ВЛИЯНИЕ РАЗЛИЧНЫХ ПОКРЫТИЙ НА ИММОБИЛИЗАЦИЮ БИОМОЛЕКУЛ В ЯЧЕЙКАХ ИЗ ЩЕТОЧНЫХ ПОЛИМЕРОВ

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Биочипы с белковыми и олигонуклеотидными зондами используются для анализа образцов белков и нуклеиновых кислот. Ключевые задачи технологии - подбор материалов для подложек и функционализация поверхности. В данной работе проводили модификацию подложек из полибутилентерефталата, покрывая их фотоактивными полимерами: поли(этилен-со-пропилен-со-5-метилен-2-норборненом), ацетилцеллюлозой, поливинилацетатом и поливинилбутиралем. Покрытия наносили методом центрифугирования и высушивали. Исследовали влияние покрытия на характеристики биочипов. Методом фотоинициируемой радикальной полимеризации получали матрицу гидрофильных ячеек из щеточных полимеров с эпоксидными группами для иммобилизации ДНК-зондов и иммуноглобулинов человека. Функциональность зондов исследовали гибридизационным анализом и реакцией со специфичными антителами. Оценивали эффективность связывания зондов с молекулярными мишенями на биочипах с различными покрытиями. Ячейки на подложках с покрытиями поливинилбутиралем и поли(этилен-со-пропилен-со-5-метилен-2-норборненом) продемонстрировали лучшую эффективность связывания и слабую адсорбцию мишеней, обеспечивая высокую контрастность флуоресцентного изображения после связывания зондов. Биочипы на таких подложках перспективны для технологии микроанализа "лаборатория на чипе".

Об авторах

Г. Ф. Штылев

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Россия, 11999 Москва

И. Ю. Шишкин

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Россия, 11999 Москва

Р. А. Мифтахов

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Email: gosha100799@mail.ru
Россия, 11999 Москва

С. А. Поляков

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Россия, 11999 Москва

В. Е. Шершов

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Россия, 11999 Москва

В. Е. Кузнецова

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Россия, 11999 Москва

С. А. Суржиков

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Россия, 11999 Москва

В. И. Бутвиловская

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Россия, 11999 Москва

В. Е. Барский

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Россия, 11999 Москва

В. А. Василисков

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Россия, 11999 Москва

О. А. Заседателева

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Россия, 11999 Москва

А. В. Чудинов

Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН

Россия, 11999 Москва

Список литературы

  1. Stumpf A., Brandstetter T., Hübner J., Rühe J. // PLoS One. 2019. V. 14. P. e0225525. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0225525
  2. Gryadunov D., Dementieva E., Mikhailovich V., Nasedkina T., Rubina A., Savvateeva E., Fesenko E., Chudinov A., Zimenkov D., Kolchinsky A., Zasedatelev A. // Exp. Rev. Mol. Diagn. 2011. V. 11. P. 839- 853. https://doi.org/10.1586/erm.11.73
  3. Mateo C., Fernández-Lorente G., Abian O., Fernández-Lafuente R., Guisán J.M. // Biomacromolecules. 2000. V. 1. P. 739-745. https://doi.org/10.1021/bm000071q
  4. Chi Q., Zhang J., Andersen J.E., Ulstrup J. // J. Phys. Chem. B. 2001. V. 105. P. 4669-4679. https://doi.org/10.1021/jp0105589
  5. Sullivan T.P., Huck W.T. // Eur. J. Org. Chem. 2002. V. 2003. P. 17-29. https://doi.org/10.1002/1099-0690(200301)2003:1%3C17::AID-EJOC17%3E3.0.CO;2-H
  6. Zhi Z.L., Powell A.K., Turnbull J.E. // Anal. Chem. 2006. V. 78. P. 4786-4793. https://doi.org/10.1021/ac060084f
  7. Yi S.S., Noh J.M., Lee Y.S. // J. Mol. Catal. B Enzym. V. 57. P. 123-129. https://doi.org/10.1016/j.molcatb.2008.08.002
  8. Singh V., Ahmad S. // Cellulose. 2012. V. 19. P. 1759-1769. https://doi.org/10.1007/s10570-012-9749-6
  9. Akkoyun A., Bilitewski U. // Biosens. Bioelectron. 2002. V. 17. P. 655-664. https://doi.org/10.1016/s0956-5663(02)00029-5
  10. Guerrero C., Vera C., Serna N., Illanes A. // Bioresour. Technol. 2017. V. 232. P. 53-63. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2017.02.003
  11. Kobayashi H., Ikada Y. // Biomaterials. 1991. V. 12. P. 747-751. https://doi.org/10.1016/0142-9612(91)90024-5
  12. Isobe N., Lee D.S., Kwon Y.J., Kimura S., Kuga S., Wada M., Kim U.J. // Cellulose. 2011. V. 18. P. 1251- 1256. https://doi.org/10.1007/s10570-011-9561-8
  13. Mueller M., Bandl C., Kern W. // Polymers. 2022. V. 14. P. 608. https://doi.org/10.3390/polym14030608
  14. Zhao B., Brittain W.J. // Progr. Polym. Sci. 2000. V. 25. P. 677-710. https://doi.org/10.1016/S0079-6700(00)00012-5
  15. Miftakhov R.A., Ikonnikova A.Yu., Vasiliskov V.A., Lapa S.A., Levashova A.I., Kuznetsova V.E., Shershov V.E., Zasedatelev A.S., Nasedkina T.V., Chudinov A.V. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2023. V. 49. P. 1143-1150. https://doi.org/10.1134/S1068162023050217
  16. Shaskolskiy B., Kandinov I., Kravtsov D., Vinokurova A., Gorshkova S., Filippova M., Kubanov A., Solomka V., Deryabin D., Dementieva E., Gryadunov D. // Polymers. 2021. V. 13. P. 3889. https://doi.org/10.3390/polym13223889
  17. Shtylev G.F., Shishkin I.Yu., Shershov V.E., Kuznetsova V.E., Kachulyak D.A., Butvilovskaya V.I., Levashova A.I., Vasiliskov V.A., Zasedateleva O.A., Chudinov A.V. // Russ. J. Bioorg. Chem. 2024. V. 50. P. 2036-2049. https://doi.org/10.1134/S106816202405033

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Российская академия наук, 2025

Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).