Chemical composition and biological activity of wild Linum (Linaceae) Species
- 作者: Naumenko-Svetlovа A.A.1
-
隶属关系:
- V. L. Komarov Botanical Institute, Russian Academy of Sciences
- 期: 卷 60, 编号 1 (2024)
- 页面: 21-53
- 栏目: REVIEWS
- URL: https://ogarev-online.ru/0033-9946/article/view/258198
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0033994624010026
- EDN: https://elibrary.ru/HHQHXH
- ID: 258198
如何引用文章
全文:
详细
The review presents data from literature sources on the component composition and biological activity of aboveground and underground parts of wild species of the genus Linum L. (Linaceae DC. ex Perleb). In recent decades, studies have been carried out on the component composition of not only flaxseed oil, but also cell cultures in vitro. This information is especially relevant for starting herbal materials derived from wild Linum species with small habitats or insignificant thicket density. Currently, information on the component composition and biological activity of oils or extracts has been obtained for 54 wild Linum species, belonging to 8 sections of 2 subgenera. In the aboveground and underground parts of the studied wild species of the genus Linum, the following sunstances were found: mucilage (in leaves and seeds), proteins (in seeds), vitamins (in leaves, seeds), alkaloids, flavonoids, saponins, coumarins, tannins, pigments, cyanogenetic glucosides and lignans. Essential oil was isolated from the aboveground flowering parts of L. perenne L., L. ausrtiacum L., L. hirsutum L., L. pubescens Willd. ex Schult., L. tenuifolium L., and L. catharticum L. The chemosystematics does not contradict the system we previously compiled based on morphological, anatomical and molecular characteristics of Linum species. Asian and European herbal medicine traditionally uses aboveground parts of L. perenne, L. baicalense Juz., L. altaicum Ledeb. ex Juz., L. olgae Juz. and L. heterosepalum Regel. The seeds and fatty oil exhibit coating, wound-healing, mild laxative, and analgesic properties. Extracts of wild-growing Linum species, as well as their individual components, have varied bioactivity like antibacterial, antimicrobial, antifungal, yeast-static, antiviral, cytotoxic, inhibitory, antitumor, anti-inflammatory, wound healing, and antioxidant. Species characterized by a high content of aryldihydronaphthalene-type lignans (a typical representative is justicidin B) have an antiviral effect and are effective against SARS-Cov-2. The yellow-flowered Linum species in the section Syllinum, with predominant aryltetralin lignans (e.g. 6-methoxypodophyllotoxin and its derivatives), exhibit anticancer activity. In the section Linopsis, L. corymbulosum Reichenb., which contains (–)-hinokinin, may prove to be an object of comprehensive research as a promising source of domestic herbal substances that can be used as adjunctive treatments in the anti-hepatitis B therapy.
全文:
Род Linum L. (лен) – один из самых крупных родов семейства льновые Linaceae DC. ex Perleb, в полном объеме насчитывает свыше 200 видов, распространенных в умеренных и субтропических областях обоих полушарий и относящихся к 2 подродам, 9 секциям и 8 подсекциям [1]. По типу жизненной формы представители разных секций рода относятся к поликарпическим стержнекорневым каудексовым многолетним, реже малолетним травянистым растениям, однолетним травам, или полукустарничкам (табл. 1). Листья сидячие, очередные, реже супротивные (L. catharticum L. и некоторые виды секции Linopsis (Reichenb.) Engelm.) или нижние мутовчатые (некоторые североамериканские виды секции Linopsis). По форме они бывают линейными, ланцетными, линейно-ланцетными, обратнояйцевидными, продолговатыми, узкоэллиптическими или лопатчатыми, цельнокрайными или мелкопильчатыми, голыми или опушенными, с 1 или 3–5 параллельными, в разной степени выраженными жилками, иногда с 2 коричневатыми стипулярными железками при основании (только у представителей секций Syllinum Griseb. и Tubilinum Svetlova). Цветки у представителей рода пятичленные, обоеполые, актиноморфные, гетеростильные (с длинными тычинками и короткими столбиками у одних растений и с короткими тычинками и длинными столбиками у других), либо гомостильные (с тычинками и столбиками одинаковой или почти одинаковой длины), энтомофильные, самоопыляющиеся, собраны в цимозные соцветия. Чашелистики свободные, цельные, черепитчатые, по краям со стебельчатыми железками, реснитчатые или белоперепончатые, без железок и ресничек. Лепестки свободные, с ноготком (иногда соединенные в короткую трубку), длиннее чашелистиков, разнообразной окраски (голубые, синие, желтые, реже розовые, фиолетовые, красные или белые). Тычинок 5, чередующихся с лепестками; нити тычинок в основании дельтовидно расширенные, как правило, свободные или сросшиеся в самом основании, редко (L. nodiflorum L.) тычиночные нити срастаются по всей длине, охватывают коробочку и возвышаются над ней в виде трубки; иногда присутствуют зубцевидные стаминодии. Плод – септицидная коробочка, (1.8)2–7(8) мм дл., (1.8)2–7(8) мм шир., шаровидной, сплюснуто-шаровидной, шаровидно-яйцевидной или яйцевидной формы, раскрывающаяся 10 односемянными сегментами, редко нераскрывающаяся или почти нераскрывающаяся (L. usitatissimum L.). Коробочки на поперечном срезе округлые, реже 10- или 5-гранные; разделены перегородками на 5 гнезд, в каждом из которых лежит по 2 семени, в свою очередь отделенных друг от друга ложными перегородками. Семена (1.1)2–5(6) мм в дл., (0.7)1–3(4) мм шир., обратнояйцевидной или эллипсоидальной формы, в поперечном сечении у большинства видов они эллиптические, редко округлотрехгранные (L. nodiflorum из секции Tubilinum). Окраска семян преимущественно темно-коричневая, иногда – светло-коричневая (виды секций Syllinum и Tubilinum). У культурного вида L. usitatissimum семена могут быть желтыми, оливковыми, зелеными, с красноватым или черноватым оттенками [1].
Как показали наши исследования [1–3], на территории России и сопредельных государств, а также стран Средней и Центральной Азии, встречаются представители всех известных секций, выделенных в роде Linum. Часть этих видов является эндемичными для конкретных регионов, а ареалы других – охватывают большие территории, выходящие за пределы России и сопредельных государств (табл. 1). Исследованные виды произрастают в умеренных и субтропических областях обоих полушарий и встречаются в разных экологических условиях: на равнинах и в горах (до высоты 3000–3900 м над ур. м.), часто на каменистых и щебнистых склонах, меловых и известняковых обнажениях, в степных сообществах, на остепненных лугах, на субальпийских и альпийских лугах, на лесных полянах и опушках, залежах, окраинах полей, иногда на засоленных болотах.
Таблица 1. Исследованные дикорастущие представители рода Linum
Table. 1. The studied wild Linum species
Секция Section | N | Вид Species | Географическое распространение Geographical distribution | Литературные источники Literature |
Section Adenolinum (Reichenb.) Juz. | 1 | 1L. perenne L. | Вост. Европа; Атл. Европа: Великобритания (Кембридж); Центр. Европа; Южн. Европа: Словения; Зап. и Вост. Сиб.; Сред. Азия; Зап. Азия: Афганистан; Центр. Азия: Монголия, Зап. Кашгария (сел. Донг-арык), Джунгария; Вост. Азия: Сев.-Вост. Китай (Дунбэй); Южн. Азия: Пакистан; Юго-Вост. Азия: Южн. Китай (Юньнань) Eastern Europe; Atlantic Europe: UK (Cambridge); Central Europe; Southern Europe: Slovenia; Western and Eastern Siberia; Middle Asia; Western Asia: Afghanistan; Centeral Asia: Mongolia, West. Kashgaria (Dong-aryk village), Dzungaria; Eastern Asia: North-Eastern China (Dongbei); Southern Asia: Pakistan; South-Eastern Asia: South China (Yunnan) | 41 |
2 | 1L. austriacum L. | Вост. Европа; Атл. Европа: Великобритания (Кембридж); Центр. Европа; Южн. Европа Eastern Europe; Atlantic Europe: Great Britain (Cambridge); Centeral Europe; Southern Europe | 41 | |
1L. austriacum L. subsp. glaucescens (Boiss.) P.H. Davis (= L. glaucum Boiss. et Noё) | Кавказ; Зап. Азия: Турция, Ирак, Иран Caucasus; Western Asia: Türkiye, Iraq, Iran | 41 | ||
3 | 1L. squamulosum Rudolphi (= L. austriacum subsp. euxinum = L. euxinum Juz.) | Вост. Европа: Крым; Кавказ: Сев.-Зап. Закавказье Eastern Europe: Crimea; Caucasus: North-Western Transcaucasia | 41 | |
4 | 1L. altaicum Ledeb. ex Juz. | Зап. Сибирь: Алт.; Сред. Азия; Центр. Азия: Монголия, Зап. Кашгария (в 25 км на юг от пос. Иркештам, дол. р. Сулу-Сакал), Сев.-Зап. Китай Western Siberia: Altay; Middle Asia; Central Asia: Mongolia, Western Kashgaria (25 km south of the village of Irkeshtam, along the Sulu-Sakal river), North-Western China | 41 | |
5 | 1L. leonii F. W. Schultz | Центр. Европа: Франция, Германия Central Europe: France, Germany | 41 | |
6 | 1L. lewisii Pursh | Сев. Америка North America | 41 | |
7 | 1L. anglicum Mill. | Атл. Европа: Великобритания Atlantic Europe: Great Britain | 41 | |
8 | 1L. macrorhizum Juz. (= L. mesostylum Juz.) | Зап. (Афганистан) и Сред. Азия Western Asia (Afghanistan), Middle Asia | 41 | |
9 | 1L. meletonis Hand.-Mazz. | Зап. Азия: Турция, Сев. Ирак Western Asia (Türkiye, Iraq) | 41 | |
10 | 1L. baicalense Juz. | Вост. Сибирь; Центр. Азия: Монголия Eastern Siberia; Centeral Asia: Mongolia | 41 | |
11 | 1L. komarovii Juz. | Вост. Сибирь; Дальний Восток: Охотский р-он Eastern Siberia; Far East (Ochotsty district) | 41 | |
Section Adenolinum (Reichenb.) Juz. | 12 | 1L. extraaxillare Kit. | Вост. Европа: Украина (редко); Центр. Европа: Австрия (Калькальпен), Венгрия (г. Татры, Золим), Словакия (Зап. (г. Особита, г. Каспровы Верх) и Вост. (Бельянские Татры, долина Зуберец) Татры), Румыния (г. Бучеч, г. Фагарас, г. Мармарош, Бистрица, Брашов); Южн. Европа: Словения Eastern Europe: Ukraine (rare); Centeral Europe: Austria (Kalkalpen), Hungary (Tatry, Zolim), Slovakia (West (Osobita, Kasprowy Wierch) and East (Belanskie Tatras, Zuberec Valley) Tatras), Romania (Bucec, Fagaras, Marmaros, Bistrita, Brasov); Southern Europe: Slovenia | 41 |
13 | 1L. alpinum Jacq. | Центр. и Южн. Европа Centeral and Southern Europe | 41, 85 | |
14 | 1L. pallescens Bunge | Зап. Сиб. (реки Чуя и Иртыш), Вост. Сиб.: Республика Тыва; Сред. Азия; Центр. Азия: Монголия, Кашгария, Джунгария, Сев.-Зап. Китай Western Siberia (Chuya and Irtysh rivers), Eastern Siberia: Republic of Tyva; Central Asia: Mongolia, Kashgaria, Dzungaria, North-West China | 41 | |
15 | 1L. amurense Bunge | Вост. Сиб., Дальн. Вост., Центр. Азия: Монголия, Китай (Дунбэй) Eastern Siberia, Far East, Central Asia: Mongolia, China (Dongbei) | 41 | |
Section Stellerolinum Juz. ex Probat. | 16 | 2L. stelleroides Planch. | Вост. Сибирь, Дальн. Восток, Вост. Азия (Китай, Япония) Eastern Siberia, Far East, Eastern Asia (China, Japan) | 1 |
Section Linum | 17 | 3L. bienne Mill. | Кавказ, Центр., Вост. и Южн. Европа, Сев. Африка (Морокко) Caucasus, Central, Eastern and Southern Europe, Northern Africa (Morocco) | 1 |
18 | 1L. narbonense L. | Центр. Европа (Сев. Италия), Зап. Турция, Сев. Африка (Морокко) Central Europe (Northern Italy), Western Türkiye, Northern Africa (Morocco) | 85 | |
19 | 1L. nervosum Waldst. et Kit. | Кавказ, Вост., Центр. и Южн. Европа, Зап. Азия Caucasus, Eastern, Central. and Southern Europe, Western Asia | 1 | |
20 | 4L. olympicum Boiss. | Южн. Европа (Греция, Турция) Southern Europe (Greece, Türkiye) | 85 | |
21 | 1L. bungei Boiss. | Зап. Азия (Иран) Western Asia (Iran) | 85 | |
22 | 2L. marginale A. Cunn. ex Planch. | Сев. Америка, Австралия North America, Australia | 85 | |
23 | 2L. monogynum Hort. ex Reichenb. (=L. hologinum Reichenb.) | Южн. Европа (Албания, Болгария, Греция, Румыния, бывшая Югославия) Southern Europe (Albania, Bulgaria, Greece, Romania, former Yugoslavia) | 85 | |
Section Linum | 24 | 2L. decumbens Desf. | Центр. Европа (Сев. Италия), Зап. Турция, Сев. Африка Central Europe (Northern Italy), Western Türkiye, Northern Africa | 85 |
25 | 2L. grandiflorum Desf. | Сев. Африка Northern Africa | 1 | |
Section Syllinum Griseb. | 26 | 1L. flavum L. | Вост., Центр. (Германия) и Южн. Европа Eastern, Central (Germany) and Southern Europe | 1 |
27 | 1L. thracicum Degen | Южн. Европа Southern Europe | 85 | |
28 | 4L. ucranicum (Griseb. ex Planch.) Czern. | Вост. Европа Eastern Europe | 1 | |
4L. uralense Juz. (= L. ucranicum subsp. uralense (Juz.) T.V. Egorova) | Вост. Европа Eastern Europe | 1 | ||
29 | 4L. tauricum Willd. | Кавказ; Вост. Европа (Крым), Южн. Европа (Румыния, Болгария) Caucasus, Eastern Europe (Crimea), Southern Europe (Romania, Bulgaria) | 1 | |
30 | 4L. mucronatum Bertol. subsp. mucronatum | Зап. Азия: вост. Турция, Сирия, Ливан, сев. Ирак, зап. Иран Western Asia: Eastern Türkiye, Syria, Lebanon, Northern Iraq, Western Iran | 1, 85 | |
4Linum mucronatum subsp. orientale (Boiss. et Heldr.) P.H. Davis | Юго-Зап. Азия: юг Турции, зап. Сирия, Ирак, зап. Иран, Ливан и Палестина South-Western Asia: Southern Türkiye, Western Syria, Iraq, Western Iran, Lebanon and Palestine | 1, 85 | ||
4L. mucronatum Bertol. subsp. armenum (Bordz.) P.H. Davis | Кавказ; Юго-Зап. Азия (центр. и вост. Сирия, сев. Ирак, сев.-зап. Иран Caucasus; South-Western Asia (Central and Eastern Syria, Northern Iraq, Northwestern Iran) | 1 | ||
31 | 4L. czernjajevii Klok. | Вост. Европа (Крым) Eastern Europe (Crimea) | 1 | |
32 | 4L. elegans Spruner ex Boiss. | Южн. Европа Southern Europe | 36, 85 | |
33 | 4L. capitatum Kit. ex Schult. | Южн. Европа Southern Europe | 36, 85 | |
34 | 1L. campanulatum L. | Южн. Европа Southern Europe | 85 | |
35 | 1L. linearifolium (Jávorka) Juz. | Вост. Европа, Центр. Европа (юго-вост.) Eastern Europe, Central Europe (southeast) | 1 | |
36 | 4L. album L. | Зап. Азия: Иран Western Asia (Iran) | 85 | |
37 | 4L. arboreum L. | Южн. Европа Southern Europe | 36, 85 | |
38 | 4L. dolomiticum Borbás | Центр. Европа: Венгрия Central Europe: Hungary | 85 | |
Section Tubilinum Svetlova | 39 | 2L. nodiflorum L. | Кавказ, Вост. (Крым), Центр. и Южн. Европа, Зап. Азия (Иран) Caucasus, Eastern Europe (Crimea), Central and Southern Europe, Western Asia (Iran) | 1 |
Section Dasylinum (Planch.) Juz. | 40 | 1L. hirsutum L. | Вост., Центр. (Германия) и Южн. Европа Eastern, Central (Germany) and Southern Europe | 1 |
1L. lanuginosum Juz. (= L. hirsutum subsp. lanuginosum (Juz.) T. V. Egorova) | Кавказ: окр. Анапы, Новороссийска и Геленджика. Вост. Европа. Крым Caucasus: surroundings of Anapa, Novorossiysk and Gelendzhik; Eastern Europe. Crimea | 1 | ||
41 | 1L. pubescens Banks et Sol. | Зап. Азия Western Asia | 85 | |
42 | 1L. hypericifolium Salisb. | Кавказ, Зап. Азия Caucasus, Western Asia | 1 | |
43 | 1L. viscosum L. | Южн. Европа Southern Europe | 36, 85 | |
Section Macrantholinum Juz. | 44 | 1L. heterosepalum Regel | Сред. и Центр. Азия: Кашгария: Сев. (в 7 км юго-восточнее пос. Аксу), Джунгария Middle and Central Asia: Kashgaria: North (7 km southeast of the village of Aksu), Dzungaria | 1 |
45 | 1L. olgae Juz. | Сред. Азия Middle Asia | 1 | |
Section Linopsis (Reichenb.) Engelm. | 46 | 4L. suffruticosum L. | Южн. Европа Southern Europe | 85 |
47 | 1L. tenuifolium L. | Кавказ, Атл., Вост., Центр. и Южн. Европа, Зап. Азия Caucasus, Eastern, Atlantic, Central and Southern Europe, Western Asia | 1 | |
48 | 2L. corymbulosum Reichenb. | Кавказ, Вост. и Южн. Европа, Сред., Центр., Вост. и Зап. Азия, Сев. Африка: Алжир Caucasus, Eastern and Southern Europe, Western, Middle, Central and Eastern Asia, Northern Africa | 1 | |
49 | 2L. strictum L. | Центр. и Южн. Европа, Зап. Азия Central and Southern Europe, Western Asia | 1 | |
50 | 2L. trigynum L. | Кавказ, Вост., Центр. и Южн. Европа, Зап. Азия Caucasus, Eastern, Central and Southern Europe, Western Asia | 1 | |
51 | 2L. numidicum Murb. | Сев. Африка: Алжир, Марокко, Тунис Northern Africa: Algeria, Morocco, Tunisia | 85 | |
52 | 2L. aristatum Engelm. | Сев. Америка North America | 85 | |
53 | 2L. hudsonioides Planch. | Сев. Америка North America | 85 | |
Subgenus Cathartolinum (Reichenb.) Svetlova | 54 | 2L. catharticum L. | Зап. Сибирь, Кавказ, Атл., Вост., Центр. и Южн. Европа, Сред. и Зап. Азия, Сев. Америка, Сев. Африка Western Siberia, Caucasus, Atlantic, Eastern, Central and Southern Europe, Central and Western Asia, North America, Northern Africa | 1 |
Примечание. Здесь и в табл. 2. 1 – многолетники, 2 – однолетники, 3 – малолетники (двулетники), 4 – полукустарнички.
Notes. Here and in Table 2: 1 – perennial species, 2 – annual species, 3 – biennial species, 4 – subshrubs.
Среди видов рода Linum наиболее исследованным, в том числе в отношении компонентного состава и биологической активности, является L. usitatissimum – лен обыкновенный – однолетнее травянистое растение, широко распространенное и имеющее много форм и разновидностей, отличающихся общими размерами растений (до 70 см и выше), характеристиками семян и волокна. Из современных внутривидовых классификаций льна обыкновенного наиболее удачной признается канадская классификация, в которой L. usitatissimum подразделяется на четыре группы разновидностей: L. usitatissimum convar. crepitans (Boenningh.) Kulpa et Danert.; L. usitatissimum convar. elongatum Vav. et Ell.; L. usitatissimum convar. mediterraneum (Vav. et Ell.) Kulpa et Danert.; L. usitatissimum convar. usitatissimum [4]. L. usitatissimum входит в десятку лучших масличных культур в мире, выращивается в России, Китае, Аргентине, Канаде, США, Индии и Эфиопии [5]. Масло L. usitatissimum находит широкое применение в промышленности (для приготовления олифы, лаков, красок, линолеума, клеенки и т.д.) и в медицине. Многие виды льна являются декоративными растениями [5, 6].
Так как большинство представителей рода Linum распространено в сухих местообитаниях, то они, как и многие другие цветковые, характеризуются наличием слизесодержащих клеток в семенной кожуре и эпидерме листьев [7]. Слизь в семенах отвечает за их прорастание и защиту. В состав слизи большинства цветковых растений, в частности, и видов рода Linum, входят водорастворимые полисахариды рамногалактуронан и кислые арабиногалактаны, проявляющие высокую физиологическую активность [8, 9]. В состав слизи L. usitatissimum, в большинстве своем, входят водорастворимые полисахариды рамногалактуронан I и арабиноксилан. Водорастворимые полисахариды обладают обволакивающими, противовоспалительными, легкими слабительными, заживляющими, активирующими фагоцитоз, митогенными и противоопухолевыми свойствами [8, 10–12].
Подробно изучен и компонентный состав семян L. usitatissimum [13–15]. Льняное семя богато полиненасыщенными жирами (73%), содержит недольное количество насыщенных жиров (9% от общего количества жирных кислот) и умеренное количество мононенасыщенных жиров (18%). Жирные кислоты: от 5 до 6% пальмитиновой кислоты (C16:0), от 3 до 6% – стеариновой (C18:0, C18H36O2), от 19 до 29% – олеиновой (C18:0, C18H34O2), от 14 до 18% – линолевой (C18:2, ω-6, C18H32O2) и от 45 до 52% – α-линоленовой (C18:3, ω-3, C18H33O2) кислот. Высокое содержание линолевой и α-линоленовой кислот являются характерной чертой семян видов рода Linum [16]. В состав масла льняного семени входят: фосфолипиды 41%; фенольные кислоты: феруловая, хлорогеновая и галловая; лигнаны с эстрогеноподобными свойствами – секоизоларицирезинол диглюкозид (СДГ) и витамины – α-токоферол (признается наиболее активной формой витамина Е). Содержание белка (глобулины, в основном линин и конлинин, а также глютелин) варьирует от 6 до 20–30%. Кроме того, в семенах льна обнаружено небольшое количество цианогенетического глюкозида линамарина, линустатин, неолинустатин и лотаустралин. Отмечено, что длительное употребление продуктов, содержащих цианогенные вещества, может вызвать хроническое отравление, а это, в свою очередь, значительно ограничивает применение семян льна в рационе [14]. Дальнейшие исследования показали, что токсический эффект от употребления льняного семени, обусловленный содержащимися в нем цианогенными гликозидами, линатином и кадмием (в небольших концентрациях) минимален и не оказывает какого-либо негативного воздействия на организм [17].
Питательную ценность семян определяют n-6 и n-3 полиненасыщенные жирные кислоты (n-6 и n-3 ПНЖК): α-линоленовая кислота (ALA) с двойной связью С=С в положении n-3 (n-3, ω-3), а линолевая (LA) – с двойной связью С=С в положении n-6 (n-6, ω-6). Они самостоятельно не синтезируются организмом, но очень важны для здоровья человека, в частности для снижения риска сердечно-сосудистых заболеваний. Было показано, что виды с максимальными концентрациями ALA могут обладать потенциально более высокой антиоксидантной активностью [18]. Известно также, что, благодаря высокому соотношению ω-3 и ω-6 в семенах льна, при их использовании в рационе лошадей, у последних уменьшается воспаление и повреждение мышц, экономится использование мышечного гликогена и глюкозы в крови после тренировок и улучшается состояние шерсти [19].
Препараты на основе L. usitatissimum рекомендуют для лечения таких заболеваний, как атеросклероз, гипертония, астма, кашель, бронхит, плеврит, пневмония, боли в суставах, почечная колика, почечные камни и ревматический отек [17, 20]. Масло L. usitatissimum используют для лечения пациентов с нарушениями липидного обмена, снятия воспаления и ослабления симптомов менопаузы и остеопороза. Известно, что льняное масло снижает уровень сердечно-сосудистых заболеваний, риски развития рака, особенно молочных и предстательной желез, и оказывает слабительное действие. Препараты на основе льняного масла LOMIX показали противовоспалительную и антираковую активности. Кроме того, активность этих препаратов была исследована на клеточных линиях меланомы мышей. Исследования показали, что эти препараты можно использовать для новых терапевтических материалов при гиперпигментации [21]. Экстракты L. usitatissimum обладают ранозаживляющим и обезболивающим свойствами, проявляют антиоксидантную, антималярийную, гепатопротекторную, антираковую, антимикробную и антидиабетическую активности [17, 22–30]. Опосредованно антиоксидантную активность льняного семени используют и в промышленности. Так, проведенные исследования [31, 32] показали, что использование водного экстракта из льняного семени (FSE), полученного с фермерских хозяйств Египта, помогает быстро и недорого синтезировать эффективные полупроводниковые наноматериалы для очистки воды от органических, неорганических и биологических загрязнителей. Полученные зеленые наноматериалы по своим характеристикам превосходят соответствующие наноматериалы, полученные химическим методом.
Согласно исследованиям Е.В. Эллади [5], зависимость между размерами семян и содержанием в них масла практически отсутствует. Обнаружена связь длины вегетационного периода и типа жизненной формы растений с масличностью. Многолетние виды рода Linum отличаются от однолетних меньшим содержанием масла [5, 14]. Увеличение длины вегетационного периода способствует накоплению масла в семенах.
Размеры семян у разновидностей L. usitatissimum варьируют в пределах 4–5 мм в длину и 2–3 мм в ширину [4]. Обнаружено, что соотношение основных жирных кислот в семенах L. usitatissimum может значительно различаться. Такие различия наблюдали в двух случаях: 1) в образцах, выращенных в разных регионах; 2) при использовании для исследований разных экстрагирующих растворителей [15]. Так, например, при экстрагировании петролейным эфиром выявлены максимальные показатели (42.4%) для αлиноленовой кислоты, содержание линолевой, пальмитиновой и стеариновой кислот было меньше (26.2, 12.9 и 10.7% соответственно). При использовании н-гексана в качестве экстрагирующего растворителя содержание линолевой кислоты (46.5%) было больше, а содержание α-линоленовой кислоты (11.6%) – меньше, в то время как пальмитиновая кислота составляла 18.0%. Кроме того, было обнаружено, что содержание α-линоленовой кислоты в сортах льняного семени новозеландского и канадского происхождения составляет около 60%, что намного больше, чем в сортах, происходящих из Пакистана, Эфиопии, Египта и США (45–50%) [15].
Известно, что многие лекарственные свойства представителей рода Linum связаны также с наличием в их органах таких соединений, как лигнаны. В последние десятилетия основные исследования направлены на изучение этих компонентов: биологической активности, способов и условий их синтеза, распределения по органам растения. Это обусловлено тем, что лигнаны обладают большим спектром биологических активностей, востребуемых медициной. В настоящее время ведется поиск замены лекарственных препаратов для лечения разных заболеваний на препараты растительного происхождения, а растения, из которых извлекают биологически активные вещества, могут иметь естественные ограничения в масштабах использования их сырья в силу малочисленности популяций или своей редкости. Поэтому использование клеточных культур растений для выделения полезных лигнанов также признано целесообразным. Постоянное продуцирование вторичных метаболитов независимо от географических ограничений, высокая скорость роста и отсутствие вирусов в клонах являются некоторыми преимуществами культуры in vitro по сравнению с культивируемыми растениями или дикорастущими видами [33].
Юстицидин В – арилнафталеновый лигнан – обладает широким спектром полезных биологических свойств: бактерицидные, противогрибковые, противовирусные и антибактериальные [34], благодаря которым он обратил на себя внимание исследователей. Подофиллотоксин – производное арилтетралина – используют в качестве предшественника полусинтетических противораковых препаратов: этопозид, тенипозид и Этопофос®. Основным коммерческим источником подофиллотоксина является Podophyllum emodi Wall. (Berberidaceae), растущий в альпийских и субальпийских р-нах Гималаев, который стал исчезающим видом в результате чрезмерного сбора лекарственного сырья [35]. Поэтому поиск новых природных источников этих лигнанов и уточнение условий, при которых их содержание в растениях можно увеличить для дальнейшего использования в промышленных масштабах, признаны актуальными.
По сравнению со льном обыкновенным, сведения о компонентном составе, биологической активности масел и экстрактов надземных и подземных частей дикорастущих представителей рода Linum носят фрагментарный характер. Вместе с тем, такие исследования могут быть очень актуальными как для уточнения вопросов хемосистематики, так и для потенциальной возможности дальнейшего использования этих видов в качестве лекарственного сырья для лечения ряда заболеваний.
Цель обзора обобщить имеющиеся в литературе данные по компонентному составу и биологической активности дикорастущих представителей рода Linum, относящихся к разным секциям.
Отметим, что в большинстве литературных источников авторы при изучении компонентного состава и биологической активности видов рода Linum опираются на систему, предложенную D.J. Ockendon и S.M. Walters [36], в которой типовая секция рассматривается в широком смысле (в секцию Linum относят все виды с голубыми цветками) с учетом филогенетических связей между видами рода, установленных J. McDill c соавторами [37]. Так, например, T.J. Schmidt [38, 39] приводит данные компонентного состава семян для типичных представителей секции Linum (L. usitatissimum и L. bienne) в одной группе с L. perenne L., L. ausrtiacum L., L. lewisii Pursh, L. alpinum Jacq., L. leonii F. W. Schultz, L. meletonis Hand.-Mazz., L. altaicum Ledeb. ex Juz. и L. glaucum Boiss. et Noё. Критическая обработка большого количества гербарного материала, включая типовой, с привлечением анатомических и молекулярных данных, позволила нам составить систему рода Linum [1], за основу которой была взята обработка С.В. Юзепчука для флоры СССР [40]. Мы рассматриваем типовую секцию этого рода в более узком смысле и разделяем виды, отнесенные к ней, на 2 секции: Linum и Adenolinum (Reichenb.) Juz. [1]. Некоторые секции (Linum, Adenolinum, Syllinum) разделены нами на подсекции [1, 41]; L. nodiflorum и L. stelleroides Planch. выделены в монотипные секции Tubilinum и Stellerolinum соответственно, а L. catharticum – в отдельный подрод Cathartolinum [1].
В данном обзоре все обнаруженные литературные сведения расположены в соответствии с принятой нами системой рода [1, 41]. Названия ряда видов помещены в синонимы. Если в работах других авторов применено название, отнесенное нами в синонимы, это будет отмечено отдельно.
КОМПОНЕНТНЫЙ СОСТАВ
Слизь и кремний. Нами [7] было изучено строение слизесодержащих клеток в семенной кожуре и эпидерме листьев 7 широкораспространенных дикорастущих представителей рода Linum, относящихся к разным секциям. Показано, что слизесодержащие клетки присутствуют в семенной кожуре и эпидерме листьев у всех изученных видов, но различаются формой и расположением, локализацией в них слизи и наличием слоистости. Соединения кремния в листьях и семенах исследованных представителей этого рода присутствуют в двух формах: кристаллическом и аморфном (см. ниже). У большинства исследованных видов рода Linum, благодаря разрывам наружных клеточных стенок слизесодержащих клеток, слизь выходит наружу и покрывает семя плотным слоем [7].
Компонентный состав семян. Размеры семян для исследованных нами дикорастущих представителей рода Linum, относящихся к разным секциям, варьируют в пределах (1.1)1.4–2–5 мм в длину, (0.7)1–3 мм в ширину [1]. Сведений о составе семян дикорастущих представителей этого рода в литературе немного, они носят фрагментарный характер [16, 42–47]. Интересно отметить, что для одного и того же вида в разных источниках приводятся разные показатели содержания в семенах жирных кислот (см. табл. 2). Это можно объяснить разным географическим происхождением материала: N.S. Plaha с соавторами [16] выращивали семена в Нью-Дели (28°38ʹ 53.7° N, 77°09ʹ 05.4ʹʹ E, 218 м над ур. моря), в работе L. Vellasco [44] виды рода Linum выращены в Германии. Выявлено, что для изучения питательных качеств семян видов рода Linum на основе состава жирных кислот, нужно учитывать ряд показателей: соотношение полиненасыщенных жирных кислот к насыщенным жирным кислотам, отношение жирных кислот n-6/n-3, атерогенность, тромбогенность, окисляемость, окислительную стабильность, соотношение гипохолестеринемических и гиперхолестеринемических жирных кислот и их способность к перекисному окислению. Кроме того, для снижения риска сердечно-сосудистых заболеваний у населения в его рационе предпочтительно использовать семена, отношение n-6/n-3 ПНЖК в которых ниже 4.0 [16, 18].
T.J. Schmidt с соавторами [38, 39] исследовали 42 вида (с подвидами и разновидностями) рода Linum и выявили в их семенах 24 типа лигнанов. По содержанию лигнанов, относящихся к тому или иному типу, T.J. Schmidt с соавторами разделяют исследованные виды на группы. Так, этими авторами были отмечены виды, содержащие в качестве преобладающих лигнаны арилнафталенового типа (АN, самый известный представитель – юстицидин В); виды с основными лигнанами арилтетралинового типа (АТ, подофиллотоксин и его производные); и два вида, а именно L. usitatissimum и его ближайший родственник, L. bienne Mill., содержащие в качестве основных лигнанов дибензилбутиролактоны (DBBL) и фурофураны (FF) соответственно [38, 39].
Выявлено, что лигнаны накапливаются не только в семенах, но и в других органах представителей рода Linum [34, 35, 48, 49]. Удалось подобрать оптимальные условия для увеличения содержания вторичных метаболитов в культурах тканей дикорастущих видов этого рода. Показано, что для выращивания культуры разных тканей in vitro для видов рода Linum хорошо подходит безгормональная среда Murashige и Skoog (MS; фотопериод 12 ч) с разными модификациями [50].
Для некоторых дикорастущих видов рода Linum изучен жирокислотный состав [16, 42, 44] масла. В надземных частях некоторых дикорастущих представителей рода Linum обнаружены: белки, витамины, алкалоиды, флавоноиды, сапонины, кумарины, дубильные вещества, пигменты, лигнаны [42–47]. Витамины обнаружены не только в семенах (витамины А, В2, Е), но также в листьях L. perenne (витамин С) и надземных частях L. ausrtiacum (витамины С, Е, Р) [42, 43]. Из цветков L. perenne, L. ausrtiacum, L. hirsutum, L. pubescens, L. tenuifolium и L. catharticum выделено эфирное масло [42, 65].
СЕКЦИЯ ADENOLINUM (REICHENB.) JUZ.
(в полном объеме содержит 28 видов [41])
Слизесодержащие клетки семенной кожуры и эпидермы листьев. Изучено строение слизесодержащих клеток листьев и семян L. austriacum и L. perenne, относящихся к этой секции [7]. В листьях L. perenne обнаружено достаточно редкое явление: слизь находится не только около внутренней, но еще и у наружной стенки клеток в виде тонкой полосы. В семенах L. austriacum и L. perenne в слизи на полутонких срезах можно обнаружить 3 слоя, которые не разделены клеточной стенкой. Кремний в слизи, а также в клеточных стенках слизесодержащих клеток листьев L. austriacum и L. perenne обнаружен в виде отдельных микрокристаллов или их групп. В слизепроизводящих клетках семян соединения кремния в кристаллической форме обнаружены также в клеточных стенках и в цитоплазме L. austriacum, а также в выростах наружных клеточных стенок у L. perenne. Соединения кремния в аморфной форме обнаружены в слизи семян L. perenne.
Компонентный состав семян более или менее подробно изучен у 9 представителей этой секции (см. табл. 2, 3). У некоторых видов, например, L. austriacum и L. perenne, в разных источниках приводятся разные значения содержания жирных кислот. Как правило, отношение содержания линолевой кислоты (LA) к α-линоленовой кислоте (ALA) у всех видов секции, кроме L. macrorhizum Juz. (= L. mesostylum Juz.), меньше 4.0 и колеблется в пределах 1.8–2.9. Согласно исследованию F. Oppedisano et al. [18], семена всех исследованных видов секции, кроме L. macrorhizum, можно использовать в пищу без риска осложнений сердечно-сосудистых заболеваний.
Лигнаны. В литературе встречаются сведения разной полноты о компонентном составе надземных частей 14 видов из этой секции. В работах T.J. Schmidt с соавторами [38, 39] изучены семена 8 видов (L. perenne, L. ausrtiacum, L. lewisii, L. alpinum, L. leonii, L. meletonis, L. altaicum и L. glaucum), которые мы относим к секции Adenolinum. Как показали исследования [38, 39, 51–53], в надземных и подземных органах этих видов в основном продуцируются лигнаны арилнафталенового типа, из которых самым распространенным и хорошо изученным является юстицидин B (4,5-диметокси-3',4'-метилендиокси-2,7'-циклолигна-7,7'-диено-9,9'-лактон) (рис. 1). Впервые юстицидин B был выделен из клеточных культур корней L. ausrtiacum [50].
Рис. 1. Структура юстицидина В.
Fig. 1. Structure of justicidin В.
Отметим, что у некоторых представителей секции Adenolinum обнаружены лигнаны и других типов, но в небольших количествах. Так, в семенах L. perenne, L. ausrtiacum и L. meletonis, помимо подавляющего большинства лигнанов арилнафталинового типа, обнаружено также незначительное количество лигнанов арилтетралинового и дибензилбутиролактонового типов (см. табл. 2). Известно также, что в культуре клеток корней in vitro L. perenne обнаружены юстицидин В, изоюстицидин В, ретрогелиоксантин, линоксепин, дифиллин (арилнафталеновый тип лигнанов) и лигнан арилтетралинового типа – 6-метоксиподофиллотоксин (6-MPTOX) [51, 52]. С другой стороны, в культуре клеток волосистых корней этого вида in vitro, юстицидина B накапливается до 37 мг/г от массы сухого материала. Это значение, по крайней мере, в 2–3 раза выше, чем в культурах in vitro корней L. austriacum [50, 53]. Клеточные культуры L. austriacum продуцируют разное количество юстицидина В. Так, выявлено, что волосистые корни (через 30 дней), корневища (через 30 дней), а также суспензия (через 12 дней) и каллус (через 30 дней), полученные из проростков, могут давать, соответственно, 16.9, 12.5, а также 6.7 и 2.9 мг/г юстицидина В от массы сухого материала. Базальную среду MS с 0.4 мг/л нафталинуксусной кислоты (α-NAA) в качестве единственного регулятора роста растений сравнивали со средой MS, содержащей 1 мг/л α-NAA, 0.5 мг/л кинетина, 0.5 мг/л 2,4дихлорфеноксиуксусной кислоты (2,4-D) и 15% (v/v) кокосового молока. В клеточных суспензионных культурах L. austriacum использование α-NAA в качестве единственного регулятора привело к увеличению накопления юстицидина В в 3.7 раза [50].
T.J. Schmidt с соавторами [38] не обнаружили в семенах L. glaucum достаточного для анализа количества лигнанов. A. Mohagheghzadeh с соавторами [54], изучавшие компонентный состав каллусных культур и культур проростков L. glaucum in vitro, обнаружили лигнаны. Авторы заключили, что L. glaucum по своему компонентному составу близок к L. austriacum. Изучение гербарных материалов, включая типовой, по этим двум видам показало, что L. glaucum не заслуживает статуса отдельного вида, его следует рассматривать как подвид L. austriacum – L. austriacum subsp. glaucescens (Boiss.) P.H. Davis [41].
Известно, что для большинства изученных видов (L. altaicum, L. lewisii, L. komarovii, L. anglicum, L. alpinum и L. leonii) секции Adenolinum содержание юстицидина В в семенах составляет 0.1–1 мг/г, а у L. extraaxillare и L. pallescens – 1–3 мг/г от массы сухого материала [39].
СЕКЦИЯ LINUM
(типовая подсекция рода, сюда относится и L. usitatissimum)
Секция в своем полном объеме насчитывает около 50 видов, достаточно неоднородна: ее представители хорошо различаются между собой по ряду морфологических признаков, типу жизненной формы и своему хромосомному набору [1]. Данные по компонентному составу семян представителей этой секции представлены в таблице 2. Как правило, отношение LA с n-6 к ALA с n-3 у всех изученных видов секции, кроме L. bienne и L. narbonense, больше 4.0, поэтому использовать их семена в пищу нужно с осторожностью (большая нагрузка на сердечно-сосудистую систему).
Рис. 2. Структурная формула фурофуранолигнанов [38].
Fig. 2. Structure of furofuran lignans [38].
Обнаруженные в литературе сведения по содержанию и накоплению лигнанов у видов секции Linum также фрагментарны. Больше всего получено данных о лигнанах, накапливаемых в семенах 6 представителей (L. monogynum Hort. ex Rchb., L. olympicum Boiss., L. bungei Boiss., L. bienne, L. decumbens и L. grandiflorum) этой секции, в исследовании T.J. Schmidt с соавторами [38]. Большинство из исследованных видов содержало в качестве основных лигнаны арилнафталенового типа, чаще всего – юстицидин В. Известно, что максимальный выход юстицидина В в каллусных культурах клеток L. narbonense составил 1.57 мг/г от массы сухого материала [34]. В семенах L. decumbens юстицидина B содержится менее 0.1 мг/г от массы семян [55]. В каллусных клеточных культурах L. grandiflorum накапливаются лигнаны арилнафталинового типа [56]. Отметим, что T.J. Schmidt с соавторами [38] не обнаружили в семенах L. grandiflorum достаточного для анализа количества лигнанов. Не обнаружены лигнаны и в семенах L. monogynum [38].
T.J. Schmidt c соавторами [38] выяснили, что семена L. usitatissimum содержат в качестве характерного лигнана сезоизоларицирезинол диглюкозид (SDG). В семенах L. bienne (близкого дикорастущего родственника льна культурного) обнаружены фурофуранолигнаны (FF). Представители этого типа лигнанов не были обнаружены больше ни у одного из исследованных дикорастущих представителей рода Linum, относящихся к разным секциям [38]. С другой стороны, каллусная культура L. bienne не продуцирует лигнаны арилтетралинового типа [54]. Авторы отмечают, что промежуточные соединения между фурофуранами (рис. 2) и дибензилбутиролактонами, такие, например, как дибензилбутансекоизоларицирезинол, накапливаются в виде диглюкозидов в семенах L. usitatissimum. Таким образом, L. usitatissimum и L. bienne по типу накапливаемых в них лигнанов, являются уникальными [38].
СЕКЦИЯ STELLEROLINUM JUZ. EX PROBAT.
L. stelleroides ранее рассматривался в группе льнов с голубыми цветками, но критическая обработка его морфологических признаков и признаков генома подтверждают его обособленное положение в системе рода Linum [57]. Отношение содержания линолевой кислоты (LA) к α-линоленовой кислоте (ALA) у всех видов секции меньше 4.0 (2.1). Единственный представитель этой секции также накапливает лигнаны арилнафталинового типа [38]. Так, в семенах L. stelleroides обнаружен юстицидин B в количестве до 0.1–1 мг/г от массы семян [49].
СЕКЦИЯ SYLLINUM GRISEB.
В своем полном объеме насчитывает до 15 видов, достаточно неоднородна: ее представители хорошо различаются между собой по ряду морфологических признаков и типу жизненной формы.
Изучено строение слизесодержащих клеток листьев и семян L. flavum и L. czernjajevii Klok., относящихся к этой секции [7]. У L. сzernjajevii, имеющего опушенные листья, слизь обнаружена не только в клетках эпидермы, но и в базальных частях волосков. Слизь неоднородна, в ней хорошо видны слои. Кремний в слизи, а также в клеточных стенках слизесодержащих клеток листьев L. flavum обнаружен в виде отдельных микрокристаллов или их групп. В слизепроизводящих клетках семян соединения кремния в кристаллической форме обнаружены в слизи и цитоплазме у L. flavum, в слизи и клеточных стенках – у L. сzernjajevii. Кроме того, у L. сzernjajevii в слизепроизводящих клетках эпидермы листьев имеется слой в виде тонкой полосы, образованный кристаллическим кремнием. Соединения кремния в аморфной форме обнаружены в клеточных стенках листьев L. сzernjajevii [7].
Таблица 2. Содержание лигнанов, жирных кислот и витаминов в семенах дикорастущих представителей рода Linum
Table 2. Content of lignans, fatty acids and vitamins in seeds of the wild Linum species
Вид Species | Размеры семян, дл./шир., мм Seed sizes, length / width, mm | Жирное масло Fatty oil, % | PA, | SA, | OA, | LA, | ALA, | Лигнаны Lignans | Витамины Vitamins | Литературные источники Literature |
% от общего содержания жирных кислот % of the total fatty acids | ||||||||||
1L. perenne L. | 3/1.5 | 25–33 | 3.9 7.5 | 2.0 3.2 | 16.0 23.6 | 24.3 20.8 | 51.9 44.4 | AN/ ADN, AT, DBBL | А, В2, α-токоферол, γ-токоферол, δ-токоферол α-tocopherol, γ-tocopherol, δ-tocopherol | 38, 42,45, 44, 16 |
1L. austriacum L. | 3/1.5 | до 27 | 3.9 6.8 | 1.7 2.9 | 19.1 23.3 | 55 22.9 19.2 | 53.3 47.1 | AN/ADN, AT, DBBL | γ-токоферол, γ-tocopherol | 42, 44, 16, 38 |
1L. squamulosum Rudolphi (= L. austriacum subsp. euxinum) | 2.5–3/1.5–2 | до 27 | – | – | – | – | – | – | – | 45 |
1L. altaicum Ledeb. ex Juz. | 2.5–3/1.5–2 | 24.3 | 3.9 (3.7–4.2) 6.6 | 1.5 (1.4–1.6) 6.2 | 16.8 (15.3–19.5) 22.3 | 23.4 (21.6–25.0) 21.1 | 52.9 (49.9–56.0) 43.8 | AN/ADN | γ-токоферол, δ-токоферол γ-tocopherol, δ-tocopherol | 44, 16, 38 |
1L. leonii F. W. Schultz | 2.5–3/1.5–2 | 24.4 | 4.2 | 1.5 | 19.3 | 23.9 | 50.1 | AN/ ADN | γ-токоферол γ-tocopherol | 44, 38 |
1L. lewisii Pursh | 2.5–3/1.5–2 | 27.6 | 3.8 5.2 | 1.4 2.9 | 13.5 18.9 | 20.5 17.6 | 59.5 55.3 | AN/ ADN, DBBL | α-токоферол, γ-токоферол α-tocopherol, γ-tocopherol | 44, 16, 38 |
1L. macrorhizum Juz. (= L. mesostylum Juz.) | 2.5–3/1.5–2 | 23.9 | 3.1 | 1.1 | 15.0 | 14.9 | 64.6 | – | γ-токоферол γ-tocopherol | 44 |
1L. baicalense Juz. | 2.5–3/1.5–2 | 30–48 | 8–9 | 8–9 | 15–20 | 25–35 | 35–45 | – | А | 42, 43 |
1L. komarovii Juz. | 4–5/2.5–3.0 | 23.8 | 3.6 | 1.6 | 11.9 | 22.3 | 59.0 | AN/ADN | γ-токоферол, δ-токоферол γ-tocopherol, δ-tocopherol | 42, 44, 38 |
1L. alpinum Jacq. | 2.5–3/1.5–2 | до 27 | – | – | – | – | – | AN/ADN | – | 45, 38 |
1L. pallescens Bunge | 3–4/2.0–3.0 | 25.2 | 3.3 | 1.4 | 17.3 | 19.0 | 57.4 | AN/ADN | α-токоферол, γ-токоферол α-tocopherol, γ-tocopherol | 38, 42, 44 |
2L. stelleroides Planch. | 2.5–3/1.5–2.0 | 25.3 | 3.9 | 1.7 | 17.8 | 3–9 24.0 | 51.1 | AN/ADN | α-токоферол, γ-tocopherol | 42, 44, 38 |
3L. bienne Mill. | 3.5–4.0/3 | – | 9.6 | 7.4 | 25.9 | 10.2 | 46.7 | FF | – | 16, 38 |
2L. usitatissimum L. только в культуре | 4.5–5.0/3 | 32.9–37.2 | 5–6 8.1 | 3–6 5.7 | 19–29 24.7 | 14–18 12.1 | 45–52 49.3 | DBBL | α-токоферол, γ-токоферол α-tocopherol, γ-tocopherol | 13, 15, 16, 38, 39, 44 |
1L. narbonense L. | 2.5–3.0/1.5 | 23.0 | 4.4 | 2.5 | 11.4 | 28.3 | 52.8 | – | α-токоферол, γ-токоферол α-tocopherol, γ-tocopherol | 44 |
2L. marginale A. Cunn. ex Planch. | 2.5–3.0/1.5 | – | 8.2 | 5.6 | 17.6 | 10.7 | 57.6 | – | – | 16 |
2L. decumbens Desf. | 3.5–4.0/2.5 | 18.7 | 6.6 | 2.8 | 17.7 | 14.3 | 57.3 | 0 | γ-токоферол, δ-токоферол γ-tocopherol, δ-tocopherol | 44, 38 |
2L. grandiflorum Desf. | 3.5–4.0/2.5 | до 23.95 | 6.0 | 3.9 | 18.8 | 13.9 | 56.6 | 0 (семена) AN/AND (каллус) | γ-токоферол γ- tocopherol | 42, 44, 38, 56 |
1L. flavum L. | 2.5–3.0/1.5 | до 27.7 26.6–31.9 | 4.6 8.4 | 2.3 4.7 | 18.3 26.1 | 55.1 37.9 | 18.1 22.7 | AT | α-токоферол, γ-токоферол α-tocopherol, γ-tocopherol | 42, 44, 16 |
1L. thracicum Degen | 2.5–3.0/1.5 | 25.3–29.7 | 4.5–4.9 | 1.8–2.5 | 15.9–18.9 | 55.5–57.2 | 16.1–19.4 | AT | α-токоферол, γ-токоферол α-tocopherol, γ-tocopherol | 44, 38 |
4L. ucranicum (Griseb. ex Planch.) Czern. | 2.9–3.0/1.5 | до 33.5 | – | – | – | – | – | – | – | 42 |
4L. uralense Juz. | 2.5–3.0/1.5 | до 27 | – | – | – | – | – | – | – | 42 |
4L. tauricum Willd. | 3.0–3.5/ 2.0–3.0 | 27.6–30.9 | 4.2–4.6 | 1.8–2.1 | 17.9–18.3 | 54.2–58.0 | 15.3–19.3 | AT | α-токоферол, γ-токоферол α-tocopherol, γ-tocopherol | 44, 38 |
4L. czernjajevii Klok. | 2.5–3.0/1.5 | до 38.6 | – | – | – | – | – | – | – | 42 |
4L. elegans Spruner ex Boiss. | 2.5–3.0/1.5 | 29.2 | 4.6 | 2.2 | 18.8 | 56.0 | 16.7 | AT | α-токоферол, γ-токоферол α-tocopherol, γ-tocopherol | 44, 38 |
4L. capitatum Kit. ex Schult. | 2.9–3.0/1.5 | 22.53 30.2 | 4.1 | 2.2 | 18.9 | 56.7 | 16.1 | AT | α-токоферол, γ-токоферол α-tocopherol, γ-tocopherol | 46, 44, 38 |
1L. campanulatum L. | 2.9–3.0/1.5 | 32.5 | 4.6 | 1.9 | 17.1 | 55.7 | 18.7 | AT | α-токоферол, γ-токоферол α-tocopherol, γ-tocopherol | 44, 38 |
2L. nodiflorum L. | 2.5/1.5 | 32.0–32.7 | 7.1–7.6 | 2.6–2.8 | 28.7–35.4 | 49.4–55.1 | 4.2–4.3 | AT | α-токоферол, γ-токоферол α-tocopherol, γ-tocopherol | 44, 38 |
1L. hirsutum L. | 2.5–3/1.5 | до 32.4 28.7 | 3.0–3.6 6.5 | 1.1–1.3 2.7 | 7.1–9.5 22.5 | 53 23.9 17.1 | 61.7–63.8 48.7 | AN/ADN | γ-токоферол, δ-токоферол γ-tocopherol, δ-tocopherol | 42, 44, 16, 38 |
1L. lanuginosum Juz. | 2.5–3.0/1.5 | до 24.5 | – | – | – | – | – | – | – | 42 |
4L. suffruticosum L. | 2–3/1.0–1.5 | 29.1 | 4.4 | 2.3 | 7.8 | 80.7 | 3.8 | 0 | γ-токоферол γ-tocopherol | 44, 38 |
1L. tenuifolium L. | 2–3/1.0–1.5 | 28.8–32.5 | 4.1–4.7 5.8 | 2.0–2.5 5.4 | 8.4–12.5 8.3 | 67–69 78.1–81.4 69.7 | 1.8–3.4 3.1 | 0 | α-токоферол, γ- токоферол α-tocopherol, γ-tocopherol | 42, 44, 16, 38 |
2L. corymbulosum Reichenb. | 1.4–1.7/ 0.6–0.7 | до 25.27 | – | – | – | – | – | AN/ADN, AT, DBBL | – | 42, 38 |
2L. strictum L. | 1.5–1.7/ 0.6–0.8 | – | 11.7 | 6.3 | 13.4 | 41.2 | 27.3 | – | – | 16 |
2L. trigynum L. | 1.1–1.2/ 0.2–0.5 | 30.7 | 5.7 | 2.4 | 6.9 | 28.6 | 54.9 | AT | γ-токоферол, δ- токоферол γ-tocopherol, δ-tocopherol | 44 |
2L. aristatum Engelm. | 1.1–1.2/ 0.2–0.5 | – | 7.7 | 3.3 | 15.0 | 64.6 | 9.3 | – | – | 16 |
2L. hudsonioides Planch. | 1.1–1.2/ 0.2–0.5 | – | 9.2 | 3.7 | 21.5 | 62.9 | 2.7 | – | – | 16 |
2L. catharticum L. | 1–1.5/0.5 | до 25.6 | 11.4 | 7.1 | 27.3 | 25.9 | 28.4 | AT, DBBL | – | 42, 16, 38 |
Примечание. Прочерк означает отсутствие данных. 0 – не обнаружено достаточного для анализа количества лигнанов.
PA – пальмитиновая кислота, SA – стеариновая, OA – олеиновая, LA – линолевая и ALA – α-линоленовая кислоты. Если данные по содержанию отдельных жирных кислот обнаружены в разных источниках, они приводятся в разных строках: в первой – содержание кислот по данным П.Д. Соколова [42], во второй – по данным L.Velasco и F. Goffman [44], в третьей – N.S. Plaha с соавторами [16].
AN/AND – лигнаны арилнафталинового/арилдигидронафталинового типа; AT – лигнаны арилтетралинового типа; DBBL – лигнаны дибензилбутиролактонового типа; FF – фурофуранолигнаны.
Notes. A dash means the absence of the component. 0 – the amount of lignans sufficient for analysis was not detected.
PA – palmitic acid, SA – stearic acid, OA – oleic acid, LA – linoleic acid and ALA – α-linolenic acid. If data on the content of individual fatty acids are found in different sources, they are given in different lines: in the first – the acid content according to P.D. Sokolov [42], in the second – according to L. Velasco and F. Goffman [44], in the third – N.S. Plaha et al. [16].
AN/AND – Arylnaphthalen/-dihydronaphthalene lignans; AT – ariltetraline lignans; DBBL – dibenzylbutyrolactone lignans; FF – furofuran type lignans.
Сведения о компонентном составе семян представителей этой секции также фрагментарны (см. табл. 2). Интересно отметить, что, в отличие от представителей всех остальных секций, у которых максимальным содержанием отличается LA, а ALA накапливается в меньшем количестве, представители секции Syllinum отличаются максимальным содержанием ALA, а LA содержат в меньшем количестве. Такое же содержание этих жирных кислот отмечено еще для представителей секции Linopsis. Тем не менее, отношение ALA к LA у исследованных представителей секции Syllinum не превышает 4.0, колеблется в районе значений 3. L. uralense Juz. рассматривается нами как подвид L. ucranicum Czern. [42].
Больше сведений обнаружено о лигнанах, накапливаемых в надземных и подземных органах представителей этой секции [38, 39, 48, 55, 58–61]. T.J. Schmidt с соавторами [38, 39] исследовали семена 17 представителей (включая подвиды) этой секции. Ими в семенах, помимо разных лигнанов арилнафталинового типа, еще обнаружены лигнаны арилтетралинового и дибензилбутиролактонового типа, но в незначительных количествах [38]. Согласно сводке “Растительные ресурсы России” [48], L. flavum содержит фенолы и их производные: кониферин, конифериловый спирт; лигнаны: 7,6-дигидроксибурсехернин, пинорезинол, матаирезинол, ларицирезинол, секоизоларицирезинол, деметоксисекоизоларицирезинол, α-пельтатин, β-пельтатин, 5-метоксиподофиллотоксин; L. tauricum из лигнанов содержит 41-деметил-6-метоксиподофиллотоксин. Из дихлорметанового экстракта семян L. flavum var. compactum методом колоночной хроматографии был выделен 6-метоксиподофиллотоксин-7-О-н-гексаноат [58]. A.J. Broomhead и P.M. Dewick [59] из экстрактов L. flavum, L. flavum var. compactum и L. capitatum Kit. ex Schult. выделили большие количества цитотоксичных арилтетралиновых лигнанов, структурно связанных с подофиллотоксином: 5-метоксиподофиллотоксин, его глюкозид и ацетат являются основными компонентами как корней, так и стебля/листьев L. flavum и L. flavum var. compactum, корни содержат до 3.5% этих соединений от массы сухого сырья. Было показано, что 5-метоксиподофиллотоксин и его глюкозид были обнаружены в корнях L. capitatum. Стебли и листья этого вида продуцируют α- и β-пельтатины, а также их 5-O-глюкозиды. Конифериловый спирт и кониферин присутствовали во всех образцах исследованных растений.
Рис. 3. Структурная формула 6-метоксиподофиллотоксина.
Fig. 3. Structure of 6-methoxypodophyllotoxin.
Из надземных частей L. mucronatum subsp. orientale впервые выделен 6-МеО-α-пельтатин [60]. С использованием высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ-ESI /MS и ВЭЖХ-UV /DAD) подробно изучен компонентный соcтав надземных частей представителей секции Syllinum (L. tauricum subsp. tauricum, subsp. serbicum, subsp. bulgaricum; L. linearifolium; L. elegans; L. flavum subsp. sparsiflorum, L. capitatum var. laxiflorum), произрастающих в Болгарии [61]. Всего было идентифицировано 22 различных лигнана, в основном арилтетралинового типа, из которых основным является 6-метоксиподофиллотоксин (рис. 3) и его глюкозид (присутствовали во всех образцах). Из культуры клеток придаточных корней L. dolomiticum Borbás были получены подофиллотоксин, 6-метоксиподофиллотоксин и 6-метоксиподофиллотоксин-7-O-β-глюкозид [62].
СЕКЦИЯ TUBILINUM SVETLOVA
L. nodiflorum L. – единственный представитель этой секции, ранее рассматривался вместе с другими желтоцветковыми представителями в секции Syllinum. Как показали L. Velasco и F. Goffman [44], по компонентному составу семян L. nodiflorum отличается от представителей этой секции.
В семенах L. nodiflorum, помимо разных лигнанов арилнафталинового типа, еще обнаружены лигнаны арилтетралинового и дибензилбутиролактонового типа, но в незначительных количествах [38]. Суспензионные культуры растительных клеток L. flavum, L. nodiflorum и L. album использованы для характеристики роста и продукции цитотоксических лигнанов, а также для изучения биосинтеза этих лигнанов. Показано, что в культуре клеток L. nodiflorum всего за девять дней культивирования содержание 6-метоксиподофиллотоксина может достичь до 1.7% от массы сухого материала. Биосинтез подофиллотоксина и 6-метоксиподофиллотоксина следует за образованием первого арилтетралинового лигнана дезоксиподофиллотоксина. Гидроксилирование в положении 7 дезоксиподофиллотоксин-7-гидроксилазой приводит к образованию подофиллотоксина. Гидроксилирование в положении 6 монооксигеназой цитохрома Р450 дезоксиподофиллотоксин 6-гидроксилазой приводит к образованию β-пельтатина, который далее метилируется S-аденозилметионином: β-пельтатин 6-О-метилтрансферазой до β-пельтатин-метилового эфира, а затем гидроксилируется до 6-метоксиподофиллотоксина. Как подофиллотоксин, так и 6-метоксиподофиллотоксин сохраняются в вакуолях в виде глюкозидов. Определенные ферменты этих превращений были выделены и охарактеризованы из клеточных культур изученных видов рода Linum [63]. Показано также, что накопление 6-метоксиподофиллотоксина в культурах клеток L. nodiflorum можно значительно увеличить [64]. Так, было исследовано влияние синтетических элиситоров инданоил-изолейцина и метилжасмоната (MeJA) на накопление и биосинтез лигнанов в клеточных суспензионных культурах L. nodiflorum. Показано, что выработка 6-метоксиподофиллотоксина (6-MPTOX) может быть увеличена более чем в десять раз, максимальное содержание достигает более 2.5% от массы сухого материала. Максимальный выход 6-MPTOX был достигнут при введении 50 мкм синтетических элиситоров на четвертый день и экстрагировании продуктов на десятый день периода культивирования. Помимо 6-MPTOX в культурах, обработанных элиситором, обнаружился дополнительный лигнан. Его структуру выяснили с использованием измерений ЯМР в формате 1D и 2D и выявили его идентичность 5'-деметокси-MPTOX (5'-dMPTOX). Среднее содержание 5'-dMPTOX составляло более 5% от массы сухого материала. Метилжасмонат оказывал умеренное стимулирующее действие на клетки L. nodiflorum, содержание MPTOX и 5'-dMPTOX достигало 1.4 и 2.1% от массы сухого материала соответственно. Активность дезоксиподофиллотоксин-6-гидроксилазы и бета-пельтатин-6-О-метилтрансферазы, двух ферментов, участвующих в биосинтезе MPTOX, была увеличена в обработанных культурах в 21.9 и 14.6 раз соответственно [64].
СЕКЦИЯ DASYLINUM (PLANCH.) JUZ.
Изучено строение слизесодержащих клеток листьев и семян L. hirsutum L. [7]. У L. hirsutum, имеющего опушенные листья, слизь обнаружена не только в клетках эпидермы, но и в базальных частях волосков. В слизи на полутонких срезах можно выделить 2 слоя, не разделенных клеточной стенкой. Кремний в слизи, а также в клеточных стенках слизесодержащих клеток листьев обнаружен в виде отдельных микрокристаллов или их групп. Крупные кристаллы кремния были обнаружены только в семенах L. hirsutum в дополнительной клеточной стенке, отделяющей цитоплазму от слизи. Эти кристаллы имеют продолговатую форму, расположены вдоль клеточной стенки и занимают две трети ее толщины. Соединения кремния в аморфной форме обнаружены в наружной клеточной стенке в семенах L. hirsutum [7].
Летучие компоненты надземных цветущих частей L. pubescens Willd. ex Schult. были собраны методом гидродистилляции и проанализированы методом газовой хроматографии (GC и GC/MS). Анализ позволил идентифицировать 68 компонентов в эфирном масле этого вида, из которых в качестве основных компонентов были обнаружены геранилизовалерат (18.93%), лауриновая кислота (12.07%), гермакрен D (10.61%), декановая кислота (8.07%), 6,10,14-триметил-2-пентадеканон (5.02%) и 1-гексанол (4.99%) [65].
L. viscosum L. не содержал определяемых количеств лигнанов при выбранных условиях аналитических исследований [38].
СЕКЦИЯ MACRANTHOLINUM JUZ.
К этой секции относят два вида рода Linum из Ср. Азии: L. olgae Juz. и L. heterosepalum Regel. В народной медицине их применяют при кишечных заболеваниях и лечении ожогов [42]. Дополнительные данные приводятся в табл. 3.
Таблица 3. Компонентный состав надземных и подземных частей дикорастущих представителей рода Linum
Table 3. Component composition of aboveground and underground parts of wild Linum species
Вид Species | Белки Proteins | Цианогенетические глюкозиды Cyanogenetic glucosides | Эфирное масло Essential oil | Алкалоиды Alkaloids | Флавоноиды Flavonoids | Сапонины Saponins | Кумарины Сoumarins | Дубильные вещества Tanins | Пигменты Pigments | Литературные источники Literature |
L. austriacum L. | – | – | + | + (1) | – | – | – | – | + (каротин) (carotene) | 42 |
L. perenne L. | 25% | линамарин, линустатин linamarin, linustatin | + | + (1) | + (1c) | – | – | – | – | 42, 45 |
L. baicalense Juz. | + | – | – | – | – | – | – | – | – | 42, 43 |
L. komarovii Juz. | – | – | – | – | + (1c) | – | – | – | – | 42 |
L. pallescens Bunge | – | – | – | 0.09% (1) | – | – | – | – | – | 42 |
L. amurense Alef. | – | – | – | – | – | + (1) + (2) | + | – | – | 71 |
L. flavum L. | – | – | – | + (1) | + | – | – | – | – | 42 |
L. hypericifolium Salisb. | – | – | – | 0.75% (1) | + | + (2) | – | – | – | 42 |
L. pubescens | – | – | + | – | – | – | – | – | – | 65 |
L. hirsutum L. | – | – | – | + (1) | + | – | – | – | – | 42 |
L. heterosepalum Regel | – | – | – | 0.06% (1) 0.06% (2) | – | + (2) | – | – | – | 42 |
L. olgae Juz. | – | – | – | 0.2 (1a) 1.13 (1b, 1c) | – | + (1с) | + (1b, 1c) | + (1с) | – | 42 |
L. tenuifolium L. | – | – | + | – | – | – | – | – | – | 42 |
L. catharticum L. | 0.5% | – | 0.15% | – | – | – | – | – | 2% | 42 |
Примечание. 1 – в надземной части, 1a – в стеблях, 1b – в листьях, 1c – в цветках, 2 – в подземной части. Прочерк означает отсутствие данных.
Notes. 1 – in the aboveground parts: 1a – in stems, 1b – in leaves, 1c – in flowers, 2 – in the underground parts. A dash means the absence of the component.
СЕКЦИЯ LINOPSIS (REICHENB.) ENGELM.
Очень интересная и неоднородная, с точки зрения систематики и компонентного состава, секция. Насчитывает в полном объеме около 40 видов, большая часть которых распространена в Европе и Америке [1, 66].
Изучено строение слизесодержащих клеток листьев и семян L. tenuifolium L. [7]. Слизесодержащие клетки находятся как в верхней, так и в нижней эпидерме листьев и располагаются поодиночке или небольшими группами; семенная кожура полностью состоит из этих клеток. Слизь на полутонких срезах однородная, слоев не выявлено. Интересно отметить, что кремний у L. tenuifolium обнаружен только в крахмальных зернах клеток мезофилла листьев и только в аморфной форме [7].
Сведения о компонентном составе семян представителей этой секции фрагментарны (табл. 2). Представители этой секции, так же, как и виды из секции Syllinum, отличаются от представителей других секций содержанием ALA и LA. Кроме того, отношение ALA к LA у большинства изученных видов этой секции сильно превышает требуемый показатель 4.0. Исключение составляют L. trigynum L. и L. strictum L. Семена этих видов можно употреблять в пищу без риска сердечно-сосудистых осложнений.
Рис. 4. Структурная формула (-)-хинокинина.
Fig. 4. Structure of (-)-hinokinin.
L. suffruticosum L. не содержал определяемых количеств лигнанов при выбранных условиях аналитических исследований [38]. В каллусах и проростках L. tenuifolium обнаружены лигнаны арилнафталинового типа. Длина проростков L. tenuifolium в темноте была значительно выше (p < 0.01), чем в условиях освещения [54].
В семенах L. trigynum обнаружены лигнаны арилнафталинового, арилтетралинового и дибензилбутиролактонового типов [38]. В экстрактах этого вида (PE, CHCl3, AcOEt и n-BuOH) идентифицировали флавоноиды (40 соединений), фенольные кислоты (18) и их производные (19 соединений) [67]. В семенах L. corymbulosum Reichenb. обнаружены лигнаны арилнафталинового, арилтетралинового и дибензилбутиролактонового типов [38]. U. Bayindir с соавторами [68] установили, что биологически активный лигнан (−)-хинокинин (C20H18O6; (3R,4R)-3,4- Бис(бензо[d][1, 3]диоксол-5-илметил)дигидрофуран-2(3H)-он) может быть выделен из культур in vitro L. corymbulosum (рис. 4).
SUBGENUS CATHARTOLINUM (REICHENB.) SVETLOVA
Изучено строение слизесодержащих клеток листьев и семян единственного представителя этого подрода – L. catharticum L. [7]. Следует отметить, что в слизесодержащих клетках листьев L. catharticum обнаружена дополнительная клеточная стенка, разграничивающая 2 слоя слизи, что больше не было обнаружено ни у одного другого из изученных видов. В семенах L. catharticum имеются 2 разновидности слизепроизводящих клеток, различающиеся размерами: более крупные (14.2 мкм в высоту) и более мелкие (4.1 мкм в высоту). В обоих случаях количество слизи незначительное. Кремний в клеточных стенках слизесодержащих клеток листьев обнаружен в виде отдельных микрокристаллов или их групп. В слизепроизводящих клетках семян соединения кремния в кристаллической форме обнаружены в цитоплазме. Соединения кремния в аморфной форме обнаружены в слизи клеток эпидермы листьев L. catharticum.
Компонентный состав семян этого вида приведен в таблицах 2 и 3. У L. catharticum зафиксирован самый высокий уровень (27.0%) олеиновой кислоты [16]. В надземных частях L. catharticum обнаружены углеводы и родственные соединения [42]. В семенах L. catharticum, помимо разнообразных лигнанов арилтетралинового типа, у образцов из Швеции и Ирана обнаружены еще лигнаны дибензилбутиролактонового типа, но в незначительных количествах [38].
БИОЛОГИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ ДИКОРАСТУЩИХ ПРЕДСТАВИТЕЛЕЙ РОДА LINUM
Лен используется в восточной и европейской медицине с давних времен. В тибетской медицине виды рода Linum, известные под названием “zar-ma”, применяют как противокашлевое, седативное и мочегонное средство. Используют масло, надземную часть L. usitatissimum и L. perenne. У L. baicalense Juz., по одним сведениям, используют семена и надземную часть, по другим – только его цветки [42, 69–71]. В Китае, Европе и Индии семена льна считают мягчительным и противовоспалительным средством, используемым при гастрите, поносе, геморрое, расстройствах менструального цикла [71].
L. perenne применяют как отхаркивающее средство; используют при неврастении, олигурии; в китайской медицине – как обволакивающее, противовоспалительное, и при диарее. В Монголии и Индии жирное масло, семена и надземную часть L. baicalense применяют местно, в виде растирания при невралгических болях, миозитах [42, 70].
В народной медицине семена L. macrorhyzum используют при заболеваниях кишечника, высоком артериальном давлении, а масло при – ожогах, женских заболеваниях и лучевых поражениях кожи. Также, местные жители употребляют жирное масло семян в пищу, а семена используют как корм для птиц и скота. Жмых, в котором содержится до 30% протеина, – прекрасный корм для животных. L. heterosepalum, L. olgae и L. altaicum в народной медицине используют при кишечных заболеваниях и при ожогах [42, 72, 73].
СЕКЦИЯ ADENOLINUM (REICHENB.) JUZ.
Корни L. austriacum и L. euxinum Juz. (синоним L. squamulosum Rudolphi) в эксперименте проявляли дрожжестатическую активность [42]. Лигнаны дифиллин и юстицидин В, содержащиеся в надземных частях L. perenne и L. austriacum, проявляют антивирусную активность и эффективны против SARS-Cov-2 [74]. Каллусные и суспензионные культуры L. narbonense и L. leonii, благодаря наличию юстицидина B, проявляли цитотоксическую активность [49].
Для L. stelleroides (секция Stellerolinum) данные по биологической активности отсутствуют.
СЕКЦИЯ LINUM
Корни L. nervosum Waldst. et Kit. в эксперименте проявляли дрожжестатическую активность [42]. Каллусные клеточные культуры L. grandiflorum накапливают лигнаны арилнафталинового типа, экстракты которых проявляли в эксперименте антиоксидантную и противоопухолевую активности [56].
СЕКЦИЯ SYLLINUM GRISEB.
В эксперименте изучено обезболивающее воздействие мази, содержащей в составе 10%-й водный экстракт L. album L., на перелом дистального отдела лучевой кости [75].
Согласно сводке “Растительные ресурсы России” [48], водный экстракт корней L. flavum проявляет антибактериальную активность, а эфирный и спиртовой экстракты – антибактериальную и антифунгальную активности. В эксперименте 41-деметил-6-метоксиподофиллотоксин из L. tauricum оказывает цитотоксическое действие в отношении клеток линий HL-60, BV-173 и LAMA-84 [30]. Было показано, что метанольные экстракты из турецкого вида L. arboreum L. обладают сильной антиоксидантной активностью [76].
Для L. nodiflorum (секция Tubilinum) данные по биологической активности отсутствуют.
СЕКЦИЯ DASYLINUM (PLANCH.) JUZ.
Выделенное эфирное масло Linum pubescens проявляло высокую антимикробную активность в отношении грамположительных бактерий (Bacillus cereus ATCC 11778, Enterococcus faecalis ATCC 29212 и Staphylococcus aureus ATCC 2923) и проявляло умеренную антимикробную активность в отношении грамотрицательных бактерий (Escherichia coli ATCC 25922, Enterococcus faecalis ATCC 13048 и Klebsiella pneumoniae ATCC 10031) [65].
Для L. olgae и L. heterosepalum (секция Macrantholinum) данные по биологической активности отсутствуют.
СЕКЦИЯ LINOPSIS (REICHENB.) ENGELM.
Экстракты Linum trigynum (PE, CHCl3, AcOEt и n-BuOH) проявляют высокую антиоксидантную активность благодаря наличию флавоноидов, фенольных кислот и их производных [67]. Показано, что этилацетатные экстракты L. numidicum Murb. (EAELN) и L. trigynum (EAELT) проявляют противоопухолевую активность через остановку клеточного цикла и индукцию апоптоза клеточных линий PC3 и MDA-MB-231. EAELN обладал самой высокой антипролиферативной активностью в отношении линий PC3 (IC50 = 133 ± 5.7 мкг/мл) и MDA-MB-231 (IC50 = 157 ± 2.8 мкг/мл). EAELN также продемонстрировал лучшую апоптотическую активность, вызывая остановку клеточного цикла клеток PC3 в фазе G2/M, тогда как остановку в фазах G0/G1 и G2/M наблюдали после обработки EAELT. Профилирование экстрактов с помощью LC-HRMS/MS выявило присутствие известных соединений, которые могут быть ответственны за наблюдаемую противоопухолевую активность, таких как цикориевая кислота, висенин-2, витексин и подофиллотоксин-β-d-глюкозид. EAELN можно рассматривать как источник для лечения рака [77].
В экстрактах Linum corymbulosum обнаружен (−)-хинокинин, который оказался наиболее мощным средством против вируса гепатита В человека среди 25 протестированных соединений и обладает противовоспалительным и анальгетическим эффектами. Он проявляет значительную трипаноцидную активность в отношении Trypanosoma cruzi, возбудителя болезни Шагаса, проявляет антигенотоксическую активность в периферической крови крыс линии Вистар и антибактериальную и антифунгальную активности против Candida albicans [68].
Для L. catharticum (Subgenus Cathartolinum) данные по биологической активности отсутствуют.
Запасы сырья представителей рода Linum изучены недостаточно. В литературе обнаружены сведения о L. macrorizum, L. amurense (L. perenne) и L. olgae. По мнению Х.Х. Садикова [72], в Таджикистане запас растительного сырья более или менее достаточен только для L. macrorizum, для L. olgae – сырье собирается в недостаточном количестве. А. И. Шретер [71] отмечает, что сбор запасов сырья L. amurense (Дальний Восток) хотя бы до 1 т затруднителен.
Лигнаны часто извлекают из растений, которые в природных условиях характеризуются небольшим ареалом, небольшим числом особей в сообществе и очень низкими урожаями. Культуры тканей in vitro можно рассматривать в качестве инструмента для крупномасштабного производства полезных для медицины лигнанов. Определены условия, позволяющие увеличивать продуцирование лигнанов в культурах клеток in vitro. Для увеличения выработки вторичных метаболитов в клеточных культурах корней и культурах клеток каллуса некоторых видов рода Linum использовали метилжасмонат (MeJA). Так, в культурах клеток in vitro L. lewisii [78], L. grandiflorum [78, 79], L. austriacum [50], L. perenne [51, 79] и L. thracicum [81] удалось увеличить продукцию юстицидина B, а в культурах клеток L. nodiflorum – 6-метоксиподофиллотоксина [64]. Кроме того, показано, что некоторые дикорастущие виды хорошо поддаются интродукции [82–84] и введению в культуру de novo [78]. Используя эти сведения, можно ожидать расширение изучения состава дикорастущих представителей рода Linum с возможным дальнейшим использованием их в медицине.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Обобщены сведения о компонентном составе и биологической активности семян или экстрактов 54 дикорастущих видов рода Linum, относящихся к 2 подродам и 8 секциям. Несмотря на то, что изучены представители практически всех существующих на данный момент секций рода Linum, в литературе обнаружили сведения только для части всех известных видов. Так, для представителей секции Adenolinum, насчитывающей в полном объеме 28 видов, удалось собрать разрозненные сведения только о 15 видах с подвидами; для представителей секции Linum (около 50 видов) – 9 видов; секции Syllinum (15 видов) – 13 видов c подвидами; секции Dasillinum (по разным сведениям от 4 до 9 видов в полном объеме) – 4 вида с подвидами; секции Linopsis (около 40 видов) – 8 видов. Приведены данные по компонентного составу и биологической активности для L. stelleroides Planch. из монотипной секции Stellerolinum Juz. ex Probat., L. nodiflorum L. из монотипной секции Tubilinum Svetlova, L. heterosepalum Regel и L. olgae Juz. из олиготипной секции Macrantholinum Juz., а также для L. catharticum L. из отдельного подрода Cathartolinum (Rechenb.) Svetlova.
В надземных частях изученных дикорастущих представителей рода Linum обнаружены: слизи (листья и семена), белки (семена), витамины (листья, семена), алкалоиды, флавоноиды, сапонины, кумарины, дубильные вещества, пигменты, цианогенетические глюкозиды и лигнаны, в подземных частях – алкалоиды, сапонины, кумарины и лигнаны. Из надземных цветущих частей L. perenne, L. ausrtiacum, L. hirsutum, L. pubescens, L. tenuifolium и L. catharticum выделено эфирное масло.
Семена изученных дикорастущих представителей рода Linum достигают (1.1)2–5(6) мм в длину, (0.7)1–3(4) мм в ширину. Интересно отметить, что масло, полученное из семян некоторых дикорастущих видов (например, L. austriacum L., L. perenne L., L. lewisii Pursh., L. pallescens Bunge и L. bienne Mill.), по содержанию жирных кислот не уступает маслу, выделенному из семян L. usitatissimum. Известно, что для снижения риска сердечнососудистых заболеваний у населения в его рационе должны присутствовать семена, отношение n-6/n-3 ПНЖК в которых ниже 4.0. Отметим, что в семенах большинства исследованных дикорастущих видов рода Linum этот показатель ниже или равен 4.0. L. lewisii и L. bienne рассматриваются как потенциальные кандидаты для применения их в диетическом питании. Отношение n-6/n-3 ПНЖК выше значения 4.0 отмечено для семян L. marginale и L. grandiflorum из секции Linum; L. nodiflorum; L. tenuifolium, L. suffruticosum, L. aristatum и L. hudsonioides из секции Linopsis; L. macrorhizum из секции Adenolinum. Следовательно, семена этих видов нужно использовать в пищу с осторожностью.
Было обнаружено, что L. lewisii и L. marginale отличаются максимальным содержанием α-линоленовой кислоты (65.4 и 62.8% соответственно), L. tenuifolium – линолевой (69.7%), а L. catharticum – олеиновой кислоты (27.0%). Выявлено, что у представителей секций Syllinum и Linopsis, в отличие от видов других секций, содержание ALA ниже, чем LA.
Различия между видами разных секций заключаются в типах продуцируемых лигнанов. Так, виды секций Syllinum, Linopsis и L. catharticum преимущественно накапливают лигнаны арилтетралинового (АТ) типа. Представители секций Adenolinum, Linum и Dasylinum содержат, в основном, арилнафталеновые (АN) и арилдигидронафталиновые (ADN) лигнаны (типичный представитель юстицидин В). Наблюдаются отличия в количестве накапливаемых лигнанов в разных частях растения. В семенах шести видов рода Linum (L. viscosum, L. decumbens, L. glaucum (= L. austriacum subsp. glaucescens (Boiss.) P.H. Davis), L. grandiflorum, L. monogynum и L. suffruticosum) не обнаружено определяемого количества лигнанов. Перечисленные виды относятся к разным секциям, и эти сведения в дальнейшем можно использовать для уточнения вопросов систематики, эволюции и родственных связей внутри рода Linum.
Показано, что виды, отличающиеся широким ареалом и большим содержанием лигнанов арилдигидронафталинового (ADN) типа (юстицидин В), например L. austriacum и L. perenne, проявляют противовирусную активность и эффективны против SARS-Cov-2. Представители желтоцветковых льнов из секции Syllinum, у которых преобладающим типом лигнанов является арилтетралиновый (АТ) (например, 6-метоксиподофиллотоксин и его производные), проявляют антираковую активность. L. corymbulosum из секции Linopsis, содержащий (–)-хинокинин, может быть перспективным источником отечественной фармацевтической субстанции растительного происхождения для последующего всестороннего изучения как дополнительного средства против вируса гепатита В человека.
Наиболее полно исследованы компонентный состав и биологическая активность у представителей секций Adenolinum, Syllinum и Linopsis. Для L. squamulosum (= L. euxinum Juz.), L. nervosum и L. arboreum в литературе обнаружены данные только по биологической активности, компонентный состав этих видов не изучали. Нет подробных данных о компонентном составе L. olgae и L. heterosepalum (секция Macrantholinum), L. nodiflorum (секция Tubilinum), L. hypericifolium (секция Dasylinum). Отсутствуют данные по биологической активности L. olgae, L. heterosepalum, L. nodiflorum, L. stelleroides и L. catharticum (Subgenus Cathartolinum). Не обнаружено никаких сведений по компонентному составу и биологической активности для кавказского вида L. seljukorum P.H. Davis из монотипной секции Heleolinum T.V. Egorova.
Таким образом, дальнейшие исследования компонентного состава и биологической активности разных дикорастущих видов рода Linum L. (Linaceae DC. ex Perleb) перспективно для получения новых сведений как для хемосистематики, так и для расширения арсеналов эффективных лекарственных препаратов. Особенно это касается неизученных или слабо изученных дикорастущих видов.
БЛАГОДАРНОСТИ
Работа выполнена в рамках госзадания Ботанического института им. В.Л. Комарова РАН (тема “Сосудистые растения Евразии: систематика, флора, растительные ресурсы” № АААА-А19-119031290052-1).
ACKNOWLEDGEMENTS
The work was carried out within the framework of state assignments of the Komarov Botanical Institute of the Russian Academy of Sciences (no. АААА-А19-119031290052-1).
作者简介
A. Naumenko-Svetlovа
V. L. Komarov Botanical Institute, Russian Academy of Sciences
编辑信件的主要联系方式.
Email: ANaumenko@binran.ru
俄罗斯联邦, St.-Petersburg
参考
- Svetlova А.А. 2009. The taxonomic review of the genus Linum (Linaceae) of the flora of Russia and adjacent states. – Novitates systematicae plantarum vascularium. 41: 99–165. https://elibrary.ru/item.asp?id=15103291 (In Russian)
- Svetlova А.А. 2007. The genus Linum L. in flora of Siberia and Mongolia. – In: Problems of botany of South Siberia and Mongolia: Proceedings of the 6th Intern. sci.-pract. conf. (Barnaul, October 25–28, 2007). Barnaul. P. 54–59. http://elibrary.asu.ru/xmlui/handle/asu/262 (In Russian)
- Svetlova А.А. 2008. The genus Linum L. in flora of Central Asia. – In: Problems of botany of South Siberia and Mongolia: Proceedings of the 7th Int. sci.-pract. conf. (Barnaul, October 21–24, 2008). Barnaul. P. 299–302. http://elibrary.asu.ru/xmlui/handle/asu/274 (In Russian)
- Zelentsov S.V., Zelentsov V.S., Moshnenko E.V., Ryabenko L.G. 2016. Modern understanding of the phylogeny and taxonomy of genus Linum L. and flax (Linum usitatissimum L.). – Maslichnye kultury. 1(165): 106–121. https://elibrary.ru/item.asp?id=26136641 (In Russian)
- Elladi Е.V. 1940. [Family Linaceae (DC.) Dumort]. – In: [Cultivated flora of the USSR (fiber plants)]. Moscow; Leningrad. Vol. 5. Part 1. P. 97–206. (In Russian)
- Chishty S., Bissu M. 2016. Health benefits and nutritional value of flaxseed – a review. – Indian J. Appl. Res. 6(1): 243–245. https://www.worldwidejournals.com/indian-journal-of-applied-research-(IJAR)/fileview/January_2016_ 1453271124__72.pdf
- Svetlova A.A., Yakovleva O.V. 2010. Characters of mucilage sells of some species from the genus Linum (Linaceae) in Russia. – Rastitelnye Resursy. 46(2): 1–12. https://elibrary.ru/item.asp?id=17028755 (In Russian)
- Ovodov Yu.S. 1998. Polysaccharides of Phanerogams: structure and physiological activity. – Russian J Bioorgan. Chem. 24(7): 423–439.
- Naran R., Chen G., Carpita N.C. 2008. Novel rhamnogalacturonan I and arabinoxylan polysaccharides of flax seed mucilage. – Plant Physiol. 148(1): 132–141. https://doi.org/10.1104/pp.108.123513
- Pyasyackene A.P. 1994. [Water soluble plant polysaccharides, their localization, biological and economical importance. Abstr. Diss. … Cand. (Biology) Sci.]. Vilnius. 74 P. (In Lituanean with extended Russian and English abstracts)
- Olennikov D.N., Tankhaeva L.M. 2007. [Studing the process of flax seeds (L. usitatissimum L.) polysaccharides extraction]. – Khimija rastitel’nogo syr’ja. 4: 79–83. https://elibrary.ru/item.asp?id=9570134
- Troshchynska Y., Bleha R., Synytsya A., Štětina J. 2022. Chemical composition and rheological properties of seed mucilages of various yellow- and brown-seeded flax (Linum usitatissimum L.) cultivars. – Polymers. 14(10): 2040. https://doi.org/10.3390/polym14102040
- Dorrell D.G. 1970. Distribution of fatty acids within the seed of flax. – Can. J. Plant Sci. 50(1): 71–75. https://cdnsciencepub.com/doi/pdf/10.4141/cjps70-011
- Jamalova D.N., Tojibaev K.Sh., Juramurodov I.J. 2020. Species of the Linaceae family in the flora of Uzbekistan: distribution, chemical composition and useful properties. – Scientific Bulletin. Series: Bioiogical Research. 4(48): 16–27. https://www.ajbiological.uz/article/698420925089/pdf (In Russian)
- Mueed A., Shibli S., Korma S. A., Madjirebaye P., Esatbeyoglu T., Deng Z. 2022. Flaxseed bioactive compounds: chemical composition, functional properties, food applications and health benefits-related gut microbes. – Foods. 11(20): 3307. https://doi.org/10.3390/foods11203307
- Plaha N.S., Kaushik N., Awasthi S., Singh M., Kaur V., et al. 2023. Comparison of nutritional quality of fourteen wild Linum species based on fatty acid composition, lipid health indices, and chemometric approaches unravelling their nutraceutical potential. – Heliyon. 9(11): e21192. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2023.e21192
- Akter Y., Junaid M., Afrose S.S., Nahrin A., Alam M.S., Sharmin T., et al. 2021. A comprehensive review on Linum usitatissimum medicinal plant: its phytochemistry, pharmacology, and ethnomedicinal uses. – Mini Rev. Med. Chem. 21(18): 2801–2834. https://doi.org/10.2174/1389557521666210203153436
- Oppedisano F., Macrì R., Gliozzi M., Musolino V., Carres C., Maiuolo J., et al. 2020. The anti-inflammatory and antioxidant properties of n-3 PUFAs: their role in cardiovascular protection. – Biomedicines. 8(9): 306. https://doi.org/10.3390/biomedicines8090306
- Mowry K.C., Thomson-Parker T.L., Morales C., Fikes K.K., Stutts K.J., Leatherwood J.L., et al. 2022. Effects of crude rice bran oil and a flaxseed oil blend in young horses engaged in a training program. – Animals. 12(21): 3006. https://doi.org/10.3390/ani12213006
- Madhusudhan K.T., Singh N. 1985. Effect of detoxification treatment on the physicochemical properties of linseed proteins. – J. Agricultur. Food Chem. 33(6): 1219–1222. https://doi.org/10.1021/jf00066a051
- Yoon J.H., Jang W.Y., Park S.H., Kim H.G., Shim Y.Y., Reaney M.J.T., Cho J.Y. 2023. Anti-melanogenesis effects of a cyclic peptide derived from flaxseed via inhibition of CREB pathway. – Int. J. Mol. Sci. 24(1): 536. https://doi.org/10.3390/ijms24010536
- Singh K.K., Mridula D., Rehal J., Barnwal P. 2011. Flaxseed: A potential source of food, feed and fiber. – Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 51: 210–222. https://doi.org/10.3390/ijms24010536
- Vassel B., Nesbitt L.L. 1945. The nitrogenous constituents of flaxseed. II. The isolation of a purified protein fraction. – J. Biol. Chem. 3(159): 571–584. https://doi.org/10.1016/S0021-9258(17)41562-6
- Li X., Li J., Dong S., Li Y., Wei L., Zhao C., et al. 2019. Effects of germination on tocopherol, secoisolarlciresinol diglucoside, cyanogenic glycosides and antioxidant activities in flaxseed (Linum usitatissimum L.). – Int. J. Food Sci. Technol. 54(7): 2346–2354. https://doi.org/10.1111/ijfs.14098
- Rafieian-Kopaei M., Shakiba A., Sedighi M., Bahmani M. 2017. The analgesic and anti-inflammatory activity of Linum usitatissimum in Balb/c mice. – J. Evid. Based Complementary Altern. Med. 22(4): 892–896. https://doi.org/10.1177/2156587217717416
- Ansari R., Zarshenas M.M., Dadbakhsh A.H. 2019. A review on pharmacological and clinical aspects of Linum usitatissimum L. – Curr. Drug. Discov. Technol. 16(2): 148–158. https://doi.org/10.2174/1570163815666180521101136
- Poljšak N., Kreft S., Kočevar Glavač N. 2020. Vegetable butters and oils in skin wound healing: Scientific evidence for new opportunities in dermatology. – Phytother. Res. 34(2): 254–269. https://doi.org/10.1002/ptr.6524
- Vlčková R., Sopková D., Andrejčáková Z., Lecová M., Fabian D., Šefčíková Z., et al. 2022. Dietary supplementation of flaxseed (Linum usitatissimum L.) alters ovarian functions of xylene-exposed mice. – Life. 12(8): 1152. https://doi.org/10.3390/life12081152
- Sirotkin A.V. 2023. Influence of Flaxseed (Linum usitatissimum) on female reproduction. – Planta Med. 89(6): 608–615. https://doi.org/10.1055/a-2013-2966
- Shama S.N., Sravanthi C., Pranitha D., Pavan D.P., Ravali V., Kumar P.S. 2022. Antidiabetic activity of ethanol extract of leaves of flax plant (Linum usitatissimum L.). – World J. Biol. Pharm. Health Sci. 12(03): 365–369. https://doi.org/10.30574/wjbphs.2022.12.3.0275
- Mohamed H.H., Alomair N.A., Akhtar S., Youssef T.E. 2019. Eco-friendly synthesized α-Fe2O3/TiO2 heterojunction with enhanced visible light photocatalytic activity. – J. Photochem. Photobiol. A. 382: 111951. https://doi.org/10.1016/j.jphotochem.2019.111951
- Mohamed H.H., Besisa D.H.A. 2023. Eco-friendly and solar light-active Ti-Fe2O3 ellipsoidal capsules’ nanostructure for removal of herbicides and organic dyes. – Environ. Sci. Pollut. Res. 30(7): 17765–17775. https://doi.org/10.1007/s11356-022-23119-0
- Alfermann A., Petersen M., Fuss E. 2003. Production of natural products by plant cell biotechnology: Results, problems and perspectives. – In: Plant Tissue Culture. Springer, Vienna. P. 153–166. https://doi.org/10.1007/978-3-7091-6040-4_9
- Hemmati S., Seradj H. 2016. Justicidin B: a promising bioactive lignan. – Molecules. 21(7): 820. https://doi.org/10.3390/molecules21070820
- Kartal M., Konuklugil B., Indrayanto G., Alfermann A. 2004. Comparison of different extraction methods for the determination of podophyllotoxin and 6-methoxypodophyllotoxin in Linum species. – J. Pharm. Biomed. Analysis. 35(3): 441–447. https://doi.org/10.1016/j.jpba.2004.01.016
- Ockendon D.J., Walters S.M. 1968. Linum L. – In: Flora Europaea. Cambridge. Vol. 2. P. 206–211.
- McDill J., Repplinger M., Simpson B.B., Kadereit J.W. 2009. The phylogeny of Linum and Linaceae subfamily Linoideae, with implications for their systematics, biogeography, and evolution of heterostyly. – Syst. Bot. 34(2): 386–405. https://doi.org/10.1600/036364409788606244
- Schmidt T.J., Hemmati S., Klaes M., Konuklugil B., Mohagheghzadeh A., Ionkova I., et al. 2010. Lignans in flowering aerial parts of Linum species – Chemodiversity in the light of systematics and phylogeny. – Phytochem. 71(14–15): 1714–1728. https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2010.06.015
- Schmidt T.J., Klaes M., Sendker J. 2012. Lignans in seeds of Linum species. – Phytochem. 82: 89–99. https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2012.07.004
- Yuzepchuk C.V. 1949. [Flax family – Linaceae Dumort.]. – In: Flora of the USSR. Moscow; Leningrad. Vol. 14. P. 84–146. (In Russian)
- Naumenko-Svetlova А.A. 2016. Taxonomic review of the genus Linum L. section Adenolinum (Rchb.) Juz. (Linaceae). – Novitates systematicae plantarum vascularium. 47: 40–84. https://elibrary.ru/item.asp?id=27538770 (In Russian)
- Sokolov P.D. 1988. [Family Linaceae S. F. Gray – Flax family]. – In: [Plant Resources of the USSR: Wild flowering plants, their component composition and biological activity. Family Rutaceae – Elaeagnaceae]. Vol. 4. Leningrad. P. 27–29. (In Russian)
- Hajdav C., Altanchimeg B., Varlamova T.S. 1985. [Medicinal plants in Mongolian medicine. 2nd edition.]. Ulan-Bator. 380 p. (In Russian)
- Velasco L., Goffman F. 2000. Tocopherol, plastochromanol and fatty acid patterns in the genus Linum. – Plant Syst. Evol. 221: 77–88. https://doi.org/10.1007/BF01086382
- Stankov S.S. 1944. [Wild oil plants of the USSR and their common use]. Moscow. 78 p. (In Russian)
- Sharapov N.I. 1956. [New oleaginous plants]. Moscow; Leningrad. 111 p. (In Russian)
- Innes P., Gossweiler A., Jensen S., Tilley D., St. John L., Jones T., Kitchen S., Hulke B.S. 2022. Assessment of biogeographic variation in traits of Lewis flax (Linum lewisii) for use in restoration and agriculture. – AoB Plants. 14(2): plac005. https://doi.org/10.1093/aobpla/plac005
- Povydysh M.N., Bityukova N.V. 2010. [Order Linales]. – In: [Plant Resources of Russia: Wild flowering plants, their component composition and biological activity. Vol. 3. Family Fabaceae–Apiaceae]. St. Petersburg; Moscow. P. 111–112. (In Russian)
- Vasilev N.P., Ionkova I. 2005. Cytotoxic activity of extracts from Linum cell cultures. – Fitoterapia. 76(1): 50–53. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2004.10.008
- Mohagheghzadeh A., Schmidt T.J., Alfermann A.W. 2002. Arylnaphthalene lignans from in vitro cultures of Linum austriacum. – J. Nat. Prod. 65(1): 69–71. https://doi.org/10.1021/np0102814
- Hemmati S., Schmidt T.J., Fuss E. 2007. (+)-Pinoresinol/(–)-lariciresinol reductase from Linum perenne Himmelszelt involved in the biosynthesis of justicidin B. – FEBS Lett. 581(4): 603–610. https://doi.org/10.1016/j.febslet.2007.01.018
- Jullian-Pawlicki N., Lequart-Pillon M., Huynh-Cong L., Lesur D., Cailleu D., Mesnard F., et al. 2015. Arylnaphthalene and aryltetralin-type lignans in hairy root cultures of Linum perenne, and the stereochemistry of 6-methoxypodophyllotoxin and one diastereoisomer by HPLC-MS and NMR spectroscopy. – Phytochem. Anal. 26(5): 310–319. https://doi.org/10.1002/pca.2565
- Mascheretti I., Alfieri M., Lauria M., Locatelli F., Consonni R., Cusano E., et al. 2021. New insight into justicidin B pathway and production in Linum austriacum. – Int. J. Mol. Sci. 22(5): 2507. https://doi.org/10.3390/ijms22052507
- Mohagheghzadeh A., Dehshahri S., Hemmati S. 2009. Accumulation of lignans by in vitro cultures of three Linum species. – Z. Naturforsch. C J. Biosci. 64(1–2): 73–76. https://doi.org/10.1515/znc-2009-1-213
- Konuklugil B., Ionkova I., Vasilev N., Schmidt T.J., Windhövel J., Fuss E., Alfermann A.W. 2007. Lignans form Linum species of sections Syllinum and Linum. – Nat. Prod. Res. 21(1): 1–6. https://doi.org/10.1080/14786410600798385
- Asad B., Khan T., Gul F.Z., Ullah M.A., Drouet S., Mikac S., et al. 2021. Scarlet flax Linum grandiflorum (L.) in vitro cultures as a new source of antioxidant and anti-inflammatory lignans. – Molecules. 26(15): 4511. https://doi.org/10.3390/molecules26154511
- Bolsheva N.L., Melnikova N.V., Dvorianinova E.M., Mironova L.N., Yurkevich O.Y., Amosova A.V., et al. 2022. Clarification of the position of Linum stelleroides Planch. – Plants. 11(5): 652. https://doi.org/10.3390/plants11050652
- Klaes M., Ellendorff T., Schmidt T.J. 2009. 6-Methoxypodophyllotoxin-7-O-n-hexanoate, a new aryltetralin lignan ester from seeds of Linum flavum. – Planta Medica. 76(7): 719–721. https://doi.org/10.1055/s-0029-1240674
- Broomhead A.J., Dewick P.M. 1990. Aryltetralin lignans from Linum flavum and Linum capitatum. – Phytochemistry. 29(12): 3839–3844. https://doi.org/10.1016/0031-9422(90)85343-E
- Zare Kh., Movafeghi A., Mohammadi S.A., Asnaashari S., Nazemiyeh H. 2014. New phenolics from Linum mucronatum subsp. orientale. – Bioimpacts. 4(3): 117–122. https://doi.org/10.15171/bi.2014.004
- Vasilev N., Ebel R., Edrada R., Fuss E., Alfermann A.W., Ionkova I., Petrova A., Repplinger M., Schmidt T.J. 2008. Metabolic profiling of lignan variability in Linum species of section Syllinum native to Bulgaria. – Planta Med. 74(3): 273–280. https://doi.org/10.1055/s-2008-1034298
- Alfieri M., Mascheretti I., Kentsop R. A. D., Consonni R., Locatelli F., Mattana M., Ottolina G. 2021. Enhanced aryltetralin lignans production in Linum adventitious root cultures. – Molecules. 26(17): 5189. https://doi.org/10.3390/molecules26175189
- Kranz K., Petersen M. 2003. β-Peltatin 6-O-methyltransferase from suspension cultures of Linum nodiflorum. – Phytochemistry. 64(2): 453–458. https://doi.org/10.1016/s0031-9422(03)00196-1
- Berim A., Spring O., Conrad J., Maitrejean M., Boland W., Petersen M. 2005. Enhancement of lignan biosynthesis in suspension cultures of Linum nodiflorum by coronalon, indanoyl-isoleucine and methyl jasmonate. – Planta. 222(5): 769–776. https://doi.org/10.1007/s00425-005-0019-9
- Al-Qudah M.A. 2012. Chemical composition and antimicrobial activity of the essential oil of Linum pubescens growing wild in Jordan. – Nat. Prod. Res. 27(12): 1141–1144. https://doi.org/10.1080/14786419.2012.715291
- Rogers C.M. 1984. Linaceae S. F. Gray. – In: North American Flora. Series II. Part 12. New York. 58 p.
- Mouna R., Kabouche Z., Bensouici C., Broisat A., Ahmed A., Ghezzi C. 2023. Phytochemical profiling and antioxidant activity of Linum trigynum. – Nat. Prod. Res. https://doi.org/10.1080/14786419.2023.2218010
- Bayindir U., Alfermann A.W., Fuss E. 2008. Hinokinin biosynthesis in Linum corymbulosum Reichenb. – Plant J. 55(5): 810–820. https://doi.org/10.1111/j.1365-313X.2008.03558.x
- Batorova S.M., Yakovlev G.P., Aseeva T.A. 2013. [Reference book of traditional Tibetan medicinal plants]. Novosibirsk. 292 p. (In Russian)
- Ligaa U., Davaasuren B., Ninjil N. 2009. Medicinal plants of Mongolia used in Western and Eastern Medicine. Moscow. 378 p.
- Shreter A.I. 1975. [Flax family – Linaceae]. – In: [Medicinal flora of the Soviet Far East]. Moscow. P. 169–170. (In Russian)
- Sadikov H.H. 2017. [Wild medicinal plants of the Iskander river basin (Tadzhikistan)]. Dushanbe. 136 s. (In Russian)
- Kotukhov Yu.A., Danilova A.N., Kubentaev S.A. 2015. [List of medicinal flora of the Kazakh Altai]. Ridder. 156 s. (In Russian)
- Tóth G., Horváti K., Kraszni M., Ausbüttel T., Pályi B., Kis Z., et al. 2023. Arylnaphthalene lignans with Anti-SARS-CoV-2 and antiproliferative activities from the underground organs of Linum austriacum and Linum perenne. – J. Nat. Prod. 86(4): 672–682. https://doi.org/10.1021/acs.jnatprod.2c00580
- The effect of Linum album on restoration of bone fracture. Identifier IRCT20180610040049N7. International Clinical Trails Registry Platform. 2021 https://trialsearch.who.int/Trial2.aspx?TrialID=IRCT20180610040049N7
- Çoban T., Konuklugil B. 2005. Free radical scavenging activity of Linum arboretum. – Pharm. Biol. 43(4): 370–372. https://doi.org/10.1080/13880200590951847
- Mouna R., Broisat A., Ahmed A., Debiossat M., Boumendjel A., Ghezzi C., Kabouche Z. 2022. Antiproliferative activity, cell-cycle arrest, apoptotic induction and LC-HRMS/MS analyses of extracts from two Linum species. – Pharm. Biol. 60(1): 1491–1501. https://doi.org/10.1080/13880209.2022.2102196
- Kentsop R.A.D., Consonni R., Alfieri M., Laura M., Ottolina G., Mascheretti I., Mattana M. 2022. Linum lewisii adventitious and hairy-roots cultures as lignan plant factories. – Antioxidants. 11(8): 1526. https://doi.org/10.3390/antiox11081526
- Tashlieva I.I., Gladkov E.A. 2019. Development of the method of introduction to cells culture and plant regeneration of decorative flax (Linum grandiflorum, Linum perenne). – Yu.A. Ovchinnikov bulletin of biotechnology and physical and chemical biology. 15(1): 22–24. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=38251785 (In Russian)
- Goncharuk E.A., Borisova A.YU., Zhivukhina E.A. 2019. Linum grandiflorum L. reaction to cultivation conditions. – In: [Contemporary problems of biological and chemical ecology: Proceedings of the VI International Scientific and Practical Conference]. Moscow. P. 42–45. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=37276111 (In Russian)
- Sasheva P., Ionkova I., Stoilova N. 2015. Methyl jasmonate induces enhanced podophyllotoxin production in cell cultures of thracian flax (Linum thracicum ssp. thracicum). – Nat. Prod. Commun. 10(7): 1225–1228. https://doi.org/10.1177/1934578X1501000722
- Ibatulina Ju.V., Usmanova N.V. 2019. Biomorphological features of i Linum czernjaëvii Klokov in natural communities and in the course of introduction in the Dinetsk Botanical Garden. – In: [Research and conservation of biodiversity in botanical gardens and other introduction centres: Proceedings of scientific conference]. Donetsk. P. 156–162. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=41433788 (In Russian)
- Morozova I.V., Radygina V.I. 2016. [Wild ornamental plants of the families Liliaceae, Violaceae, Campanulaceae, Linaceae in the flora of the Orel Region]. – Aktual’nye problemy estestvennonauchnogo obrazovaniya, zashchity okruzhayushchej sredy i zdorov’ya cheloveka. 2(2): 267–272. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=26231688 (In Russian)
- Ibatulina Yu.V., Ostapko V.M. 2020. Dynamics of the introduced cenopopulations of Linum nervosum Waldst. et Kit. in artificial steppe phytocenoses in the Donetsk Botanical Garden. – Promyshlennaya Botanika. 20(1): 29–40. https://www.elibrary.ru/item.asp?id=43076263 (In Russian)
- Plants of the World Online. https://powo.science.kew.org
补充文件
