Monocyte Subpopulations Analysis in Patients under Cardiac Surgery in Conditions of Modified Extracorporeal Circulation Using Hemodiafiltration

V. M. Zemskov; Земсков В. М.; R. A. Kornelyuk; Корнелюк Р. А.; A. V. Sharanda; Шаранда А. В.; G. P. Plotnikov; Плотников Г. П.; V. A. Popov; Попов В. А.; A. M. Zemskov; Земсков А. М.; V. S. Demidova; Демидова В. С.; A. N. Kulikova; Куликова А. Н.; N. S. Shishkina; Шишкина Н. С.; A. V. Balbutsky; Балбуцкий А. В.; M. S. Solovieva; Соловьева М. С.; M. N. Kozlova; Козлова М. Н.; O. S. Vasiliev; Васильев О. С.

doi:10.31857/S004213242306011X

Анализ субпопуляций моноцитов у пациентов при кардиохиругических вмешательствах в условиях модифицированного искусственного кровообращения с применением гемодиафильтрации

Авторы: Земсков В.М.¹, Корнелюк Р.А.¹, Шаранда А.В.¹, Плотников Г.П.¹, Попов В.А.¹, Земсков А.М.², Демидова В.С.¹, Куликова А.Н.¹, Шишкина Н.С.¹, Балбуцкий А.В.¹, Соловьева М.С.¹, Козлова М.Н.¹, Васильев О.С.³
Учреждения:
1. Национальный медицинский исследовательский центр хирургии им. А.В. Вишневского
2. Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко
3. Российский университет спорта “ГЦОЛИФК”
Выпуск: Том 143, № 6 (2023)
Страницы: 580-586
Раздел: Статьи
Статья получена: 24.12.2023
Статья опубликована: 01.11.2023
URL: https://ogarev-online.ru/0042-1324/article/view/229431
DOI: https://doi.org/10.31857/S004213242306011X
EDN: https://elibrary.ru/TVZFWL
ID: 229431

Цитировать

Полный текст

Аннотация
Об авторах
Список литературы
Дополнительные файлы
Статистика

Аннотация

У пациентов, подвергнутых кардиохирургическим операциям в условиях искусственного кровообращения, применяли продолженную высокообъемную управляемую гемодиафильтрацию. В циркулирующих клетках исследовали до операции и на 3 и 10 сут после нее содержание субпопуляций моноцитов М1, М2, М3, СD4⁺ и общих моноцитов. Получены результаты, которые могут быть применены в диагностике и прогнозировании исходов кардиохирургических вмешательств.

Ключевые слова

субпопуляции моноцитов, искусственное кровообращение, кардиохирургические вмешательства

Список литературы

Аникина Е.В., Цыганкова А.Р. Клеточные маркеры хронической обструктивной болезни легких от воздействия аэрозолей, содержащих наночастицы // Мед. труда пром. экол. 2020. Т. 60 (11). С. 723–726.
Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.: Медгиз, 1962. 180 с.
Ганичева А.В., Ганичев А.В. Построение доверительных интервалов на основе неравенства Чебышева и рекуррентного метода // Вестн. НГУЭУ. 2022. № 1. С. 211–223. https://doi.org/10.34020/2073-6495-2022-1-211-223
Григорьев Е.В., Плотников Г.П., Матвеева В.Г. и др. Способ предупреждения развития системного воспалительного ответа у кардиохирургических пациентов после искусственного кровообращения. Патент RU 2641173 C1. Заяв. 31.10.2016. Опубл. 16.01.2018.
Евгина С.А., Савельев Л.И. Современные теория и практика референтных интервалов // Лаб. служба. 2019. Т. 8 (2). С. 36–44. https://doi.org/10.17116/labs2019802136
Земсков В.М., Алексеев А.А., Козлова М.Н. и др. Иммунная диагностика септических осложнений при ожогах // Успехи соврем. биол. 2015. Т. 135 (6). С. 531–541.
Земсков В.М., Ревишвили А.Ш., Козлова М.Н. и др. Анализ субпопуляций моноцитов при сердечно-сосудистой, ожоговой и иной патологии (классификация 2010 г.) // Мед. совет. 2023. Т. 17 (4). С. 8–17.
Курбацкий А.И. Лекция 5. Доверительные интервалы. М.: МШЭ МГУ, 2020. С. 1–32.
Ревишвили А.Ш., Чагирев В.Н., Плотников Г.П. и др. Способ интраоперационной стабилизации гомеостаза пациента при кардиохирургическом вмешательстве в условиях длительного искусственного кровообращения. Патент RU 2723752 C1. Заяв. 25.02.2019. Опубл. 17.06.2020.
Титов Л.Б. Моноциты, макрофаги, дендритные и миелоидные супрессорные клетки: генез, классификация, иммунобиологические свойства // Весці Нацыянальнай акадэміі навук Беларусі. Серыя медыцынскіх навук. 2018. Т. 15 (3). С. 363–382.
Хубулава Г.Г., Марченко С.П., Дубова Е.В., Суворов В.В. Роль модифицированной ультрафильтрации в уменьшении системных проявлений воспаления в кардиохирургии // Педиатр. 2016. Т. 7 (1). С. 106–110.
Ярмамедов Д.M., Липатов В.А. Метод доверительных интервалов в биологических и медицинских исследованиях // Innova. 2016. № 3 (4). С. 13–14. https://doi.org/10.21626/innova/2016.3/03
Borst J., Ahrends T., Bąbała N. et al. CD4+ T cell help in cancer immunology and immunotherapy // Nat. Rev. Immunol. 2018. V. 18 (10). P. 635–647. https://doi.org/10.1038/s41577-018-0044-0
Chapman C.M., Beilby J.P., McQuillan B.M. et al. Monocyte count, but not C-reactive protein or interleukin-6, is an independent risk marker for subclinical carotid atherosclerosis // Stroke. 2004. V. 35. P. 1619–1624.
Crowe S., Mills J., McGrath M.S. Quantitative immunocytofluorographic analysis of CD4 surface antigen expression and HIV infection of human peripheral blood monocyte/macrophages // AIDS Res. Hum. Retroviruses. 1987. V. 3 (2). P. 135–145. https://doi.org/10.1089/aid.1987.3.135
Geleziunas R., Bour S., Boulerice F. et al. Diminution of CD4 surface protein but not CD4 messenger RNA levels in monocytic cells infected by HIV-1 // AIDS. 1991. V. 5. P. 29–33. https://doi.org/10.1097/00002030-199101000-00004
Graziani-Bowering G.M., Filion L.G. Down regulation of CD4 expression following isolation and culture of human monocytes // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2000. V. 7 (2). P. 182–191. https://doi.org/10.1128/CDLI.7.2.182-191.2000
Graziani-Bowering G.M., Filion L.G., Thibault P., Kozlowski M. CD4 is active as a signaling molecule on the human monocytic cell line Thp-1 // Exp. Cell Res. 2002. V. 279 (1). P. 141–152. https://doi.org/10.1006/excr.2002.5581
Hristov M., Schmitz S., Nauwelaers F., Weber C. A flow cytometric protocol for enumeration of endothelial progenitor cells and monocyte subsets in human blood // J. Immunol. Methods. 2012. V. 381. P. 9–13.
Ji J., Sahu G.K., Braciale V.L., Cloyd M. HIV-1 induces IL-10 production in human monocytes via a CD4-independent pathway // Int. Immunol. 2005. V. 17 (6). P. 729–736. https://doi.org/10.1093/intimm/dxh252
Kampalath B., Cleveland R.P., Kass L. Reduced CD4 and HLA-DR expression in neonatal monocytes // Clin. Immunol. Immunopathol. 1998. V. 87 (1). P. 93–100. https://doi.org/10.1006/clin.1997.4505
Kawakami Y. Autoimmune diseases // Chiryo. 1962. V. 44. P. 2145–2154.
Kazazi F., Mathijs J.M., Foley P., Cunningham A.L. Variations in CD4 expression by human monocytes and macrophages and their relationship to infection with the human immunodeficiency virus // J. Gen. Virol. 1989. V. 70 (10). P. 2661–2672. https://doi.org/10.1099/0022-1317-70-10-2661
Neudorf S., DeLaat C., Jones M. Expression of the CD4 molecule on acute nonlymphocytic leukemia (ANLL) cell lines // J. Clin. Lab. Anal. 1989. V. 3 (5). P. 312–315. https://doi.org/10.1002/jcla.1860030510
Pietrella D., Monari C., Retini C. et al. Cryptococcus neoformans and Candida albicans regulate CD4 expression on human monocytes // J. Infect. Dis. 1998. V. 178 (5). P. 1464–1471. https://doi.org/10.1086/314458
Ruff M.R., Martin B.M., Ginns E.I. et al. CD4 receptor binding peptides that block HIV infectivity cause human monocyte chemotaxis. Relationship to vasoactive intestinal polypeptide // FEBS Lett. 1987. V. 211 (1). P. 17–22. https://doi.org/10.1016/0014-5793(87)81265-6
Ruterbusch M., Pruner K.B., Shehata L., Pepper M. In vivo CD4+ T cell differentiation and function: revisiting the Th1/Th2 paradigm // Annu. Rev. Immunol. 2020. V. 38. P. 705–725. https://doi.org/10.1146/annurev-immunol-103019-085803
Scriba A., Schneider M., Grau V. et al. Rat monocytes up-regulate NKR-P1A and down-modulate CD4 and CD43 during activation in vivo: monocyte subpopulations in normal and IFN-γ-treated rats // J. Leukoc. Biol. 1997. V. 62 (6). P. 741–752. https://doi.org/10.1002/jlb.62.6.741
Szabo G., Miller C.L., Kodys K. Antigen presentation by the CD4 positive monocyte subset // J. Leukoc. Biol. 1990. V. 47 (2). P. 111–120. https://doi.org/10.1002/jlb.47.2.111
Zhen A., Krutzik S.R., Levin B.R. et al. CD4 ligation on human blood monocytes triggers macrophage differentiation and enhances HIV infection // J. Virol. 2014. V. 88 (17). P. 9934–9946. https://doi.org/10.1128/jvi.00616-14