juravirales244Фаг Nitrososphaeria YSH_922147 (NPh-YSH_922147 – Nitrososphaeria phage YSH_922147) (Yangangviridae, Mathaucavirus)Mathaucavirus yangshanense
    Kirjokan- sivirales477Вирус Haloarcula californiae 7-го типа (HRTV-7 – Haloarcula californiae tailed virus 7) (Hafunaviridae, Haloferacalesvirus)Haloferacalesvirus californicus
    Magrovirales111Вирус Poseidoniales YSH_150918 (PSDV-YSH_150918 – Poseidoniales virus YSH_150918) (Aoguangviridae, Aobingvirus)Aobingvirus yangshanense
    Methanoba- virales222Вирус Methanobacterium psiM2 (MBV-psiM2 – Methanobacterium virus psiM2) (Leisingerviridae, Psimunavirus)Psimunavirus psiM2
    Nakonvirales223Вирус Кукулькан GBV302 (KKNV-GBV302 – Kukulkan virus GBV302) (Ekchuahviridae, Kukulkanvirus)Kukulkanvirus mexicoense
    Thumleima- virales4814Вирус Halorubrum sodomense 4-го типа (HSTV-4 – Halorubrum sodomense tailed virus 4) (Hafunaviridae, Haloferacalesvirus)Haloferacalesvirus HSTV4
    incertae sedis4412943975Вирус Гельголанд (MFHMV – Maribacter forsetii Helgoland-Molly virus) (Molycolviridae, Mollyvirus)Mollyvirus molly
MonodnaviriaLoebviraeHofneiviricotaFaserviricetesTubulavirales33151Нитчатый фаг fd (FPh-fd – Filamentous phage fd) (Inoviridae, Inovirus)Inovirus filamentous
 SangerviraePhixviricotaMalgranda- viricetesPetitvirales1722Фаг Enterobacteriaceae EC6098 (EBPh-EC6098 – Enterobacteriaceae phage EC6098) (Microviridae, Enterogokushovirus)Enterogokushovirus EC6098
  CossaviricotaMouviricetesPolivirales111Не описаны 
   PapovaviricetesSepolyvirales18117Полиомавирус черного морского окуня 1-го типа (BSBPyV-1 – Black sea bass polyomavirus 1) (Polyomaviridae, Thetapolyomavirus)Thetapolyomavirus censtriata
    Zurhausen- virales153133Папилломавирус морской свиньи 4 го типа (Phocoena phocoena papillomavirus 4) (Papillomaviridae, Dyopipapillomavirus)Dyopipapillomavirus 1
   QuintoviricetesPiccovirales128175Бокапарвовирус ластоногих 1 го типа (PBPV-1 – Pinniped bocaparvovirus 1) (Parvoviridae, Bocaparvovirus)Bocaparvovirus pinniped 1
  Cressdna- viricotaArfiviricetesBaphyvirales1722Вирус диатомовых водорослей Chaetoceros 1-го типа (ChD-1 – Chaetoceros diatodnavirus 1) (Bacilladnaviridae, Diatodnavirus)Diatodnavirus chaese
    Cirlivirales214167Цирковирус клюворылых китов (BWCV – Beaked whale circovirus) (Circoviridae, Circovirus)Circovirus whale
    Cremevirales11284Не описаны 
    Mulpavirales3517Не описаны 
    Recrevirales112Не описаны 
    Rivendellvirales145Не описаны 
    Rohanvirales156Не описаны 
   Repensi- viricetesGeplafuvirales224757Не описаны 
 TrapaviraeSaleviricotaHuolima- viricetesHaloruvirales1316Археофаг Halogeometricum HGPV-1 (HGPV-1 – Halogeometricum virus HGPV-1) (Pleolipoviridae, Betapleolipovirus)Betapleolipovirus HGPV1
RiboviriaOrthornaviraeDuplorna- viricotaChrymoti- viricetesGhabrivirales51066Вирус миокардита рыб (PMCV – piscine myocarditis virus) (Totiviridae, не классифицирован до рода)Пока отсутствует
   ResentoviricetesReovirales21597Реовирус рыб (PRV – piscine reovirus) (Sedoreoviridae, Orthoreovirus)Orthoreovirus piscine
   VidaverviricetesMindivirales117Бактериофаг Pseudomonas phiNN (PPh-phiNN – Pseudomonas phage phiNN) (Cystoviridae, Cystovirus)Cystovirus phiNN
  KitrinoviricotaAlsuviricetesHepelivirales4927Гепевирус рыб А-типа (PHV-A – Piscihepevirus A) (Hepeviridae, Piscihepevirus)Piscihepevirus heenan
    Martellivirales728232Вирус панкреатита лососевых (SPDV – Salmon pancreas disease virus) (Togaviridae, Alphavirus)Alphavirus pancreasalmone
    Tymovirales528257Не описаны 
   FlasuviricetesAmarillovirales1497Не описаны 
   MagsaviricetesNodamuvirales2311(RGNNV – Redspotted grouper nervous necrosis virus) (Nodaviridae, Betanodavirus)Betanodavirus akaarae
   TolucaviricetesTolivirales21997Не описаны 
  LenarviricotaAmabili- viricetesWolfram- virales112Не описаны 
   Howelto- viricetesCryppa- virales14105Не описаны 
   LeviviricetesNorzivirales4271426Бактериофаг донного ила SRR5467091_9 (BSPh-SRR5467091_9 – Bottom silt bacteriophage SRR5467091_9) (Solspiviridae, Oekfovirus)Oekfovirus lutivicinum
    Timlovirales2148447Бактериофаг донного ила SRR5467090_11 (BSPh-SRR5467090_11 – Bottom silt bacteriophage SRR5467090_11) (Steitzviridae, Widsokivirus)Widsokivirus pelovivens
    incertae sedisincertae sedis99Бактериофаг донного ила SRR7976300_2 (BSPh-SRR7976300_2 – Bottom silt bacteriophage SRR7976300_2) (Chimpavirus)Chimpavirus luticola
   MiaviricetesOurlivirales112159Не описаны 
  Negarna- viricotaChunqiu- viricetesMuvirales118Не описаны 
   MilneviricetesSerpentovirales117Не описаны 
   MonjiviricetesJingchuvirales52158Вирус креветок-атиид Санся (SASV – Sanxia Atyidae shrimp virus) (Chuviridae, Piscichuvirus)Piscichuvirus sanxiaense
    Mononegavirales11131562Парамиксовирус атлантического лосося (ASPV – Atlantic salmon paramyxovirus) (Paramyxoviridae, Aquaparamyxovirus)Aquaparamyxovirus salmonis
   Yunchang- viricetesGoujianvirales112Вирус сезармидовых крабов Бэйхай (BSCV – Beihai Sesarmidae crab virus) (Yueviridae, Yuyuevirus)Yuyuevirus beihaiense
   EllioviricetesBunyavirales1463552Вирус большеротого окуня (LMBV – largemouth bass virus) (Peribunyaviridae, Lambavirus)Lambavirus wisconsinense
   InsthoviricetesArticulavirales21022Вирус инфекционной анемии лососевых (ISAV – Infectious salmon anemia virus) (Orthomyxoviridae, Isavirus)Isavirus salaris
  PisuviricotaDuplopi- viricetesDurnavirales620154Амалгавирус морского взморника 2-го типа (ZMAV-2 – Zostera marina amalgavirus 2) (Amalgaviridae, Amalgavirus)Amalgavirus marinae
   PisoniviricetesNidovirales1448130Вирус морского зайца 1-го типа (AplV-1 – Aplysia virus 1) (Abyssoviridae, Abyssovirus)Abyssovirus aplysiae 1
    Picornavirales9105355Вирус диатомовых водорослей Asterionellopsis glacialis (AGV – Asterionellopsis glacialis virus) (Marnaviridae, Kusarnavirus)Kusarnavirus astarnae
    Sobelivirales3662Не описаны 
   StelpaviricetesPatatavirales112244Не описаны 
    Stellavirales1222Астровирус калифорнийского морского льва (ZCAstV – Zalophus californianus astrovirus) (Astroviridae, Mamastrovirus)Mamastrovirus 4
   incertae sedisYadokarivirales1210Не описаны 
   incertae sedisincertae sedis111Не описаны 
  incertae sedisincertae sedisincertae sedis2914Вирус мальков желтохвостой лакедры (YTAV – yellowtail ascites virus) (Birnaviridae, Aquabirnavirus)Aquabirnavirus ascitae
 PararnaviraeArtverviricotaRevtraviricetesBlubervirales1518Вирус гепатита В белого чукучана (WSHBV – white sucker hepatitis B virus) (Hepadnaviridae, Parahepadnavirus)Parahepadnavirus suckere
    Ortervirales528243Не описаны 
 incertae sedisincertae sedisincertae sedisincertae sedis2617Сателлитный вирус креветок-макробрахиум 1-го типа (MBSV-1 – Macrobrachium satellite virus 1) (Sarthroviridae, Macronovirus)Macronovirus macrobrachiume
Ribozyviriaincertae sedisincertae sedisincertae sedisincertae sedis1815Вирус лучеперых рыб 1-го типа (RFFV-1 – Ray-finned fish virus 1) (Kolmioviridae, Deevirus)Deevirus actinopterygii
VaridnaviriaBamfordviraeNucleocyto- viricotaMegaviricetesAlgavirales1633Вирус Emiliania huxleyi 86-го типа (EHV-86 – Emiliania huxleyi virus 86) (Phycodnaviridae, Coccolithovirus)Coccolithovirus emiliania
    Imitervirales41422Вирус Pyramimonas (PMV – Pyramimonas virus) (Schizomimiviridae, Biavirus)Biavirus raunefjordenense
    Pimascovirales31030Вирус инфекционного некроза селезенки и почек рыб (ISKNV – Infectious spleen and kidney necrosis virus) (Iridoviridae, Megalocytivirus)Megalocytivirus seabasse
    incertae sedis112Гигантский вирус Acanthamoeba castellanii (GVAC – Giant virus of Acanthamoeba castellanii) (Mamonoviridae, Medusavirus)Medusavirus medusae
   PokkesviricetesAsfuvirales111Не описаны 
    Chitovirales12283Вирус оспы жабр лосося (SGPV – Salmon gillpox virus) (Poxviridae, Salmonpoxvirus)Salmonpoxvirus gille
  Preplasmi- viricotaAinoaviricetesLautamovirales111Вирус флавобактерий FLiP (FBV-FLiP – Flavobacterium virus FLiP) (Finnlakeviridae, Finnlakevirus)Finnlakevirus FLiP
   MaveriviricetesPriklausovirales123Вирус Sputnik-сателлит Mimivirus (MVDV-Spt – Mimivirus-dependent virus Sputnik) (Lavidaviridae, Sputnikvirus)Sputnikvirus mimivirusdepende
   PolintoviricetesOrthopolinto- virales122Не описаны 
   TectiliviricetesAtroposvirales112Вирус глубоководных архей Lokiarchaeia SkuldV3 (DSLV-SkuldV3 – Deep sea Lokiarchaeia virus SkuldV3) (Skuldviridae, Delusorvirus)Delusorvirus cascadiense
    Belfryvirales112Не описаны 
    Coyopavirales123Вирус Methanophagales PBV266 (MPV-PBV266 – Methanophagales virus PBV266) (Chaacviridae, Antichaacvirus)Antichaacvirus pescaderoense
    Kalamavirales1512Фаг Bacillus Sole (BPhS – Bacillus phage Sole) (Tectiviridae, Betatectivirus)Betatectivirus sole
    Rowavirales1687Мастаденовирус дельфина В-типа (DMAdV-B – Dolphin mastadenovirus B) (Adenoviridae, Mastadenovirus)Mastadenovirus dolphine
    Vinavirales112Фаг Pseudoalteromonas PM2 (PPh-M2 – Pseudoalteromonas phage PM2) (Corticoviridae, Corticovirus)Corticovirus PM2
    incertae sedis125Фаг Vibrio cyclitrophicus viph1249a (VCPh-viph1249a – Vibrio cyclitrophicus phage viph1249a) (Autolykiviridae, Livvievirus)Livvievirus viph1249a
  incertae sedisincertae sedisincertae sedis111Вирус Пампулья (PMPV – Pampulha virus) (Yaraviridae, Yaravirus)Yaravirus brasiliense
 HelvetiaviraeDividoviricotaLaserviricetesHalopanivirales339Археофаг Haloarcula californiae HCIV1 (HCPh-HCIV1 – Haloarcula californiae phage HCIV1) (Sphaerolipoviridae, Alphasphaero- lipovirus)Alphasphaerolipovirus HCIV1
incertae sedisincertae sedisincertae sedisNaldaviricetesLefavirales310112Вирус европейского зеленого краба (CaMV – Carcinus maenas virus) (Nudiviridae, Gammanudivirus)Gammanudivirus cameanadis
    incertae sedis111Вирус белых пятен ракообразных (WSSV – White spot syndrome virus) (Nimaviridae, Whispovirus)Whispovirus whitespote
incertae sedisincertae sedisincertae sedisincertae sedisincertae sedis2281505Торкутеновирус калифорнийских морских львов (TTZV-1 – Torque teno Zalophus virus 1) (Anelloviridae, Lambdatorquevirus)Lambdatorquevirus phoci5
61017407226328151127360/83 (72%) 

 

Аднавириаты поражают гипертермофильных архей, обитающих в горячих источниках, главным образом, срединно-океанических хребтов (хотя наиболее изучены археи-термофилы гейзерных полей суши), и рассматриваются как наиболее древние из известных представителей домена Virae. Представители Ligamenvirales являются паразитами архей из порядка Sulfolobales, Maximonvirales – Menathophagales; Primavirales – Thermoproteales. Репликация аднавириатов происходит в цитоплазме инфицированной клетки без интеграции генома в хромосому клетки-хозяина. Представители этого реалма демонстрируют уникальную систему выхода дочерних вирионов – посредством специально создаваемых на поверхности инфицированной клетки пирамидальных структур, что существенно отличается от классического лизиса (Arnold et al., 2000; Häring et al., 2005; Krupovic et al., 2020).

Исследования вирусов архей могут привести к важным открытиям в области как биохимии архей, так и раннего этапа эволюции жизни на Земле. На сегодняшний день описано около 100 археофагов, и даже если включить тех, которые были идентифицированы с помощью метагеномных подходов, то их общее количество составит всего около 150 (Munson-McGee et al., 2018). Имеющиеся данные выявляют достаточно высокий уровень хозяйской специфичности археофагов, и среди них пока неизвестны примеры полигостальности.

Империя (реалм) Duplodnaviria описана в 2019 г. и является второй по количеству морских и наземных вирусов (4212 видов). Эта империя включает вирусы прокариот и эукариот с дцДНК-геномами (18−500 kbp, как правило, линейными, реже – кольцевыми; 27−600 генов), икосаэдрическими безоболочечными вирионами (45−170 нм). Вирионы снабжены портальной порой, к которой может прикрепляться специальная ножка (хвост), со спиральной симметрией длиной до 230 нм. Особый тип протеазы обрабатывает внутреннюю часть капсида перед упаковкой ДНК, которую осуществляет упаковочная терминаза (Iranzo et al., 2016; Koonin et al., 2020; Walker et al., 2020; Adriaenssens, 2021).

В империю Duplodnaviria входит единственное царство Heunggongvirae, которое включает два типа: Uroviricota (вирусы прокариот) и Peploviricota (вирусы эукариот).

Тип Uroviricota содержит единственный класс Caudoviricetes, объединяющий наиболее распространенные и многочисленные хвостатые фаги (Руководство ..., 2013; Turner et al., 2021). В его составе 7 порядков (19 семейств, 11 подсемейств, 66 родов, 104 вида), а также 44 не классифицированных до уровня порядка семейств и ряда отдельно стоящих родов, которые включают еще 3975 видов (всего 4079 видов) (Walker et al., 2022) (табл. 1). Несмотря на обширную научную литературу, посвященную Caudoviricetes, таксономическая структура этого класса в настоящее время подвергается кардинальному пересмотру с целью создания классификации, основанной на характеристике генома, которая должна более надежно отражать эволюционные взаимоотношения (Dion et al., 2020). В августе 2022 г. ICTV обновил систему классификации архео- и бактериофагов, в которой используемые ранее таксоны, такие как порядок Caudovirales и несколько основных семейств (Myoviridae, Podoviridae и Siphoviridae), были отменены (Turner et al., 2021; Gulyaeva et al., 2022). В новой версии Каталога вирусов ICTV Caudoviricetes содержит четыре крупных семейства (табл. 1): Autographiviridae (376 видов), Drexlerviridae (116 видов), Herelleviridae (92 вида) и Straboviridae (208 видов) (Walker et al., 2022).

Численность хвостатых бактериофагов превышает количество всех остальных организмов на планете, вместе взятых (Dion et al., 2020; Zhu et al., 2022), и они, скорее всего, способны заражать все виды бактерий (Krupovic et al., 2020). Именно бактериофаги формируют основные потоки горизонтального переноса генов в микробных сообществах (Koskella, Meaden, 2013; Chiang et al., 2019). Они же оказывают влияние на функционирование биосферы, регулируя структуру, состав и динамику популяций бактерий в различных средах − от морских экосистем и наземной почвы (Williamson et al., 2017) до кишечника человека и животных (Sutton, Hill, 2019), и модулируют основные биогеохимические циклы (Breitbart et al., 2018; Zimmerman et al., 2020).

Хвостатые археофаги морфологически практически неотличимы от хвостатых бактериофагов (Prangishvili et al., 2017; Duda et al., 2019). Их спиральные хвосты могут быть трех видов: короткие (Podoviridae), длинные и несокращающиеся (Siphoviridae) или сокращающиеся (Myoviridae) (Baquero et al., 2020). Хвостатые археофаги выделены у галофильных (Halobacteria) и метаногенных (Methanobacteriaceae) архей, принадлежащих к исключительно морскому типу Euryarchaeota (Dyall-Smith et al., 2019; Mizuno et al., 2019). Родственные провирусы были обнаружены в других линиях Euryarchaeota, а также у окисляющих аммиак представителей типов Thaumarchaeota и Aigarchaeota, однако эти археофаги пока не получили признания ICTV (Krupovic et al., 2011, 2019). Метагеномные исследования также выявили новые группы археофагов, предположительно инфицирующие морских архей из Euryarchaeota, Thaumarchaeota и Thermoplasmata (Philosof et al., 2017; Ahlgren et al., 2019), которые составляют, вероятно, самую многочисленную группу архей в составе планктона поверхностных вод Мирового океана (Zhang et al., 2015). Опосредованный вирусами лизис архей в глубоководных районах океана происходит быстрее, чем бактерий, что отражает экологическое значение археофагов в морских экосистемах (Danovaro et al., 2016).

Широкое распространение хвостатых вирусов и обнаруживаемых в составе хромосом провирусов как у бактерий, так и у архей наводит на мысль, что вирусы этого типа были частью вирома, связанного с последним универсальным клеточным предком (LUCA – last universal common ancestor) (Krupovic et al., 2020). Филогенетический анализ и структурные исследования показали, что хвостатые архео- и бактериофаги имеют сходную геномную организацию (Baquero et al., 2020). Однако на уровне последовательностей отдельных генов археофаги поразительно разнообразны, демонстрируя незначительное сходство друг с другом и практически не обнаруживая сходства с бактериофагами (Senčilo et al., 2013).

Основываясь на результатах сравнительного геномного анализа 63 полноразмерных геномов археофагов, Лиу с соавторами (Liu et al., 2021) предложили классифицировать хвостатых археофагов в 14 новых семейств: Hafunaviridae, Soleiviridae, Halomagnusviridae и Pyrstoviridae включают вирусы с икосаэдрическими головками и длинными сокращающимися хвостами; Druskaviridae, Haloferuviridae, Graaviviridae, Vertoviridae, Suolaviridae, Saparoviridae, Madisaviridae, Leisingerviridae и Anaerodiviridae – с икосаэдрическими головками и длинными несокращающимися хвостами; а также Shortaselviridae – единственное семейство с короткими хвостами. ICTV утвердил эти семейства, а также объединение четырех первых семейств из перечисленных в новый порядок Thumleimavirales; Haloferuviridae, Pyrstoviridae, Shortaselviridae и Graaviviridae – в новый порядок Kirjokansivirales; Leisingerviridae и Anaerodiviridae – в новый порядок Methanobavirales (табл. 1) (Liu et al., 2021).

Тип Peploviricota − второй в царстве Heunggongvirae − включает единственный класс Herviviricetes, в котором содержится относительно хорошо изученный порядок Herpesvirales с тремя семействами: Alloherpesviridae (13 видов), Malacoherpesviridae (2 вида) и Orthoherpesviridae (118 видов) (табл. 1). Относительно недавно на эти семейства было разделено прежнее семейство Herpesviridae. Представители Herpesvirales обладают морфологическим своеобразием: помимо капсида и липопротеиновой оболочки с пепломерами, свойственных подавляющему большинству оболочечных вирусов, вирионы герпесвиралевых содержат дополнительные структуры – кор (сердцевина) (содержащий геномную дцДНК длиной 125290 kbp) внутри икосаэдрического капсида (около 110 нм), а также тегумент (аморфное белковое тело) между капсидом и внешней оболочкой. Эволюционные связи Herpesvirales с другими представителями Duplodnaviria отражены в наличии у этого порядка 1-й субъединицы терминазы, АТФазного компонента комплекса терминазы, ответственного за упаковку геномной дцДНК в формирующиеся капсиды (Gatherer et al., 2021).

Диапазон хозяев герпесвиралевых очень широк, а некоторые хозяева содержат несколько различных герпесвирусов (например, человек является хозяином девяти из них), хотя каждый конкретный вирус обладает узким спектром хозяев. Наиболее известным представителем Herpesvirales является вирус простого герпеса типа 1-го типа (HSV-1 – Herpes simplex virus 1), или Simplexvirus humanalpha 1. Известные в настоящее время морские герпесвирусы поражают двустворчатых моллюсков, коралловые полипы, рыб, морских черепах, ластоногих и китообразных. Герпес-подобные последовательности были идентифицированы в образцах тканей северного морского котика Callorhinus ursinus, дельфина-афалины Tursiops truncatus, косатки Orcinus orca, калифорнийского морского льва Zalophus californianus, которые, предположительно, принадлежат новым представителям Alphaherpesvirinae или Gammaherpesvirinae (Maness et al., 2011). В семействе Malacoherpesviridae был создан новый род, содержащий единственный вирус герпеса устриц 1-го типа (OyHV-1 – Oyster herpes virus 1), или Ostreavirus ostreidmalaco 1 (табл. 1) (López -Sanmartin et al., 2016). Этот вирус был обнаружен у диких особей, личинок и эмбрионов обыкновенного осьминога Octopus vulgaris (Prado-Alvarez et al., 2021). Предполагается, что вирус острого инфекционного некроза японского гребешка Chlamys farreri, который поражает хозяйства марикультуры, тоже является вариантом O. ostreidmalaco 1 (Ren et al., 2013).

Империя (реалм) Monodnaviria была выделена в 2019 г. и включает 4 царства, 5 типов, 8 классов, 15 порядков, 21 семейство, 203 рода и 1575 видов (табл. 1). Представители этой империи широко распространены и заражают хозяев из всех трех вневирусных доменов биоты (архей, бактерий и эукариотов). Большинство моноднавириатов обладают оцДНК-геномами, которые реплицируются по типу катящегося кольца (Malathi, Devi, 2019) и кодируют гомологичные эндонуклеазы суперсемейства HUH (His-hydrophobic-His), инициирующие репликацию (Koonin et al., 2019b; Walker et al., 2020). Встречаются также атипичные вирусы с геномом в виде кольцевой дцДНК или линейной оцДНК.

Представители трех царств – Loebvira (51 вид), Sangervirae (22 вида) и Trapavirae (16 видов) – поражают прокариот, а царства Shotokuvirae (1486 видов) – эукариот. Предполагается, что в ходе эволюции моноднавириаты возникали неоднократно и независимо от линейных плазмид бактерий и архей (Kazlauskas et al., 2019).

Некоторые таксоны моноднавириатов на сегодняшний день широко представлены в научной литературе. Например, царство Sangervirae содержит семейство Microviridae (Phixviricota, Malgrandaviricetes), единственное в порядке Petitvirales, и включает два подсемейства – Bullavirinae (14 видов) и Gokushovirinae (8 видов). Микровиридовые являются одними из самых маленьких вирусов с оцДНК-геномами (4.5−6.0 kb), заключенными в безоболочечные икосаэдрические вирионы (25−27 нм). Вирусы из Microviridae инфицируют морские бактерии; они были идентифицированы в отложениях метановых сипов у побережья Калифорнии на глубине свыше 500 м (Bryson et al., 2015).

Семейство Papillomaviridae (Shotokuvirae, Cossaviricota, Papovaviricetes), входящее в порядок Zurhausenvirales (табл. 1), включает 133 вида небольших безоболочечных вирусов с дцДНК-геномами (5.7−8.6 kbp), упакованными в икосаэдрический капсид (55−60 нм) из 72 пентамеров MCP L1 и 12 молекул минорного капсидного белка (MiCP – minor capsid protein) L2 (Van Doorslaer et al., 2018). Папилломавирусы инфицируют рыб, рептилий, птиц и млекопитающих (в том числе человека), поражая преимущественно эпителиальные клетки, и могут вызывать доброкачественную или злокачественную пролиферацию многослойного плоского эпителия (Kraberger et al., 2022).

Семейство Polyomaviridae (Shotokuvirae, Cossaviricota, Papovaviricetes) является единственным в порядке Sepolyvirales и содержит 117 видов (табл. 1) с кольцевыми дцДНК-геномами (порядка 5 kbp), уложенными в вирионы икосаэдрической симметрии (40−50 нм), которые составлены из 72 пентамеров MCP VP1, а также MiCP VP2 и VP3. Каждый конкретный вирус из полиомавиридовых обладает узкой специфичностью, однако спектр потенциальных хозяев у этого семейства очень широкий. Представители Polyomaviridae изменяют активность регуляторных клеточных белков и блокируют клеточное деление в S-фазе, вызывая злокачественные трансформации инфицированных клеток. Наиболее известны полиомавиридовые, поражающие млекопитающих (включая человека), в том числе морских млекопитающих, например, полиомавирус калана (ELPyV-1 – Enhydra lutris polyomavirus 1), или Betapolyomavirus enhydrae, полиомавирус дельфина-белобочки 1-го типа (DDPV-1 – Delphinus delphis polyomavirus 1), или Zetapolyomavirus delphini. Описаны 4 представителя полиомавиридовых, поражающие рыб, например, полиомавирус дорады 1-го типа (SAPyV-1 – Sparus aurata polyomavirus 1), или Thetapolyomavirus spari; полиомавирус черного морского окуня 1-го типа (BSBPyV-1 – Black sea bass polyomavirus 1), или Thetapolyomavirus censtriata (Peretti et al., 2015), которые формируют отдельный род.

Семейство Parvoviridae (Shotokuvirae, Cossaviricota, Quintoviricetes) формирует порядок Piccovirales и включает 175 видов (табл. 1) с мелкими безоболочечными вирионами (18−30 нм), содержащими линейные оцДНК-геномы (4–6 kb) (Руководство ..., 2013). Представители подсемейства Parvovirinae заражают позвоночных (млекопитающих, птиц и рептилий), а представители подсемейства Densovirinae заражают насекомых, ракообразных и иглокожих (Cotmore et al., 2019). С использованием метагеномного подхода впервые для иглокожих было показано присутствие (без признаков патологии) денсовириновых в пищеварительном тракте и гонадах трех видов морских ежей (Colobocentrotus atratus, Tripneustes gratilla и Echinometra mathaei) из рифовых сообществ Гавайского архипелага. Кроме того, эти вирусы были обнаружены в образцах окружающей среды (донных отложений и водной толщи) возможно в результате присутствия вирусных частиц в гаметах или фрагментах тканей морских ежей (Gudenkauf et al., 2014).

Империя (реалм) Riboviria, одобренная ICTV в 2019 г., является в настоящее время самой крупной в домене Virae по числу видов и разнообразию таксонов, включая 2 царства, 6 типов, 2 подтипа, 21 класс, 30 порядков, 8 подпорядков, 120 семейств, 53 подсемейства, 1035 родов, 84 подрода и 4521 вид (табл. 1).

Реалм Riboviria является монофилетическим (Koonin et al., 2020) и охватывает все вирусы с оцРНК(-), оцРНК(+) и дцРНК-геномами, которые содержат гены родственных РНК-зависимых РНК-полимераз (RdRp – RNA-dependent RNA-polymerase) для своей репликации (Koonin et al., 2020; Walker et al., 2019). В начале 2020 г. ICTV расширил этот реалм, включив в него практически все РНК-содержащие вирусы, в том числе использующие в схеме репликации стадию обратной транскрипции (Walker et al., 2020). Ряд таксонов в Riboviria хорошо известны вирусами наземной биоты, но и среди них постепенно становится известно все больше вирусов океана.

Семейство Peribunyaviridae (Negarnaviricota, Ellioviricetes, Bunyavirales − табл. 1) включает 7 родов и 141 вид с оболочечными сферическими или плеоморфными вирионами (80−120 нм), сегментированными (кольцевые замкнутые S-, M- L-сегменты в индивидуальных капсидах) оцРНК(–)-геномами (Hughes et al., 2020). Многие перибуньявиридовые являются арбовирусами, т.е. передаются путем биологической трансмиссии позвоночным животным членистоногими переносчиками (Lvov et al., 2015). В данном семействе выделен отдельный род Lambavirus, в который входит вирус большеротого окуня (LMBV – Largemouth bass virus), или Lambavirus wisconsinense (Waltzek et al., 2019). Описан перибуньявиридовый вирус китайского мохнаторукого краба (ESBV – Eriocheir sinensis bunya-like virus), не идентифицированный пока до уровня рода (Huang et al., 2019).

Семейство Paramyxoviridae (Negarnaviricota, Monjiviricetes, Mononegavirales) включает 17 родов и 86 видов с крупными оболочечными вирионами (300–500 нм) плейоморфной формы и оцРНК(–)-геномами (14.2−20.1 kb), уложенными в нуклеокапсид. Парамиксовиридовые инфицируют млекопитающих (в том числе человека), китообразных, птиц, рептилий и рыб (Rima et al., 2019).

Семейство Filoviridae (Negarnaviricota, Monjiviricetes, Mononegavirales) содержит 8 родов и 15 видов с нитевидными оболочечными вирионами (80 × 600−800 нм) и линейным оцРНК(–)-геномом. Некоторые филовиридовые являются возбудителями геморрагических лихорадок у человека с высокой летальностью, способными вызывать не только эпидемические вспышки, но и масштабные эпидемии (Щелканов и др., 2015). Долгое время считалось, что эволюция филовиридовых связана с крыланами (Chiroptera, Megachiroptera) (Щелканов и др., 2021б), однако открытие вирусов рыб из Filoviridae, а именно, вируса таитийской бородавчатой рыбы-клоуна (ASV – Antennarius striatus virus), или Striavirus antennarii (Shi et al., 2018), вируса Тапажос (TAPV – Tapajos virus), или Tapjovirus bothropis (Horie, 2021), вируса Кандер (KANV – Kander virus), или Thamnovirus kanderense, вируса Фиви (FIWV – Fiwi virus), или Th. percae, вируса северного тамнакона Вэньлин (WTSV – Wenling Thamnaconus septentrionalis virus), или Th. thamnaconi (Shi et al., 2018; Hierweger et al., 2021), заставляет подвергнуть серьезной ревизии механизмы формирования этого семейства.

Семейство Rhabdoviridae (Negarnaviricota, Monjiviricetes, Mononegavirales − табл. 1) включает 3 подсемейства, 46 родов и 318 видов с оболочечными вирионами характерной пулевидной или бациолловидной формы (70 × 180 нм) и оцРНК(−)-геномами (10−16 kb). Рабдовирусы заражают млекопитающих, включая человека (в частности, Lyssavirus включает возбудителей бешенства (Deviatkin et al., 2017)), птиц, рептилий, амфибий, рыб и членистоногих (Dietzgen et al., 2017). Представители родов Sprivivirus, Perhabdovirus (Alpharhabdovirinae) и Novirhabdovirus (Gammarhabdovirinae) заражают исключительно рыб. Среди новирабдовирусов широко известен вирус инфекционной геморрагической септицемии (IHSV – Infectious hemorrhagic septicemia virus) или Novirhabdovirus piscine, который является возбудителем смертельно опасного заболевания диких и искусственно выращиваемых костистых рыб. Он был зарегистрирован у десятков видов морских и пресноводных рыб Северной Атлантики (Bergh et al., 2023).

Семейство Orthomyxoviridae (Negarnaviricota, Insthoviricetes, Articulavirales − табл. 1) включает 9 родов и 21 вид, которые имеют плейоморфно-эллипсоидальные (вплоть до коротко-нитевидных) оболочечные вирионы (100−120 нм), нуклеокапсид спиральной симметрии и 6-8-сегментный оцРНК(–)-геном (суммарный размер 10.0−4.6 kb), реплицирующийся в ядре инфицированной клетки (Щелканов и др., 2011; Noda, 2012). Ортомиксовиридовые привлекают повышенное внимание благодаря вирусу гриппа А (Alphainfluenzavirus influenzae), природным резервуаром которого являются дикие птицы водно-околоводного экологического комплекса. Преодолевая межвидовые барьеры, этот вирус способен проникать в популяции млекопитающих (в том числе человека), адаптироваться к ним и вызывать опасные эпизоотии, эпидемии и пандемии с высокой летальностью (Львов и др., 2004; Щелканов, Львов, 2011). Одна из схем циркуляции A. influenzae в природных очагах, связанных со свиньями (Sus scrofa), описанная Шоупом еще в 1943 г., включает инфицирование паразитических свиных нематод Metastrongylus elongatus (Nematoda: Aphelenchoididae) (Shope, 1943). Метастронгилезная концепция Шоупа позже дала возможность Щелканову с соавторами сформулировать тезис о том, что “возможно, изначально ортомиксовирусы были патогенами нематод, и циркуляция древних представителей этого семейства до сих происходит в популяциях глубоководных круглых червей” (Щелканов и др., 2011). Вирус инфекционной анемии лососевых (ISAV − Infections salmon anemia virus), или Isavirus salmon, инфицирует рыб семейства Salmonidae (Salmoniformes) и вызывает поражение системы кровообращения. Показано, что I. salaris способен передаваться лососевыми вшами – веслоногими рачками (Arthropoda: Crustacea, Copepoda), что позволяет отнести этот вирус к экологической группе арбовирусов (Щелканов и др., 2017). Рыбы являются хозяевами еще двух родов ортомиксовиридовых, выделенных в 2021 г. − Mykissvirus и Sardinovirus.

Небольшое семейство Totiviridae (Orthornavirae, Duplornaviricota, Chrymotiviricetes, Ghabrivirales − табл. 1) включает 5 родов и 28 видов с безоболочечными икосаэдрическими вирионами (40 нм) и линейным дцРНК-геномом (4.6−6.7 kb). Геном содержит две перекрывающиеся открытые рамки считывания, одна из которых (gag) кодирует MCP, а другая (pol) – RdRp (Wickner et al., 2011). Долгое время считалось, что хозяевами тотивиридовых являются грибы и простейшие. Но в последние годы наблюдается значительное увеличение числа новых видов вирусов, подобных тотивиридовым, поражающих моллюсков, ракообразных и рыб, но еще не классифицированных до уровня рода (De Lima et al., 2019). Наиболее известным Totiviridae-подобным вирусом является вирус миокардита рыб (PMCV – Piscine myocarditis virus) – возбудитель синдрома кардиомиопатии у атлантического лосося (Fritsvold et al., 2022). Два новых Totiviridae-подобных вируса были обнаружены у голубого краба Callinectes sapidus: тоти-подобный вирус голубого краба 1-го типа (CsTLV-1 – Callinectes sapidus toti-like virus 1) и тоти-подобный вирус голубого краба 2-го типа (CsTLV-2 – Callinectes sapidus toti-like virus 2). Филогенетический анализ аминокислотных последовательностей RdRp CsTLV-1 и CsTLV-2 позволил предположить, что они являются представителями двух новых родов Totiviridae (Zhao et al., 2022). Гиардиа-подобный вирус красноклешневого рака (CGV – Cherax Giardiavirus-like virus) обнаружен у австралийского пресноводного рака Cherax quadricarinatus, а вирус инфекционного мионекроза (IMNV – Infectious myonecrosis virus) – у тихоокеанской белоногой креветки Litopenaeus vannamei (Edgerton et al., 1994).

Семейство Reoviridae до 2022 г. рассматривалось как самостоятельное семейство в порядке Reovirales и включало два подсемейства – Sedoreovirinae и Spinareovirinae, имеющих икосаэдрические вирионы (50−100 нм) из 1−3 концентрических слоев капсидных белков, сегментированный (10−12 линейных сегментов длиной 0.6−5.8 kbp) дцРНК-геном (суммарная протяженность 18−26 kbp). В настоящее время оба подсемейства переведены в ранг отдельных семейств Sedoreoviridae и Spinareoviridae, формирующих порядок Reovirales – единственный в классе Resentoviricetes (Matthijnssens et al., 2022a, 2022b). Представители семейства Sedoreoviridae, включающего 48 видов, поражают млекопитающих, птиц, ракообразных, членистоногих, водоросли и растения (Matthijnssens et al., 2022a). Spinareoviridae включает 58 видов, поражающих млекопитающих, водных животных (млекопитающих, рыб, ракообразных, моллюсков), птиц, рептилий, членистоногих, грибы и растения (Matthijnssens et al., 2022b). Реовирусы P и W2 были описаны как патогенные для двух видов ракообразных Средиземного моря: краба-плавунца Macropipus depurator и травяного краба Carcinus mediterraneus (Montanie et al., 1993). Реовирус рыб (PRV – Piscine reovirus) (Sedoreoviridae) или Orthoreovirus piscine, был обнаружен у выращиваемого на ферме атлантического лосося с воспалением сердца и скелетных мышц (Palacios et al., 2010), у кумжи Salmo trutta (Garseth et al., 2012) и у ряда других видов рыб, обитающих у побережья Северной Европы: золотой корюшки Argentina silus, обыкновенной ставриды Trachurus trachurus, мойвы Mallotus villosus и атлантической сельди Clupea harengus (Wiik-Nielsen et al., 2012). За пределами Норвегии O. piscine был обнаружен у лососевых в хозяйствах марикультуры у побережья Чили, Канады (Kibenge et al., 2013), Аляски (Marty et al., 2015), Ирландии и Дании (Rodger et al., 2014). Вирусные частицы, подобные вирионам реовиралевых, были выделены из двустворчатых моллюсков (Renault, Novoa, 2004).

Получившее печальную известность семейство Coronaviridae (Orthornavirae, Pisuviricota, Pisoniviricetes, Nidovirales, Cornidovirineae – табл. 1) является одним из наиболее детализированных в таксономическом отношении семейств (как и другие семейства порядка Nidovirales), разработанных до уровня подрода и включает 3 подсемейства, 6 родов, 28 подродов и 54 вида. Округлые плейоморфные вирионы (120−160 нм) снабжены характерными булавовидными пепломерами (16−24 нм), которые хорошо видны на электронно-микроскопических фотографиях, за что семейство и получило свое название в 1968 г. Геном коронавиридовых содержит линейную оцРНК(+), уложенную в нуклеокапсид спиральной симметрии (Щелканов и др., 2020в). Геномная РНК коронавириновых до недавнего времени считалась наиболее протяженной среди РНК-содержащих вирусов; рекордсменом здесь считался коронавирус белухи SW1 (Wh-CoV-SW1 – Beluga whale coronavirus SW1), или Gammacoronavirus beluga whale SW1, с результатом 31.5 kb (Woo et al., 2014). Однако, в настоящее время известен нидовирус секреторных клеток планарий (PSCNV – Planarian secretory cell nidovirus), не классифицированный пока до уровня семейства, у которого длина геномной РНК составляет 41.1 kb. Известны 7 представителей Coronaviridae, поражающие человека, при этом 3 из них относятся к числу особо опасных: SARS-CoV, MERS-CoV и SARS-CoV-2 (Щелканов и др., 2020б). Коронавириновые способны вызывать заболевания у морских млекопитающих (например, упоминавшийся выше G. beluga whale SW1) (Woo et al., 2014) и костистых рыб: в 2021 г. сформировано подсемейство Pitovirinae, род Alphapironavirus и подрод Samovirus с прототипным вирусом чавычи (OTV – Oncorhynchus tshawytscha virus, или Alphapironavirus bona (Woo et al., 2023).

Порядок Picornavirales (Orthornavirae, Pisuviricota, Pisoniviricetes − табл. 1) включает 8 семейств, половина которых, согласно современным данным (Caliciviridae, Dicistroviridae, Marnaviridae и Picornaviridae), включает морские вирусы. Члены порядка имеют икосаэдрический капсид (25−30 нм) и линейный оцРНК(+)-геном (7.0–15.5 kb) (Щелканов и др., 2015). Семейство Caliciviridae (11 родов, 13 видов) включает два рода (Minovirus и Salovirus), представители которых заражают рыб (Vinjé et al., 2019). Шестнадцать видов дицистровиридовых объединены в 3 рода и способны заражать членистоногих (в частности, ракообразных), а вирус синдрома Таура (TSV − Taura syndrome virus), или Aparavirus tauraense заражает белоногих креветок Litopenaeus vannamei (Valles et al., 2017). Семейство Marnaviridae включает 7 родов и 20 видов, заражающих морских фотосинтезирующих одноклеточных эукариот. Некоторые члены семейства известны из метагеномных исследований океанического виропланктона (Lang et al., 2021). Пикорнавиридовые объединяют 5 подсемейств, 68 родов (включая два рода, не отнесенные к какому-либо подсемейству) и 158 видов. Большинство известных пикорнавирусов инфицируют млекопитающих и птиц, некоторые из них обнаружены у рептилий, земноводных и рыб (Zell et al., 2017).

Семейство Togaviridae (Orthornavirae, Kitrinoviricota, Alsuviricetes, Martellivirales) включает единственный род Alphavirus, насчитывающий 32 вида со сферическими оболочечными вирионами (65−70 нм), имеющими икосаэдрический нуклеокапсид, в который уложен несегментированный оцРНК(+)-геном (9.7−12.0 kb) (Chen et al., 2018). Альфавирусы в подавляющем большинстве представляют собой арбовирусы, связанные с кровососущими комарами (Diptera: Culicidae) (Lvov et al., 2015). Один из альфавирусов – вирус панкреатита лососевых (SPDV – Salmon pancreas disease virus), или Alphavirus pancreasalmone, является опасным патогеном диких и искусственно выращиваемых лососевых рыб, вызывая у них болезнь поджелудочной железы и так называемую сонную болезнь (Jansen et al., 2017). Вирус размножается исключительно в организме рыб (в основном лососевых) и переносится, по-видимому, лососевыми вшами (паразитическими веслоногими рачками). В экспериментальных условиях показана прямая передача A. pancreasalmone от инфицированных рыб интактным (McLoughlin, Graham, 2007).

Семейство Birnaviridae в настоящее время отнесено к царству Orthornavirae, но другие крупные таксоны для него пока не определены. Это семейство вирусов с дцРНК размером около 6 kbp, икосаэдрические вирионы которых представляют собой безоболочечные однослойные частицы диаметром около 65 нм. Капсид с икосаэдрической геометрией состоит из единственного капсидного белка VP2, сгруппированного в триммеры и образующего выступы длиной около 4 нм. Геном состоит из двух линейных сегментов дцРНК: большого размером 3.1–3.6 kbp (A) и малого размером 2.8−3.3 kbp (B). Два комплекса рибонуклеопротеидов, образованные сегментами генома, связанными с копиями рибонуклеопротеида (VP3) и несколькими молекулами РНК-зависимой РНК-полимеразы (RdRp, VP1), упакованы внутри каждой частицы (Delmas et al., 2019). Одним из наиболее изученных бирнавиридовых является вирус инфекционного панкреонекроза (IPNV − Infections pancreatic necrosis virus), или Aquabirnavirus salmonidae, встречающийся повсеместно, хозяевами которого являются лососевые, а также другие пресноводные и морские рыбы. Вирус передается как вертикально, так и горизонтально (Mutoloki et al., 2016).

Империя (реалм) Ribozyviria, выделенная в 2020 г., является наименее детализированной в таксономическом смысле, что согласуется с небольшим числом включенных в нее вирусов: 15 видов из 8 родов и одного семейства Kolmioviridae (табл. 1). Этот реалм охватывает вирусы-сателлиты особого типа, близкие по схеме функционирования кольцевого оцРНК(–)-генома к вироидам растений, имеющие рибозим (который разрезает мультимерные молекулы РНК при репликации по типу катящегося кольца) с единственным структурным геном (который кодирует нуклеопротеид), использующие репликативный аппарат хозяйской клетки и оболочечные белки хозяйского вируса для формирования вирионов (Lee et al., 2022). Наиболее актуальными рибозивириатами являются 8 вирусов гепатита дельта человека (HDV – Human delta virus), формирующих род Deltavirus: D. italiense (HDV-1), D. japanense (HDV-2), D. peruense (HDV-3), D. taiwanense (HDV-4), D. togense (HDV-5), D. carense (HDV-6), D. cameroonense (HDV-7) и D. senegalense (HDV-8), для которых хозяйским вирусом является вирус гепатита В (Blubervirales: Hepadnaviridae, Orthohepadnavirus) или O. hepatitis B. В настоящее время род Deevirus включает единственный вирус лучеперых рыб 1-го типа (RFFV-1 – Ray-finned fish virus 1), или D. actinopterygii (Chang et al., 2019).

Империя (реалм) Varidnaviria, выделенная в 2019 г., охватывает 2 царства, 3 типа, 7 классов, 15 порядков, 25 семейств, 81 род и 299 видов с дцДНК-геномами (табл. 1). Большинство вариднавириатов имеют общие гомологичные АТФазы, участвующие в упаковке геномной ДНК в капсид, и собственные ДНК-зависимые ДНК-полимеразы (DdDp – DNA-dependent DNA-polymerase). К царству Helvetiavirae относятся вирусы, заражающие архей или бактерий, тогда как Bamfordvirae включает несколько семейств, заражающих представителей как про-, так и эукариот (Woo et al., 2021). В классификации ICTV царство Bamfordvirae разделено на два типа: Nucleocytoviricota (который включает все крупные и гигантские ДНК-содержащие вирусы) и Preplasmiviricota (который включает более мелкие ДНК-содержащие вирусы) (Koonin et al., 2020). Нуклеоцитовирикоты инфицируют только эукариот, тогда как преплазмивирикоты включают вирусы, инфицирующие представителей всех трех вневирусных доменов: Archaea, Bacteria и Eukaryota.

Семейство Phycodnaviridae – единственное в Algavirales (Bamfordvirae, Nucleocytoviricota, Megaviricetes) – включает вирусы эукариотических водорослей: Chlorovirus (19 видов), Coccolithovirus (1), Phaeovirus (9), Prasinovirus (2), Prymnesiovirus (1) и Raphidovirus (1) (Van Etten et al., 2002). Фикоднавиридовые имеют крупные оболочечные вирионы (100−220 нм) с икосаэдрическим капсидом, состоящим из 20 субъединиц Т = 3 и 12 Т = 5 (всего 5040 молекул MCP), который упаковывает дцДНК-геном (100−560 kbp) (Finke et al., 2017). Фикоднавиридовые, заражая пресноводные или морские водоросли, встречаются в водах всех морей и океанов. Таксономия фикоднавиридовых изначально основывалась на круге хозяев. Хлоровирусы выделяли по их способности заражать пресноводные хлорелла-подобные зеленые водоросли. Кокколитовирусы, примнезиовирусы и рафидовирусы имеют широкий круг хозяев, при этом отдельные вирусы редко пересекают видовой барьер своих хозяев. Феовирусы инфицируют споры или гаметы нитевидных бурых водорослей (McKeown et al., 2017). Филогенетический анализ DdDp позволил установить, что представители Phycodnaviridae более тесно связаны друг с другом по сравнению с другими дцДНК-вирусами и образуют самостоятельную монофилетическую группу (Dunigan et al., 2006).

Порядок Imitervirales (Bamfordvirae, Nucleocytoviricota, Megaviricetes − табл. 1) включает 4 семейства (Allomimiviridae, Mesomimiviridae, Mimiviridae и Schizomimiviridae), представители которых заражают микроскопических одноклеточных простейших, в первую очередь амеб. Имитервиралевые имеют гигантский для Virae размер вириона 600−800 нм, поэтому вирусы этого порядка долгое время ошибочно считали внутриклеточными паразитическими бактериями. Крупные размеры вирионов делают имитервиралевых, во-первых, видимыми в световой микроскоп, а во-вторых, не позволяют фильтроваться через стандартные для вирусологии 200 нм фильтры. Морфология вириона тоже несколько необычна: икосаэдрический белковый капсид (400500 нм) покрыт слоем волокон длиной 100−200 нм, образующих “опушенную” частицу; нуклеокапсид, содержащий геномную ДНК, окружен липидной оболочкой (которая занимает промежуточное положение между нуклео- и внешним капсидом) (Colson et al., 2017). Геном представлен линейной дцДНК очень большой протяженности (свыше 1100 kbp), в составе которого выявлено около 1000 генов (что больше, чем у многих бактерий). Помимо необычного размера, впервые для вирусов было обнаружено, что геном мимивируса содержит вирусные гомологи многих генов, которые, как считается, характерны для клеточных организмов. Таким образом, Imitervirales представляет наиболее сложные вирусы из описанных в настоящее время (Abergel, Claverie, 2020). С помощью “филогенетического картирования” известных типов ДНК-полимеразы, ключевого фермента, общего для крупных ДНК-вирусов и клеточных организмов, было показано, что морские вирусы, относящиеся к Imitervirales, являются второй по распространенности группой (после морских бактериофагов), в значительной степени доминирующей над другими известными вирусами эукариот. Мимивирусы, вероятно, заражают множество гетеротрофных протистов. Также было обнаружено, что представители имитервиралевых инфицируют различные микроводоросли (гаптофиты и хлорофиты). Имеются косвенные данные (в основном из метагеномных исследований), что мимивиридовые инфицируют многоклеточные организмы, такие как октокораллы и известковые губки (Porifera) (Claverie et al., 2009), а также осетровых (Abergel, Claverie, 2020) и даже млекопитающих (включая человека) (Vincent et al., 2010).

Вирусы из Imitervirales проникают в клетку путем фагоцитоза, который осуществляет сам хозяин. По этой причине эти вирусы не могут быть менее 400 нм, поскольку это предел чувствительности псевдоподий хозяина. После вскрытия капсида внутренняя липидная мембрана сливается с мембраной фагосомы, обеспечивая выход нуклекапсида в цитоплазму, где образуются новые вирионы на основе собственных репликативных механизмов вируса. В цитоплазме во множестве обнаруживаются вирусы-сателлиты, которые, как выясняется, представляют собой вирофаги – особую форму сателлитизма, когда вирус-паразит целиком зависит от вируса хозяина, используя его репликативный аппарат и даже распространяясь внутри гигантского хозяйского вириона. Например, вирус Sputnik-сателлит Mimivirus (MVDV-Spt – Mimivirus-dependent virus Sputnik), или Sputnikvirus mimivirusdepende (Lavidaviridae) (Руководство ..., 2013).

Открытие гигантских ДНК-содержащих вирусов, входящих в Imitervirales, поднимает фундаментальную проблему их происхождения. Удивительно, что самые крупные вирусы так долго принимали за бактерии. Однако постепенно накапливается все больше данных о том, что они оказывают значительное экологическое воздействие на морские экосистемы благодаря регулированию планктонных популяций и заражению морских беспозвоночных (Claverie et al., 2009; Vincent et al., 2010; Abergel, Claverie, 2020).

Семейство Iridoviridae (Bamfordvirae, Nucleocytoviricota, Megaviricetes, Pimascovirales – табл. 1) содержит вирусы с крупными икосаэдрическими вирионами (150−200 нм), содержащими линейные дцДНК-геномы (100−220 kbp). Вирионы содержат внутреннюю липидную мембрану, расположенную между нуклео- и внешним капсидами. Представители Limphocystivirus (Alphairidovirinae) заражают рыб, а Iridovirus и Chloriridovirus (Betairidovirinae) способны инфицировать морских ракообразных (Williams et al., 2016; Chinchar et al., 2017). Имеются сведения об иридовиридо-подобных вирусах у двустворчатых моллюсков (Renault, Novoa, 2004).

Класс Naldaviricetes пока не отнесен к какому-либо типу. Этот класс содержит один порядок (Lefavirales) и одно семейство (Nimaviridae) (табл. 1). Образование нуклеокапсида и сборка интактного вириона происходят в ядре; в цитоплазме происходит только трансляция вирусных белков. Представители Naldaviricetes имеют общий набор уникальных генов, не обнаруженных в других вирусах, включая субъединицы ДНК-полимеразы и РНК-полимеразы, четыре гена фактора поздней экспрессии и гены фактора инфекционности. Эти вирусы включают несколько генов, которые отдаленно связаны с основными генами Nucleocytoviricota (Iranzo et al., 2016). Nimaviridae включает единственный род Whispovirus и один вид – вирус белых пятен ракообразных (WSSV – White spot syndrome virus), или Whispovirus whitespote, способный вызывать массовую гибель креветок на фермах. Вирус W. whitespote имеет оболочечные вирионы палочковидной формы (70−170 × 240−380 нм) с нитевидным концевым отростком. Стержнеобразные нуклеокапсиды включают кольцевой дцДНК-геном (293 kbp) (Wang et al., 2019). Ранее предполагаемые бакуловиридовые инфекции (характерные для насекомых) ракообразных, в частности, голубых крабов и азиатской тигровой креветки, обитающих на Атлантическом побережье и в Мексиканском заливе, как оказалось, вызваны вирусами из Nudiviridae, близкородственными к Baculoviridae (Harrison et al., 2020).

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В последней четверти XX века человечество осознало (хотя и не до конца приняло), что наша планета принадлежит микроорганизмам. При этом назывались два прокариотических домена – археи и бактерии. К концу первой четверти века нынешнего постепенно приходит понимание того, что домен Virae, долгое время остававшийся призраком живого, все отчетливее проглядывается в облике биосферы: его представители не только доминируют во всех экологических нишах количественно, но и во многом определяют их функционирование, модулируя все без исключения экологические взаимодействия. Более того, нельзя исключать, что некоторые вирусы представляют собой докембрийскую форму жизни, уступившую планету современной биоте в обмен на ее полный контроль. Но как бы там ни было, ключи к пониманию масштабов и эволюции домена Virae надежно упрятаны в глубинах Мирового океана.

По аналогии с другими сферами Земли принято выделять сферу существования вирусов (виросферу). Разумеется, виросфера не может функционировать в отрыве от биосферы. Однако виросфера не только полностью охватывает биосферу, но и – благодаря наличию в жизненном цикле большинства вирусов стадии вириона – значительно расширяет ее пределы. Глубоко под толщами донных отложений Мирового океана ждут своего часа немыслимые количества вирионов, на сотни миллионов лет пережившие популяции своих хозяев и всегда готовые в результате естественных геологических процессов подняться на поверхность. И пусть значительная часть этих древних вирусов погибнет, столкнувшись с изменившимися условиями жизни на планете, но и одного успешного вириона будет достаточно, чтобы вызвать очередную биологическую катастрофу (хотя бы на уровне планктонных сообществ, но умеем ли мы сегодня просчитывать долгосрочные последствия эпипланктонотий?). Более того, именно вирусы с наибольшей вероятностью можно обнаружить и за пределами Земли: микроскопические капельки жидкости способны преодолевать притяжение планеты в результате различного рода катаклизмов (тайфунов, извержения вулканов, столкновения Земли с космическими телами) и путешествовать в космическом пространстве, служа своеобразными маяками, сигнализирующими о существовании жизни, за пределами Земли. И кто знает, не встретят ли космические путешественники, дремлющие внутри своих нуклеокапсидов, новых потенциальных хозяев в океанах далеких планет?..

ФИНАНСИРОВАНИЕ РАБОТЫ

Данная работа финансировалась за счет средств бюджета Национального научного центра морской биологии им. А.В. Жирмунского ДВО РАН, Дальневосточного федерального университета, Научно-исследовательского института эпидемиологии и микробиологии им. Г.П. Сомова Роспотребнадзора. Никаких дополнительных грантов на проведение или руководство данным конкретным исследованием получено не было.

СОБЛЮДЕНИЕ ЭТИЧЕСКИХ СТАНДАРТОВ

В данной работе отсутствуют исследования человека и животных.

КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ

Авторы данной работы заявляют, что у них нет конфликта интересов.

×

About the authors

Yu. S. Khotimchenko

Zhirmunsky National Scientific Center of Marine Biology, Far Eastern Branch, Russian Academy of Sciences; Far Eastern Federal University

Author for correspondence.
Email: yukhotimchenko@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6979-1934
Russian Federation, Vladivostok, 690041; Vladivostok, 690922

M. Yu. Shchelkanov

Zhirmunsky National Scientific Center of Marine Biology, Far Eastern Branch, Russian Academy of Sciences; Far Eastern Federal University; Somov Research Institute of Epidemiology and Microbiology, Rospotrebnadzor

Email: yukhotimchenko@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8610-7623
Russian Federation, Vladivostok, 690041; Vladivostok, 690922; Vladivostok, 690087

References

  1. Аристова В.А., Колобухина Л.В., Щелканов М.Ю., Львов Д.К. Экология вируса Крымской-Конго геморрагической лихорадки и особенности клиники на территории России и сопредельных стран // Вопр. вирусологии. 2001. Т. 46. № 4. С. 7–15.
  2. Беседнова Н.Н., Андрюков Б.Г., Запорожец Т.С. и др. Оболочечные вирусы – патогенетическая мишень лектинов цианобактерий // Антибиотики и химиотерапия. 2022. Т. 67. № 5−6. С. 39–60.
  3. Какарека Н.Н., Козловская З.Н., Волков Ю.Г. и др. Неповирусы (Picornavirales, Secoviridae, Nepovirus) на юге Дальнего Востока: результаты многолетнего мониторинга // Юг России: экология, развитие. 2017. № 4. С. 105–119.
  4. Ландау Л.Д., Лифшиц Е.М. Теоретическая физика. Гидродинамика. М.: Наука. 1988. Т. 10. 736 с.
  5. Львов Д.К., Аристова В.А., Бутенко А.М. и др. Вирусы серогруппы Калифорнийского энцефалита и вызываемые ими заболевания: клинико-эпидемиологическая характеристика, географическое распространение, методы вирусологической и серологической диагностики. М.: РАМН. 2003. 41 с.
  6. Львов Д.К., Ямникова С.С., Федякина И.Т. и др. Экология и эволюция вирусов гриппа в России (1979−2002 гг.) // Вопр. вирусологии. 2004. Т. 49. № 3. С. 17–24.
  7. Руководство по вирусологии. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. Ред. Д.К. Львов. М.: МИА. 2013. 1200 с.
  8. Щелканов М.Ю. Этиология COVID-19. В кн.: COVID-19: от этиологии до вакцинопрофилактики. М.: ГЭОТАР-Медиа. 2023. С. 11–53.
  9. Щелканов М.Ю., Дунаева М.Н., Москвина Т.В. и др. Каталог вирусов рукокрылых (2020) // Юг России: экология, развитие. 2020а. Т. 15. № 3. С. 6–30.
  10. Щелканов М.Ю., Еремин В.Ф., Сахурия И.Б. и др. Дегидрогеназная активность инфицированных клеток и биологические свойства различных вариантов ВИЧ-1 // Биохимия. 1999. Т. 64. № 4. С. 513–519.
  11. Щелканов М.Ю., Какарека Н.Н., Волков Ю.Г., Толкач В.Ф. Становление фитовирусологии на Дальнем Востоке в контексте развития отечественной вирусологии. Владивосток: Изд-во ДВФУ. 2022. 142 с.
  12. Щелканов М.Ю., Колобухина Л.В., Бургасова О.А. и др. COVID-19: этиология, клиника, лечение // Инфекция и иммунитет. 2020б. Т. 10. № 3. С. 421–445.
  13. Щелканов М.Ю., Леонова Г.Н., Галкина И.В., Андрюков Б.Г. У истоков концепции природной очаговости // Здоровье населения и среда обитания. 2021а. № 5. С. 16–25.
  14. Щелканов М.Ю., Львов Д.К. Генотипическая структура рода Influenza A virus // Вестн. РАМН. 2011. № 5. С. 19–23.
  15. Щелканов М.Ю., Львов Д.К. Новый субтип вируса гриппа А от летучих мышей и новые задачи эколого-вирусологического мониторинга // Вопр. вирусологии. 2012. Приложение 1. С. 159–168.
  16. Щелканов М.Ю., Попова А.Ю., Дедков В.Г. и др. История изучения и современная классификация коронавирусов (Nidovirales: Coronaviridae) // Инфекция и иммунитет. 2020в. Т. 10. № 2. С. 221–246.
  17. Щелканов М.Ю., Суняйкин А.Б., Коваленко Т.С., Львов Д.К. Современная таксономия пикорнавирусов (Picornavirales, Picornaviridae) // Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2015. № 3. С. 53–64.
  18. Щелканов М.Ю., Табакаева Т.В., Любченко Е.Н. и др. Рукокрылые: общая характеристика отряда. Владивосток: Изд-во ДВФУ. 2021б. 130 с.
  19. Щелканов М.Ю., Федякина И.Т., Прошина Е.С. и др. Таксономическая структура Orthomyxoviridae: современное состояние и ближайшие перспективы // Вестн. РАМН. 2011. № 5. С. 12–19.
  20. Щелканов М.Ю., Шульгина М.А., Степаньков А.П. и др. Инфекционная анемия лососевых // Юг России: экология, развитие. 2017. Т. 12. № 2. С. 120–134.
  21. Abergel C., Claverie J.-M. Giant viruses // Curr. Biol. 2020. V. 30. P. R1108–R1110.
  22. Adams M.J., Lefkowitz E.J., King A.M.Q. et al. 50 years of the International Committee on Taxonomy of Viruses: progress and prospects // Arch. Virol. 2017. V. 162. P. 1441–1446.
  23. Adriaenssens E.M. Phage diversity in the human gut microbiome: a taxonomist’s perspective // mSystems. 2021. V. 6. e0079921. https://doi.org/10.1128/mSystems.00799-21
  24. Ahlers L.R., Bastos R.G., Hiroyasu A., Goodman A.G. Invertebrate iridescent virus 6, a DNA virus, stimulates a mammalian innate immune response through RIG-I- like receptors // PLoS One. 2016. V. 11. e0166088. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0166088
  25. Ahlgren N.A., Fuchsman C.A., Rocap G., Fuhrman J.A. Discovery of several novel, widespread, and ecologically distinct marine Thaumarchaeota viruses that encode amoC nitrification genes // ISME J. 2019. V. 13. P. 618–631. https://doi.org/10.1038/s41396-018-0289-4
  26. Ambalavanan L., Iehata S., Fletcher R. et al. A review of marine viruses in coral ecosystem // J. Mar. Sci. Eng. 2021. V. 9. № 7. P. 711. https://doi.org/10.3390/jmse9070711
  27. Anthony S., Epstein J.H., Murray K.A. et al. A strategy to estimate unknown viral diversity in mammals // MBio. 2013. V. 4. P. 1–15. https://doi.org/10.1128/mBio.00598-13
  28. Arnold B.J., Huang I-T., Hanage W.P. Horizontal gene transfer and adaptive evolution in bacteria // Nat. Rev. Microbiol. 2022. V. 20. P. 206–218.
  29. Arnold H.P., Zillig W., Ziese U. et al. A novel lipothrixvirus, SIFV, of the extremely thermophilic crenarchaeon Sulfolobus // Virology. 2000. V. 267. P. 252–266. https://doi.org/10.1038/s41579-021-00650-4
  30. Bagga S., Bouchard M.J. Cell cycle regulation during viral infection // Cell cycle control: Mechanisms and protocol. Methods Mol. Biol. Springer. 2014. V. 1170. P. 165–227. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-0888-2_10
  31. Baltimore D. Expression of animal virus genomes // Bacteriol. Rev. 1971. V. 35. P. 235–241. https://doi.org/10.1128/br.35.3.235-241.1971
  32. Bar-On Y.M., Milo R. The biomass composition of the oceans: a blueprint of our blue planet // Cell. 2019. V. 179. P. 1451–1454. https://doi.org/10.1016/j.cell.2019.11.018
  33. Baquero D.P., Liu Y., Wang F. et al. Structure and assembly of archaeal viruses // Adv. Virus Res. 2020. V. 108. P. 127–164. https://doi.org/10.1016/bs.aivir.2020.09.004
  34. Bergh Ø., Boutrup T.S., Johansen R. et al. Viral haemorrhagic septicemia virus (VHSV) isolated from Atlantic herring, Clupea harengus, causes mortality in bath challenge on juvenile herring // Viruses. 2023. V. 15. Art. ID 152. https://doi.org/10.3390/v15010152
  35. Besednova N.N., Andryukov B.G., Zaporozhets T.S. et al. Antiviral effects of polyphenols from marine algae // Biomedicines. 2021. V. 9. P. 1–23. https://doi.org/10.3390/biomedicines9020200
  36. Boras J.A., Sala M.M., Vázquez-Domínguez E. et al. Annual changes of bacterial mortality due to viruses and protists in an oligotrophic coastal environment (NW Mediterranean) // Environ. Microbiol. 2009. V. 11. P. 1181–1193. https://doi.org/10.1111/j.1462-2920.2008.01849.x
  37. Børsheim K.Y., Bratbak G., Heldal M. Enumeration and biomass estimation of planktonic bacteria and viruses by transmission electron microscopy // Appl. Environ. Microbiol. 1990. V. 56. P. 352−356. https://doi.org/10.1128/aem.56.2.352-356.1990
  38. Breitbart M. Marine viruses: truth or dare // Annu. Rev. Mar. Sci. 2012. V. 4. P. 425–448. https://doi.org/10.1146/annurev-marine-120709-142805
  39. Breitbart M., Bonnain C., Malki K., Sawaya N.A. Phage puppet masters of the marine microbial realm // Nat. Microbiol. 2018. V. 3. P. 754–766. https://doi.org/10.1038/s41564-018-0166-y
  40. Breitbart M., Felts B., Kelley S. et al. Diversity and population structure of a near-shore marine-sediment viral community // Proc. R. Soc. London. B. 2004. V. 271. P. 565–574. https://doi.org/10.1098/rspb.2003.2628
  41. Breitbart M., Salamon P., Andresen B. et al. Genomic analysis of uncultured marine viral communities // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 2002. V. 99. P. 14250–14255. https://doi.org/10.1073/pnas.202488399
  42. Brum J.R., Hurwitz B.L., Schofield O. et al. Seasonal time bombs: dominant temperate viruses affect Southern Ocean microbial dynamics // ISME J. 2016. V. 10. P. 437–449. https://doi.org/10.1038/ismej.2015.125
  43. Brum J.R., Ignacio-Espinoza J.C., Roux S. et al. Ocean plankton. Patterns and ecological drivers of ocean viral communities // Science. 2015. V. 348. № 6237. Art. ID 1261498. https://doi.org/10.1126/science.1261498
  44. Bryson S.J., Thurber A.R., Correa A.M.S. et al. A novel sister clade to the enterobacteria microviruses (family Microviridae) identified in methane seep sediments // Environ. Microbiol. 2015. V. 17. P. 3708–3721. https://doi.org/10.1111/1462-2920.12758
  45. Cai L., Jørgensen B.B., Suttle C.A. et al. Active and diverse viruses persist in the deep sub-seafloor sediments over thousands of years // ISME J. 2019. V. 13. P. 1857–1864. https://doi.org/10.1038/s41396-019-0397-9
  46. Campillo-Balderas J.A., Lazcano A., Becerra A. Viral genome size distribution does not correlate with the antiquity of the host lineages // Front. Ecol. Evol. 2015. V. 3. Art. ID 143. https://doi.org/10.3389/fevo.2015.00143
  47. Chang W.S., Pettersson J.H., Le Lay C. et al. Novel hepatitis D-like agents in vertebrates and invertebrates // Virus Evol. 2019. V. 5. vez021. https://doi.org/ 10.1093/ve/vez021
  48. Chen R., Mukhopadhyay S., Merits A. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Togaviridae // J. Gen. Virol. 2018. V. 99. P. 761–762. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001072
  49. Chiang Y.N., Penadés J.R., Chen J. Genetic transduction by phages and chromosomal islands: the new and noncanonical // PLoS Pathog. 2019. V. 15. e1007878. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1007878
  50. Chinchar V.G., Hick P., Ince I.A. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Iridoviridae // J. Gen. Virol. 2017. V. 98. P. 890–891. https://doi.org/10.1099/jgv.0.000818
  51. Claverie J.M., Grzela R., Lartigue A. et al. Mimivirus and Mimiviridae: giant viruses with an increasing number of potential hosts, including corals and sponges // J. Invertebr. Pathol. 2009. V. 101. P. 172–180. https://doi.org/10.1016/j.jip.2009.03.011
  52. Colson P., La Scola B., Levasseur A. et al. Mimivirus: leading the way in the discovery of giant viruses of amoebae // Nat. Rev. Microbiol. 2017. V. 15. P. 243–254. https://doi.org/10.1038/nrmicro.2016.197
  53. Cotmore S.F., Agbandje-McKenna M., Canuti M. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Parvoviridae // J. Gen. Virol. 2019. V. 100. P. 367–368. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001212
  54. Coutinho F.H., Silveira C.B., Gregoracci G.B. et al. Marine viruses discovered via metagenomics shed light on viral strategies throughout the oceans // Nat. Commun. 2017. V. 8. Art. ID 15955. https://doi.org/10.1038/ncomms15955
  55. Cram J., Parada A.E., Fuhrman J.A. Dilution reveals how viral lysis and grazing shape microbial communities // Limnol. Oceanogr. 2016. V. 61. P. 889–905. https://doi.org/10.1002/lno.10259
  56. Dart E., Fuhrman J.A., Ahlgren N. Diverse marine T4-like cyanophage communities are primarily comprised of low-abundance species including species with distinct seasonal, persistent, occasional, or sporadic dynamics // Viruses. 2023. V. 15. Art. 581. https://doi.org/10.3390/v15020581
  57. Danovaro R., Dell’Anno A., Corinaldesi C. et al. Major viral impact on the functioning of benthic deep-sea ecosystems // Nature. 2008. V. 454. P. 1084–1087. https://doi.org/10.1038/nature07268
  58. Danovaro R., Dell’Anno A., Corinaldesi C. et al. Virus-mediated archaeal hecatomb in the deep seafloor // Sci. Adv. 2016. V. 2. e1600492. https://doi.org/10.1126/sciadv.1600492
  59. De Lima J.G.S., Teixeira D.G., Freitas T.T. et al. Evolutionary origin of 2A-like sequences in Totiviridae genomes // Virus Res. 2019. V. 259. P. 1–9. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2018.10.011
  60. Dell’Anno A., Corinaldesi C., Danovaro R. Virus decomposition provides an important contribution to benthic deep-sea ecosystem functioning // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2015. V. 112. P. E2014–E2E19. https://doi.org/10.1073/pnas.1422234112
  61. Delmas B., Attoui H., Ghosh S. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Birnaviridae // J. Gen. Virol. 2019. V. 100. P. 5–6. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001185
  62. DeLong J.P., Van Etten J.L., Al-Ameeli Z. et al. The consumption of viruses returns energy to food chains // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2023. V. 120. e2215000120. https://doi.org/10.1073/pnas.2215000120
  63. Deng L., Krauss S., Feichtmayer F. et al. Grazing of heterotrophic flagellates on viruses is driven by feeding behavior // Environ. Microbiol. Rep. 2014. V. 6. P. 325–330. https://doi.org/10.1111/1758-2229.12119
  64. Deviatkin A.A., Lukashev A.N., Poleshchuk E.M. et al. The phylodynamics of the rabies viruses in the Russian Federation // PLoS One. 2017. V. 12. e0171855. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0171855
  65. Diaz J.M., Plummer S. Production of extracellular reactive oxygen species by phytoplankton: past and future directions // J. Plankton Res. 2018. V. 40. P. 655–666. https://doi.org/10.1093/plankt/fby039
  66. Dietzgen R.G., Kondo H., Goodin M.M. et al. The family Rhabdoviridae: mono-and bipartite negative-sense RNA viruses with diverse genome organization and common evolutionary origins // Virus Res. 2017. V. 227. P. 158–170. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2016.10.010
  67. Dion M.B., Oechslin F., Moineau S. Phage diversity, genomics and phylogeny // Nat. Rev. Microbiol. 2020. V. 18. P. 125–138. https://doi.org/10.1038/s41579-019-0311-5
  68. Duda R.L., Teschke C.M. The amazing HK97 fold: versatile results of modest differences // Curr. Opin. Virol. 2019. V. 36. P. 9–16. https://doi.org/10.1016/j.coviro.2019.02.001
  69. Dunigan D., Fitzgerald L.A., Van Etten J.L. Phycodnaviruses: a peek at genetic diversity // Virus Res. 2006. V. 117. P. 119–132. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2006.01.024
  70. Dyall-Smith M., Palm P., Wanner G. et al. Halobacterium salinarum virus ChaoS9, a novel Halovirus related to PhiH1 and PhiCh1 // Genes (Basel). 2019. V. 10. Art. ID 194. https://doi.org/10.3390/genes10030194
  71. Edgerton B., Owens L., Giasson B., De Beer S. Description of a small dsRNA virus from freshwater crayfish Cherax quadricarinatus // Dis. Aquat. Org. 1994. V. 18. P. 63–69. https://doi.org/10.3354/dao018063
  72. Edwards R.A., Rohwer F. Viral metagenomics // Nat. Rev. Microbiol. 2005. V. 3. P. 504–510. https://doi.org/10.1038/nrmicro1163
  73. Edwards K.F., Steward G.F., Schrisopher C.R. Making sense of virus size and the tradeoffs shaping viral fitness // Ecol. Lett. 2021. V. 24. P. 363–373. https://doi.org/10.1111/ele.13630
  74. Eich C., Biggs T.E.G., Van de Poll W.H. et al. Ecological importance of viral lysis as a loss factor of phytoplankton in the Amundsen Sea // Microorganisms. 2022. V. 10. Art. ID 1967. https://doi.org/10.3390/microorganisms10101967
  75. Evans C., Brussaard C.P.D. Regional variation in lytic and lysogenic viral infection in the Southern Ocean and its contribution to biogeochemical cycling // Appl. Environ. Microbiol. 2012. V. 78. P. 6741–6748. https://doi.org/10.1128/AEM.01388-12
  76. Finke J.F., Winget D.M., Chan A.M., Suttle C.A. Variation in the genetic repertoire of viruses infecting Micromonas pusilla reflects horizontal gene transfer and links to their environmental distribution // Viruses. 2017. V. 9. Art. ID 116. https://doi.org/10.3390/v9050116
  77. Forterre P., Prangishvili D. The major role of viruses in cellular evolution: facts and hypotheses // Curr. Opin. Virol. 2013. V. 3. P. 558–565. https://doi.org/10.1016/j.coviro.2013.06.013
  78. Fritsvold C., Mikalsen A.B., Haugland Ø. et al. Characterization of early phases of cardiomyopathy syndrome pathogenesis in Atlantic salmon (Salmo salar L.) through various diagnostic methods // J. Fish Dis. 2022. V. 45. P. 1267–1279. https://doi.org/10.1111/jfd.13659
  79. Garseth Å.H., Fritsvold C., Opheim M. et al. Piscine reovirus (PRV) in wild Atlantic salmon, Salmo salar L., and sea-trout, Salmo trutta L., in Norway // J. Fish Dis. 2012. V. 36. P. 483–493. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.2012.01450.x
  80. Gatherer D., Depledge D.P., Hartley C.A. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Herpesviridae 2021 // J. Gen. Virol. 2021. V. 102. Art. ID 001673. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001673
  81. Gregory A.C., Zayed A.A., Conceição-Neto N. et al. Marine DNA viral macro- and microdiversity from pole to pole // Cell. 2019. V. 177. P. 1109–1123. https://doi.org/10.1016/j.cell.2019.03.040
  82. Gudenkauf B.M., Eaglesham J.B., Aragundi W., Hewson I. Discovery of urchin-associated densoviruses (family Parvoviridae) in coastal waters of the Big Island, Hawaii // J. Gen. Virol. 2014. V. 95. P. 652–658. https://doi.org/10.1099/vir.0.060780-0
  83. Guelin A. Bacteriophages and intestinal bacteria in sea fish and the problem of polluted waters // Ann. Inst. Pasteur (Paris). 1952. V. 83. P. 46–56.
  84. Gulyaeva A., Garmaeva Z., Kurilshiko A. et al. Diversity and ecology of Caudoviricetes phages with genome terminal repeats in fecal metagenomes from four Dutch cohorts // Viruses. 2022. V. 14. Art. ID 2305. https://doi.org/10.3390/v14102305
  85. Hara S., Terauchi K., Koike I. Abundance of viruses in marine waters: assessment by epifluorescence and transmission electron microscopy // Appl. Environ. Microbiol. 1991. V. 57. P. 2731–2734. https://doi.org/10.1128/aem.57.9.2731-2734.1991
  86. Häring M., Vestergaard G., Brügger K. et al. Structure and genome organization of AFV2, a novel archaeal lipothrixvirus with unusual terminal and core structures // J. Bacteriol. 2005. V. 187. P. 3855–3858. https://doi.org/10.1128/JB.187.11.3855-3858.2005
  87. Harrison R.L., Herniou E.A., Bézier A. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Nudiviridae // J. Gen. Virol. 2020. V. 101. P. 3–4. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001381
  88. He T., Jin M., Zhang X. Marine viruses // Virus infection and tumorigenesis / Ed. X. Zhang Singapore: Springer Nature. 2019. P. 25–62. https://doi.org/10.1007/ 978-981-13-6198-2_2
  89. Hevroni G., Flores-Uribe J., Béj O., Philosof A. Seasonal and diel patterns of abundance and activity of viruses in the Red Sea // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 2020. V. 117. P. 29738–29747. https://doi.org/10.1073/pnas.2010783117
  90. Hierweger M.M., Koch M.C., Rupp M. et al. Novel Filoviruses, Hantavirus, and Rhabdovirus in freshwater fish, Switzerland, 2017. Emerging Infect. Dis. 2021. V. 27. P. 3082–3091. https://doi.org/10.3201/eid2712.210491
  91. Hobbs Z., Abedon S.T. Diversity of phage infection types and associated terminology: the problem with “Lytic or lysogenic” // FEMS Microbiol. Lett. 2016. V. 363. fnw047. https://doi.org/10.1093/femsle/fnw047
  92. Horie M. Identification of a novel filovirus in a common lancehead (Bothrops atrox (Linnaeus, 1758)) // J. Vet. Med. Sci. 2021. V. 83. P. 1485–1488. https://doi.org/10.1292/jvms.21-0285
  93. Howard-Varona C., Hargreaves K.R., Abedon S.T., Sullivan M.B. Lysogeny in nature: mechanisms, impact and ecology of temperate phages // ISME J. 2017. V. 11. P. 1511–1520. https://doi.org/10.1038/ismej.2017.16
  94. Huang P., Zhang X., Ame K.H. et al. Genomic and phylogenetic characterization of a bunya-like virus from the freshwater Chinese mitten crab Eriocheir sinensis // Acta Virol. 2019. V. 63. P. 433–438. https://doi.org/10.4149/av_2019_410
  95. Hughes H.R., Adkins S., Alkhovskiy S. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Peribunyaviridae // J. Gen. Virol. 2020. V. 101. P. 1–2. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001365
  96. Hurwitz B.L., Brum J.R., Sullivan M.B. Depth-stratified functional and taxonomic niche specialization in the ‘core’ and ‘flexible’ Pacific Ocean virome // ISME J. 2015. V. 9. P. 472−484. https://doi.org/10.1038/ismej.2014.143
  97. Iranzo J., Krupovic M., Koonin E.V. The double-stranded DNA virosphere as a modular hierarchical network of gene sharing // MBio. 2016. V. 7. e00978-16. https://doi.org/10.1128/mBio.00978-16
  98. Jansen M.D., Jensen B.B., McLoughlin M.F. et al. The epidemiology of pancreas disease in salmonid aquaculture: a summary of the current state of knowledge // J. Fish Dis. 2017. V. 40. P. 141–155. https://doi.org/10.1111/jfd.12478
  99. Jin M., Cai L., Ma R. et al. Prevalence of temperate viruses in deep South China Sea and western Pacific Ocean // Deep-Sea Res. Pt. I. 2020. V. 166. Art. ID 103403. https://doi.org/10.1016/j.dsr.2020.103403
  100. Jover L.F., Effler T.C., Buchan A. et al. The elemental composition of virus particles: implications for marine biogeochemical cycles // Nat. Rev. Microbiol. 2014. V. 12. P. 519–528. https://doi.org/10.1038/nrmicro3289
  101. Kazlauskas D., Varsani A., Koonin E.V., Krupovic M. Multiple origins of prokaryotic and eukaryotic single-stranded DNA viruses from bacterial and archaeal plasmids // Nat. Commun. 2019. V. 10. Art. ID 3425. https://doi.org/10.1038/s41467-019-11433-0
  102. Kibenge M.J.T., Iwamoto T., Wang Y. et al. Whole-genome analysis of piscine reovirus (PRV) shows PRV represents a new genus in family Reoviridae and its genome segment S1 sequences group it into two separate sub-genotypes // Virol. J. 2013. V. 10. Art. ID 230. https://doi.org/10.1186/1743-422X-10-230
  103. Kraberger S., Austin C., Farkas K. et al. Discovery of novel fish papillomaviruses: from the Antarctic to the commercial fish market // Virology. 2022. V. 565. P. 65–72. https://doi.org/10.1016/j.virol.2021.10.007
  104. Koonin E.V., Dolja V.V., Krupovic M. et al. Global organization and proposed megataxonomy of the virus world // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2020. V. 84. e00061-19. https://doi.org/10.1128/ MMBR.00061-19
  105. Koskella B., Meaden S. Understanding bacteriophage specificity in natural microbial communities // Viruses. 2013. V. 5. P. 806–823. https://doi.org/10.3390/v5030806
  106. Krupovic M., Dolja V.V., Koonin E.V. The LUCA and its complex virome // Nat. Rev. Microbiol. 2020. V. 18. P. 661–670. https://doi.org/10.1038/s41579-020-0408-x
  107. Krupovic M., Kuhn J.S., Wang F. et al. Adnaviria: a new realm for archaeal filamentous viruses with linear a-form double-stranded DNA genomes // J. Virol. 2021. V. 95. e0067321. https://doi.org/10.1128/JVI.00673-21
  108. Krupovic M., Makarova K.S., Wolf Y.I. et al. Integrated mobile genetic elements in Thaumarchaeota // Environ. Microbiol. 2019. V. 21. P. 2056–2078. https://doi.org/10.1111/1462-2920.14564
  109. Krupovic M., Spang A., Gribaldo S. et al. A thaumarchaeal provirus testifies for an ancient association of tailed viruses with archaea // Biochem. Soc. Trans. 2011. V. 39. P. 82–88. https://doi.org/10.1042/BST0390082
  110. Krylova N.V., Silchenko A.S., Pott A.B. et al. In vitro anti-Orthohantavirus activity of the high-and low-molecular-weight fractions of fucoidan from the brown alga Fucus evanescens // Mar. Drugs. 2021. V. 19. Art. ID 577. https://doi.org/10.3390/md19100577
  111. Lang A.S., Vlok M., Culley A.I. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Marnaviridae 2021 // J. Gen. Virol. 2021. V. 102. Art. ID 001633. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001633
  112. Lara E., Vaqué D., Sà E.L. et al. Unveiling the role and life strategies of viruses from the surface to the dark ocean // Sci. Adv. 2017. V. 3. e1602565. https://doi.org/10.1126/sciadv.1602565
  113. Lee B.D., Koonin E.V. Viroids and viroid-like circular RNAs: Do they descend from primordial replicators? // Life. 2022. V. 12. Art. ID 103. https://doi.org/10.3390/life12010103
  114. Lefkowitz E.J., Dempsey D.M., Hendrickson R.C. et al. Virus taxonomy: the database of the International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV) // Nucleic Acids Res. 2018. V. 46. P. D708–D717. https://doi.org/10.1093/nar/gkx932
  115. Liu Y., Demina T.A., Roux S. et al. Diversity, taxonomy, and evolution of archaeal viruses of the class Caudoviricetes // PLoS Biol. 2021. V. 19. e3001442. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.3001442
  116. López-Sanmartín M., López-Fernández J.R., Cunha M.E. et al. Ostreid herpesvirus in wild oysters from the Huelva coast (SW Spain) // Dis. Aquat. Org. 2016. V. 120. P. 231–240. https://doi.org/10.3354/dao03031
  117. Lvov D.K., Shchelkanov M.Yu., Alkhovsky S.V., Deryabin P.G. Zoonotic viruses of Northern Eurasia: Taxonomy and ecology. Academic Press. 2015. 452 p.
  118. Lycke E., Magnusson S., Lund E. Studies on the nature of the virus inactivating capacity of sea water // Arch. Gesamte Virusforsch. 1965. V. 17. P. 409–413. https://doi.org/10.1007/BF01241195
  119. Magnusson S., Hedström C.E., Lycke E. The virus inactivating capacity of sea water // Acta Pathol. Microbiol. Scand. 1966. V. 66. P. 551–559. https://doi.org/10.1111/apm.1966.66.4.551
  120. Malathi V.G., Devi P.R. ssDNA viruses: key players in global virome // VirusDis. 2019. V. 30. P. 3–12. https://doi.org/10.1007/s13337-019-00519-4
  121. Maness H.T., Nollens H.H., Jensen E.D. et al. Phylogenetic analysis of marine mammal herpesviruses // Vet. Microbiol. 2011. V. 149. P. 23–29. https://doi.org/ 10.1016/j.vetmic.2010.09.035
  122. Mäntynen S., Laanto E., Oksanen H.M. et al. Black box of phage-bacterium interactions: exploring alternative phage infection strategies // Open Biol. 2021. V. 11. Art. ID 210188. https://doi.org/10.1098/rsob.210188
  123. Marie D., Brussaard C.P.D., Thyrhaug R. et al. Enumeration of marine viruses in culture and natural samples by flow cytometry // Appl. Environ. Microbiol. 1999. V. 65. P. 45–52. https://doi.org/10.1128/AEM.65.1.45-52.1999
  124. Martinez-Hernandez F., Fornas O., Martinez-Garcia M. Into the dark: exploring the deep ocean with single-virus genomics // Viruses. 2022. V. 14. Art. 1589. https://doi.org/10.3390/v14071589
  125. Marty G.D., Morrison D.B., Bidulka J. et al. Piscine reovirus in wild and farmed salmonids in British Columbia, Canada: 1974–2013 // J. Fish Dis. 2015. V. 38. P. 713–728. https://doi.org/10.1111/jfd.12285
  126. Masood N., Malik S.S., Raja M.N. et al. Unraveling the epidemiology, geographical distribution, and genomic evolution of potentially lethal coronaviruses (SARS, MERS, and SARS CoV-2) // Front. Cell. Infect. Microbiol. 2020. V. 10. Art. 499. https://doi.org/10.3389/fcimb.2020.00499
  127. Matthews R.E.F. The history of viral taxonomy // A critical appraisal of viral taxonomy / Ed. R.E.F. Matthews. Boca Raton, Florida: CRC Press. 1983. P. 1–35.
  128. Matthijnssens J., Attoui H., Bányai K. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Sedoreoviridae 2022 // J. Gen. Virol. 2022a. V. 103. Art. ID 001782. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001782
  129. Matthijnssens J., Attoui H., Bányai K. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Spinareoviridae 2022 // J. Gen. Virol. 2022b. V. 103. Art. ID 001781. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001781
  130. McKeown D.A., Stevens K., Peters A.F. et al. Phaeoviruses discovered in kelp (Laminariales) // ISME J. 2017. V. 11. P. 2869–2873. https://doi.org/10.1038/ismej.2017.130
  131. McLoughlin M.F., Graham D.A. Alphavirus infections in salmonids. A review // J. Fish Dis. 2007. V. 30. P. 511–531. https://doi.org/10.1111/j.1365-2761.2007.00848.x
  132. Middelboe M., Brussaard C.P.D. Marine viruses: key players in marine ecosystems // Viruses. 2017. V. 9. Art. ID 302. https://doi.org/10.3390/v9100302
  133. Miranda J.A., Culley A.I., Schvarcz C.R., Steward G.F. RNA viruses as major contributors to Antarctic virioplankton // Environ. Microbiol. 2016. V. 18. P. 3714–3727. https://doi.org/10.1111/1462-2920.13291
  134. Mizuno C.M., Prajapati B., Lucas-Staat S. et al. Novel haloarchaeal viruses from Lake Retba infecting Haloferax and Halorubrum species // Environ. Microbiol. 2019. V. 21. P. 2129–2147. https://doi.org/10.1111/1462-2920.14604
  135. Moelling K., Broecker F. Viruses and evolution – viruses first? A personal perspective // Front. Microbiol. 2019. V. 10. Art. ID 523. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.00523
  136. Montanie H., Bossy J.-P., Bonami J.-R. Morphological and genomic characterization of two reoviruses (P and W2) pathogenic for marine crustaceans; do they constitute a novel genus of the Reoviridae family? // J. Gen. Virol. 1993. V. 74. P. 1555–1561. https://doi.org/10.1099/0022-1317-74-8-1555
  137. Munson-McGee J.H., Snyder J.C., Young M.J. Archaeal viruses from high-temperature environments // Genes (Basel). 2018. V. 9. Art. ID 128. https://doi.org/10.3390/genes9030128
  138. Mutoloki S., Jøssund T.B., Ritchie G. et al. Infectious pancreatic necrosis virus causing clinical and subclinical infections in Atlantic salmon have different genetic fingerprints // Front. Microbiol. 2016. V. 7. Art. ID 1393. https://doi.org/10.3389/fmicb.2016.01393
  139. Noda T. [Orthomyxoviruses // Uirusu. 2012. V. 62. P. 219–228. (На яп. яз.) https://doi.org/10.2222/jsv.62.219
  140. Notaro A., Poirot O., Garcin E.D. et al. Giant viruses of the Megavirinae subfamily possess biosynthetic pathways to produce rare bacterial-like sugars in a clade-specific manner // Microlife. 2022. V. 3. P. 1–23. https://doi.org/10.1093/femsml/uqac002
  141. Palacios G., Løvoll M., Tengs T. et al. Heart and skeletal muscle inflammation of farmed salmon is associated with infection with a novel reovirus // PLoS One. 2010. V. 5. e11487. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0011487
  142. Payet J.P., Suttle C.A. To kill or not to kill: the balance between lytic and lysogenic viral infections is driven by trophic status // Limnol. Oceanogr. 2013. V. 58. P. 465–474. https://doi.org/10.4319/lo.2013.58.2.0465
  143. Paul J.H. Prophages in marine bacteria: dangerous molecular time bombs or the key to survival in the seas? // ISME J. 2008. V. 2. P. 579–589. https://doi.org/10.1038/ismej.2008.35
  144. Peretti A., FitzGerald P.C., Bliskovsky V. et al. Genome sequence of a fish-associated polyomavirus, black sea bass (Centropristis striata) Polyomavirus 1 // Genome Announce. 2015. V. 3. e01476-14. https://doi.org/10.1128/genomeA.01476-14.
  145. Philosof A., Yutin N., Flores-Uribe J. et al. Novel abundant oceanic viruses of uncultured marine group II Euryarchaeota // Curr. Biol. 2017. V. 27. P. 1362–1368. https://doi.org/10.1016/j.cub.2017.03.052
  146. Plissier M. Inactivation in sea water and drinking water of certain enteroviruses // Arch. Gesamte Virusforsch. 1963. V. 13. P. 76–81.
  147. Poorvin L., Rinta-Kanto J.M., Hutchins D.A., Wilhelm S.W. Viral release of iron and its bioavailability to marine plankton // Limnol. Oceanogr. 2004. V. 49. P. 1734–1741. https://doi.org/10.4319/lo.2004.49.5.1734
  148. Prado-Alvarez M., García-Fernandez P., Faury N. et al. First detection of OsHV-1 in the cephalopod Octopus vulgaris. Is the octopus a dead-end for OsHV-1? // J. Invertebr. Pathol. 2021. V. 183. Art. ID 107553. https://doi.org/10.1016/j.jip.2021.107553
  149. Prangishvili D., Bamford D.H., Forterre P. et al. The enigmatic archaeal virosphere // Nat. Rev. Microbiol. 2017. V. 15. P. 724–739. https://doi.org/10.1038/nrmicro.2017.125
  150. Record N.R., Talmy D., Vage S. Quantifying tradeoffs for marine viruses // Front. Mar. Sci. 2016. V. 3. Art. 251. https://doi.org/10.3389/fmars. 2016.00251
  151. Ren W., Chen H., Renault T. et al. Complete genome sequence of acute viral necrosis virus associated with massive mortality outbreaks in the Chinese scallop, Chlamys farrer // Virol. J. 2013. V. 10. Art. 110. https://doi.org/10.1186/1743-422X-10-110
  152. Renault T., Novoa B. Viruses infecting bivalve mollusks // Aquat. Living Resour. 2004. V. 17. P. 397–409. https://doi.org/10.1051/alr:2004049
  153. Rima B., Balkema-Buschmann A., Dundon W.G. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Paramyxoviridae // J. Gen. Virol. 2019. V. 100. P. 1593–1594. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001328
  154. Rodger H.D., McCleary S.J., Ruane N.M. Clinical cardiomyopathy syndrome in Atlantic salmon, Salmo salar L. // J. Fish Dis. 2014. V. 37. P. 935–939. https://doi.org/10.1111/jfd.12186
  155. Rohwer F., Thurber R.V. Viruses manipulate the marine environment // Nature. 2009. V. 459. P. 207–212. https://doi.org/10.1038/nature08060
  156. Roux S., Brum J.R., Dutilh B.E. et al. Ecogenomics and potential biogeochemical impacts of globally abundant ocean viruses // Nature. 2016. V. 537. P. 689–693. https://doi.org/10.1038/nature19366
  157. Safonova M.V., Shchelkanov M.Yu., Khafizov K.F. et al. Sequencing and genetic characterization of two strains Paramushir virus obtained from the Tyuleniy Island in the Okhotsk Sea (2015) // Ticks Tick Borne Dis. 2019. V. 10. P. 269–279. https://doi.org/10.1016/j.ttbdis.2018.11.004
  158. Senčilo A., Jacobs-Sera D., Russell D.A. et al. Snapshot of haloarchaeal tailed virus genomes // RNA Biol. 2013. V. 10. P. 803–816. https://doi.org/10.4161/rna.24045
  159. Shchelkanov M.Yu., Yudin A.N., Antonov A.V. et al. Variability analysis of HIV-1 gp120 V3 region: II. Hierarchy of taxons // J. Biomol. Struct. Dyn. 1997. V. 15. P. 231–241.
  160. Shi M., Lin X.D., Chen X. et al. The evolutionary history of vertebrate RNA viruses // Nature. 2018. V. 556. P. 197–202. https://doi.org/10.1038/s41586-018-0012-7
  161. Shope R.E. The swine lungworm as a reservoir and intermediate host for swine influenza virus. IV. The demonstration of masked swine influenza virus in lungworm larvae and swine under natural conditions // J. Exp. Med. 1943. V. 77. P. 127–138.
  162. Siddell S.G., Smith D.B., Adriaenssens E. et al. Virus taxonomy and the role of the International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV) // J. Gen. Virol. 2023. V. 104. Art. ID 01840. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001840
  163. Simmonds P., Aiewsakun P. Virus classifcation – where do you draw the line? // Arch. Virol. 2018. V. 163. P. 2037–2046. https://doi.org/10.1007/s00705-018-3938-z
  164. Spencer R. A marine bacteriophage // Nature. 1955. V. 175. P. 690–691. https://doi.org/10.1038/175690a0
  165. Steward G.F., Culley A.I., Mueller J.A. et al. Are we missing half of the viruses in the ocean? // ISME J. 2013. V. 7. P. 672–679. https://doi.org/10.1038/ismej.2012.121
  166. Suttle C.A., Chan A.M., Cottrell M.T. Infection of phytoplankton by viruses and reduction of primary productivity // Nature. 1990. V. 347. P. 467–469. https://doi.org/10.1038/347467a0
  167. Suttle C.A. Marine viruses – major players in the global ecosystem // Nat. Rev. Microbiol. 2007. V. 5. P. 801–812. https://doi.org/10.1038/nrmicro1750
  168. Sutton T.D., Hill C. Gut bacteriophage: current understanding and challenges // Front. Endocrinol. 2019. V. 10. Art. 784. https://doi.org/10.3389/fendo.2019.00784
  169. Thingstad T.F. Elements of a theory for the mechanisms controlling abundance, diversity, and biogeochemical role of lytic bacterial viruses in aquatic systems // Limnol. Oceanogr. 2000. V. 45. P. 1320–1328.
  170. Thompson L., Zeng Q., Kelly L. et al. Phage auxiliary metabolic genes and the redirection of cyanobacterial host carbon metabolism // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2011. V. 108. P. E757–E764. https://doi.org/10.1073/pnas.1102164108
  171. Turner D., Kropinski A.M., Adriaenssens E.M. A roadmap for genome-based phage taxonomy // Viruses. 2021. V. 13. Art. ID 506. https://doi.org/10.3390/v13030506
  172. Valles S.M., Chen Y., Firth A.E. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Dicistroviridae // J. Gen. Virol. 2017. V. 98. P. 355–356. https://doi.org/10.1099/jgv.0.000756
  173. Van Doorslaer K., Chen Z., Bernard H.-U. et al. Virus Taxonomy Profile: Papillomaviridae // J. Gen. Virol. 2018. V. 99. P. 989–990. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001105
  174. Van Etten J.L., Graves M.V., Müller D.G. et al. Phycodnaviridae − large DNA algal viruses // Arch. Virol. 2002. V. 147. P. 1479–1516. https://doi.org/10.1007/s00705-002-0822-6
  175. Van Regenmortel M.H.V. Classes, taxa and categories in a hierarchical virus classification: a review of current debates of definitions and names of virus species // Bionomina. 2016. V. 10. P. 1–21. https://doi.org/10.11646/bionomina.10.1.1
  176. Vincent A., La Scola B., Papazian L. Advances in Mimivirus pathogenicity // Intervirology. 2010. V. 53. P. 304–309. https://doi.org/10.1159/000312915
  177. Vinjé J., Estes M.K., Esteves P. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Caliciviridae // J. Gen. Virol. 2019. V. 100. P. 1469–1470. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001332
  178. Walker P.J., Siddell S.G., Lefkowitz E.J. et al. Changes to virus taxonomy and the International Code of Virus Classifcation and Nomenclature ratifed by the International Committee on Taxonomy of Viruses (2019) // Arch. Virol. 2019. V. 164. P. 2417–2429. https://doi.org/10.1007/s00705-019-04306-w
  179. Walker P.J., Siddell S.G., Lefkowitz E.J. et al. Changes to virus taxonomy and the Statutes ratified by the International Committee on Taxonomy of Viruses (2020) // Arch. Virol. 2020. V. 165. P. 2737–2748. https://doi.org/10.1007/s00705-020-04752-x
  180. Walker P.J., Siddell S.G., Lefkowitz E.J. et al. Recent changes to virus taxonomy ratified by the International Committee on Taxonomy of Viruses (2022) // Arch. Virol. 2022. V. 167. P. 2429–2440. https://doi.org/10.1007/s00705-022-05516-5
  181. Waltzek T.B., Subramaniam K., Leis E. et al. Characterization of a peribunyavirus isolated from largemouth bass (Micropterus salmoides) // Virus Res. 2019. V. 273. Art. ID 197761. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2019.197761
  182. Wang H.-C., Hirono I., Maningas M.B.B. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Nimaviridae // J. Gen. Virol. 2019. V. 100. P. 1053–1054. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001248
  183. Weinbauer M.G., Bonilla-Findji O., Chan A.M. et al. Synechococcus growth in the ocean may depend on the lysis of heterotrophic bacteria // J. Plankton Res. 2011. V. 33. P. 465–476. https://doi.org/10.1093/plankt/fbr041
  184. Weinbauer M.G., Brettar I., Höfle M.G. Lysogeny and virus-induced mortality of bacterioplankton in surface, deep, and anoxic marine waters // Limnol. Oceanogr. 2003. V. 48. P. 1457–1465. https://doi.org/10.4319/lo.2003.48.4.1457
  185. Weitz J.S., Stock C.A., Wilhelm S.W. et al. A multitrophic model to quantify the effects of marine viruses on microbial food webs and ecosystem processes // ISME J. 2015. V. 9. P. 1352–1364. https://doi.org/10.1038/ismej.2014.220
  186. Weitz J.S., Wilhelm S. Ocean viruses and their effects on microbial communities and biogeochemical cycles // F1000 Biol. Rep. 2012. V. 4. Art. ID 17. https://doi.org/10.3410/B4-17
  187. Wickner R.B., Ghabrial S.A., Niber M.L. et al. Family Totiviridae // Virus taxonomy: Classification and nomenclature of viruses: Ninth report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. Tokyo: Elsevier Academic Press. 2011. P. 639–650.
  188. Wiik-Nielsen C.R., Løvoll M., Sandlund N. et al. First detection of piscine reovirus (PRV) in marine fish species // Dis. Aquat. Org. 2012. V. 97. P. 255–258. https://doi.org/10.3354/dao02425
  189. Williams T., Bergoin M., van Oers M.M. Diversity of large DNA viruses of invertebrates // J. Invertebr. Pathol. 2016. V. 147. P. 4–22. https://doi.org/10.1016/j.jip.2016.08.001
  190. Williamson K.E., Fuhrmann J.J., Wommack K.E., Radosevich M. Viruses in soil ecosystems: an unknown quantity within an unexplored territory // Annu. Rev. Virol. 2017. V. 4. P. 201–219. https://doi.org/10.1146/annurev-virology-101416-041639
  191. Williamson S.J., Houchin L.A., McDaniel L., Paul J.H. Seasonal variation in lysogeny as depicted by prophage induction in Tampa Bay, Florida // Appl. Environ. Microbiol. 2002. V. 68. P. 4307–4314. https://doi.org/10.1128/AEM.68.9.4307-4314.2002
  192. Wommack K.E., Ravel J., Hill R.T. et al. Population dynamics of Chesapeake Bay virioplankton: total-community analysis by pulsed-field gel electrophoresis // Appl. Environ. Microbiol. 1999. V. 65. P. 231–240. https://doi.org/10.1128/AEM.65.1.231-240.1999
  193. Woo P.C.Y., de Groot R.J., Haagmans B. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Coronaviridae 2023 // J. Gen. Virol. 2023. V. 104. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001843
  194. Woo A.C., Gaia M., Guglielmini J. et al. Phylogeny of the Varidnaviria morphogenesis module: congruence and incongruence with the tree of life and viral taxonomy // Front. Microbiol. 2021. V. 12. Art. ID 704052. https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.704052
  195. Woo P.C.Y., Lau S.K.P., Lam C.S.F. et al. Discovery of a novel bottlenose dolphin coronavirus reveals a distinct species of marine mammal coronavirus in Gammacoronavirus // J. Virol. 2014. V. 88. P. 1318–1331. https://doi.org/10.1128/JVI.02351-13
  196. Xue Q., Liu H., Zhu Z. et al. African swine fever virus regulates host energy and amino acid metabolism to promote viral replication // J. Virol. 2022. V. 96. e0191921. https://doi.org/10.1128/JVI.01919-21
  197. Zell R., Delwart E., Gorbalenya A.E. et al. ICTV Virus Taxonomy Profile: Picornaviridae // J. Gen. Virol. 2017. V. 98. P. 2421–2422. https://doi.org/10.1099/jgv.0.000911
  198. Zerbini F.M., Siddell S.G., Mushegian A.R. et al. Differentiating between viruses and virus species by writing their names correctly // Arch. Virol. 2022. V. 167. P. 1231–1234. https://doi.org/10.1007/s00705-021- 05323-4
  199. Zhang R., Li Y., Yan W., et al. Viral control of biomass and diversity of bacterioplankton in the deep sea // Commun. Biol. 2020. V. 3. Art. 256. https://doi.org/10.1038/s42003-020-0974-5
  200. Zhang Z., Wu Z., Liu H. et al. Genomic analysis and characterization of phages infecting the marine Roseobacter CHAB-I-5 lineage reveal a globally distributed and abundant phage genus // Front. Microbiol. 2023. V. 14. Art. ID 1164101. https://doi.org/10.3389/fmicb.2023.1164101
  201. Zhang C.L., Xie W., Martin-Cuadrado A.-B., Rodriguez-Valera F. Marine Group II Archaea, potentially important players in the global ocean carbon cycle // Front. Microbiol. 2015. V. 6. Art. 1108. https://doi.org/10.3389/fmicb.2015.01108
  202. Zhao M., Xu L., Bowers H., Schott E.J. Characterization of two novel toti-like viruses co-infecting the Atlantic blue crab, Callinectes sapidus, in its northern range of the United States // Front. Microbiol. 2022. V. 13. Art. ID 855750. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.855750
  203. Zhu Y., Shang J., Peng C., Sun Y. Phage family classification under Caudoviricetes: a review of current tools using the latest ICTV classification framework // Front. Microbiol. 2022. V. 13. Art. ID 1032186. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.1032186
  204. Zimmerman A.E., Howard-Varona C., Needham D.M. et al. Metabolic and biogeochemical consequences of viral infection in aquatic ecosystems // Nat. Rev. Microbiol. 2020. V. 18. P. 21–34. https://doi.org/10.1038/s41579-019-0270-x

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2024 The Russian Academy of Sciences

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».