Аннотированный список гельминтов рыб р. Лютога (южный Сахалин)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Представлены результаты ихтиопаразитологических исследований рыб, выловленных в р. Лютога (южный Сахалин). Использованы стандартные паразитологические методы работы (Быховская-Павловская, 1985). Вскрыто 12 видов рыб, шесть из них исследовано впервые: Carassius gibelio, Hypomesus nipponensis, Salvelinus curilus, Gasterosteus sp., Eleginus gracilis, Megalocottus taeniopterus. По результатам оригинальных исследований и литературных данных выявлено 42 вида и неопределенных до вида форм гельминтов, в том числе моногеней 6, цестод 9, трематод 14, скребней 3, нематод 10. У рыб реки Лютога 10 видов пресноводных гельминтов зарегистрированы впервые, новые хозяева в бассейне реки отмечены для 15 видов гельминтов.

Полный текст

Река Лютога – крупнейший водоток юга о. Сахалин. В ней сосредоточены основные нерестовые площади тихоокеанских лососей и других промысловых рыб зал. Анива. На реке развито любительское рыболовство, что делает особенно актуальным изучение паразитофауны ее рыбного населения.

Исследования водной биоты реки Лютога были выполнены в соответствии с календарным планом работ Сахалинского НИИ рыбного хозяйства и океанографии (в настоящее время Сахалинский филиал ФГБНУ «ВНИРО») в 2011 г. В результате комплексных работ описаны ихтиофауна, макрозообентос, микробиоценозы, фито- и зоопланктон (Никитин и др., 2013; Лабай, 2014; Живоглядова и др., 2016, 2017). При изучении ихтиофауны реки собран паразитологический материал, часть которого была представлена ранее в работах С.Г. Соколова с соавторами (Соколов и др., 2012, 2014; Соколов, Фролова, 2015). Авторами отмечены: Proteocephalus longicollis (Zeder, 1800) Benedict, 1900; Cyathocephalus truncatus (Pallas, 1781) Kessler, 1868; Crepidostomum metoecus (Braun, 1900) Braun, 1900, Crepidostomum farionis (Müller, 1780) Lühe, 1909; Cystidicola farionis Fischer, 1798; Pseudocapillaria salvelini (Polyansky, 1952); Rhabdochona zacconis Yamaguti, 1935; Rhabdochona oncorhynchi (Fujita, 1921) Fujita, 1927; Salmonema ephemeridarum (von Linstow, 1872) Moravec, Santos & Brasil-Sato, 2008.

Целью настоящей работы является формирование фаунистического списка гельминтов рыб реки Лютога по оригинальным (исследования в 2011 г.) и опубликованным данным.

Материал для паразитологических исследований был собран в результате ихтиологической съемки на р. Лютога в 2011 г. (Никитин и др., 2013). Для вылова рыб использовали четыре участка (рис. 1): ритраль-эпиритраль (станция № 1), мезоритраль (станция № 2), эстуарная зона (станция № 3) и пойменное озеро (станция № 4). Эколого-географические названия участков реки приведены в соответствии с представлениями В.В. Богатова и А.С. Федоровского (Богатов, Федоровский, 2017).

 

Рисунок 1. Карта-схема участков сбора паразитологического материала: ритраль-эпиритраль (станция № 1), мезоритраль (станция № 2), эстуарная зона (станция № 3), пойменное озеро (станция № 4)

Figure 1. The schematic map of the sites for collecting parasitological material: ritral-epiritral (№ 1), mesoritral (№ 2), estuarine zone (№ 3), floodplain lake (№ 4)

 

Обловы рыб выполняли ставными сетями длиной 30 м с различным шагом ячеи (25×25, 30×30, 40×40, 50×50, 55×55 мм) и с высотой стенки полотна 2–3 м. В нижнем течении реки использовали закидной невод длиной 40 м, высотой стенки 3.5 м и ячеей 10×10 мм, с мелкоячейной (6×6 мм) вставкой в мотне. В небольших притоках в летний период была использована мальковая волокуша длиной 10 м (ячея 3–5 мм) и сачок (ячея 3×3 мм).

Для установления систематического положения рыб использовали определители и атласы (Гриценко, 2002; Леман, Есин, 2008; Линдберг, Легеза, 1965; Линдберг, Красюкова, 1987; Amaoka et al., 1995). В ходе паразитологического анализа вскрыто 155 экз. 12 видов рыб, из них биологическому анализу подвергнуто 7 видов (табл. 1). Использованы стандартные методы сбора и обработки паразитологического материала (Быховская-Павловская, 1985).

 

Таблица 1. Количество и биологические показатели вскрытых рыб р. Лютога в 2011 г.

Table 1. The number and biological indicators of the opened fish of the Lyutoga River in 2011

Вид рыбы

Дата вылова

Номер станции

Колич., экз.

Масса тела, г

Длина (AD), см

Сахалинская красноперка-угай

Pseudaspius sachalinensis

(Nikolskii, 1889)

27.04

3

10

254 ± 47.5

25 ± 1.1

18.05

3

9

109.3 ± 7.0

19.7 ± 0.3

21.06

3

10

253.3 ± 37.6

24.3 ± 1.0

10.11

4

10

107.3 ± 8.8

18.7 ± 0.6

Крупночешуйная красноперка-угай

Pseudaspius hakonensis (Günther, 1877)

24.08

3

20

278.12 ± 22

24.6 ± 0.7

10.11

3

15

243 ± 15.3

24.5 ± 0.4

Серебряный карась

Carassius gibelio (Bloch, 1782)

24.08

4

5

нет данных

нет данных

Морская малоротая корюшка

Hypomesus japonicus (Brevoort, 1856)

10.11

3

3

нет данных

нет данных

Японская малоротая корюшка

Hypomesus nipponensis McAllister, 1963

21.06

3

10

12.56 ± 0.65

12.56 ± 0.17

Японский усатый голец

Barbatula oreas (Jordan & Fowler, 1903)

18.07

2

15

9.07 ± 1.2

8.5 ± 0.4

Сима

Oncorhynchus masou (Brevoort, 1856)

07.10

1

15

6.05 ± 0.6

7.62 ± 0.25

Кунджа

Salvelinus leucomaenis (Pallas, 1814)

18.05

3

2

нет данных

нет данных

Южная мальма

Salvelinus curilus (Pallas, 1814)

24.08

1

7

нет данных

нет данных

Трехиглая колюшка

Gasterosteus sp.

24.08

4

9

нет данных

нет данных

Дальневосточная навага

Eleginus gracilis (Tilesius, 1810)

10.11

3

5

247.6 ± 15.8

30.84 ± 0.8

Южная дальневосточная широколобка

Megalocottus taeniopterus (Kner, 1868)

10.11

3

10

131 ± 10.1

22.1 ± 0.7

 

В качестве характеристик зараженности использованы: экстенсивность инвазии – количество зараженных рыб (%), индекс обилия – среднее количество паразитов в одной рыбе, а также интенсивность инвазии (минимальное и максимальное количество паразитов в одной рыбе). В случае нерепрезентативных выборок вскрытых рыб, количество паразитов приведено в скобках (экз.). В приводимых литературных данных авторская форма представления зараженности сохранена и выражена следующим образом: перед косой чертой – количество зараженных рыб, после черты – количество обследованных, после запятой – интенсивность инвазии.

Видовые названия рыб указаны в соответствии с таксономическими ревизиями по электронной базе данных Eschmeyer’s catalog of fishes https://www.calacademy.org/scientists/projects/catalog-of-fishes (дата обращения 07.04.2024). Названия гельминтов приведены в соответствии с представлениями WORMS https://www.marinespecies.org.

В результате проведенных исследований у рыб р. Лютога зарегистрировано 42 вида и неопределенных до вида форм гельминтов (в том числе 35 по результатам оригинальных исследований и 7 по литературным данным). Далее в систематическом порядке приведен перечень видов гельминтов с указанием хозяев, места вылова, зараженности и локализации.

Класс Monogenea

Dactylogyrus pseudaspii Gussev, 1953

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Pseudaspius sachalinensis (станция № 3, 18.05.11), 15%, 0.35 ± 0.2, 1–4 экз.

Локализация: жаберные лепестки.

Примечание: D. pseudaspii у красноперки P. sachalinensis в реке Лютога регистрируется впервые. Описание вида соответствует типовому (Гусев, 1985).

Dactylogyrus formosus Kulwiec, 1927

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Carassius gibelio (станция № 4), 3 экз.

Локализация: жаберные лепестки.

Примечание: D. formosus у карася C. gibelio р. Лютога регистрируется впервые. Описание вида соответствует типовому (Гусев, 1985).

Dactylogyrus vastator Nybelin, 1924

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Carassius gibelio (станция № 4, 24.08.11), 1 экз.

Локализация: жаберные лепестки.

Примечание: D. vastator у карася C. gibelio в бассейне р. Лютога регистрируется впервые. Описание вида соответствует типовому (Гусев, 1985).

Gyrodactylus sedelnikowi Gvosdev, 1950

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Barbatula oreas (станция № 2, 18.07.11), 40%, 1.1 ± 0.5, 1–7 экз.

Локализация: жаберные лепестки.

Примечание: G. sedelnikowi гольца B. oreas р. Лютога регистрируется впервые. Описание вида соответствует типовому (Гусев, 1985).

Gyrodactylus sp.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Gasterosteus sp. (станция № 4, 24.08.11), 5 экз.

Локализация: плавники.

Примечание: идентификация невозможна, в связи с повреждением материала при сборе.

Paradiplozoon sp.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Pseudaspius hakonensis (станция № 3, 24.08.11), 25%, 1.5–0.7, 2–11 экз.

Локализация: жаберные лепестки.

Примечание: о находке Paradiplozoon sp. запланировано отдельное сообщение.

Класс Cestoda

Khawia parva (Zmeev, 1936) Kulakovskaya, 1961

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Pseudaspius hakonensis (станция № 3, 27.04.11, 18.05.11), 1 экз., 1 экз., (станция № 4, 10.11.11), 1 экз.

Локализация: кишечник.

Pyramicocephalus phocarum (Fabricius, 1780) Monticelli, 1890 pl.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Eleginus gracilis (станция № 3, 10.11.11), 1 экз.

Локализация: полость тела.

Schistocephalus pungitii Dubinina, 1959

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Gasterosteus sp. (станция № 4, 24.08.11), 1 экз.

Локализация: полость тела.

Примечание: Schistocephalus pungitii у колюшки Gasterosteus sp. р. Лютога регистрируется впервые. Описание вида соответствует типовому (Дубинина, 1987).

Ligula interrupta Rudolphi, 1810

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Carassius gibelio (станция № 4, 28.04.11), 1 экз.

Локализация: полость тела.

Примечание: описание вида соответствует описанию Digramma interrupta у М.Н. Дубининой (1987), в соответствии с представлениями WORMS https://www.marinespecies.org. вид является синонимом Ligula interrupta (Ji et al., 2023).

Pelichnibothrium sp. pl.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Pseudaspius hakonensis (станция № 3, 28.04.11), 1 экз.

Локализация: пищевод.

Примечание: широко распространенный морской паразит, встречается в значительном количестве в кишечнике и пилорических придатках лососевых рыб, кеты, горбуши и др. (Вялова, 2003). Обнаружение данного паразита в пищеводе (!) у крупночешуйной красноперки указывает на случайный характер заражения. Вслед за Е.А. Богдановой (1963) и С.Г. Соколовым (2005) мы объясняем это заглатыванием красноперкой гельминтов, освобожденных из кишечника идущих на нерест лососевых, либо поеданием внутренностей погибших рыб. Локализация паразита и дата обследования особи красноперки косвенно подтверждают это предположение.

Proteocephalus longicollis (Zeder, 1800) Benedict, 1900

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Salvelinus leucomaenis (станция № 3, 18.05.11), 1 экз.

Локализация: кишечник.

Примечание: ранее (Соколов и др., 2014) цестода Proteocephalus longicollis регистрировалась у S. leucomaenis р. Лютога, близ пос. Высокое, в июле 2001 г.

Proteocephalus sp.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Barbatula oreas (станция № 2, 18.07.11), 1 экз.

Локализация: кишечник.

Примечание: описание паразита соответствует описанию цестоды, обнаруженной в июле 2001 г. у B. oreas р. Лютога у пос. Высокое (Соколов и др., 2014).

Cyathocephalus truncatus (Pallas, 1781) Kessler, 1868

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Cottus amblystomopsis (р. Лютога у пос. Высокое, июль 2001 г.) 1/2, 1 экз., Salvelinus leucomaenis (р. Лютога у п. Высокое, июль 2001 г.), 1/3, 2 экз.

Локализация: кишечник.

Примечание: сведения о находке опубликованы С.Г. Соколовым с соавторами (Соколов и др., 2012).

Nybelinia surmenicola Okada in Dollfus, 1929 pl.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Pseudaspius sachalinensis (станция № 3, 21.06.11), 1 экз.

Локализация: кишечник.

Класс Trematoda

Diplostomum sp. mtc.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Barbatula oreas (станция № 2, 18.07.11), 3 экз.

Локализация: хрусталик.

Примечание: идентификация невозможна в связи с повреждением при сборе материала.

Diplostomidae gen. sp. mtc.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Carassius gibelio (станция № 4, 24.08.11), 40%, 2.4 ± 1.5, 5–7 экз.

Локализация: мускулатура.

Примечание: зарегистрированные метацеркарии имеют сходство с Ciureatrema perlatum (Ciurea, 1911) Heneberg & Sitko in Heneberg, Sitko & Těšínský, 2019. Для видовой идентификации требуются повторные сборы и молекулярно-генетические исследования.

Crepidostomum metoecus (Braun, 1900) Braun, 1900

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Barbatula oreas (р. Тиобут у п. Чапланово, бассейн р. Лютоги, июль 2001 г.) 2/7, 1 – 1экз.

Локализация: кишечник.

Примечание: сведения о находке опубликованы С.Г. Соколовым с соавторами (Соколов и др., 2012) под названием Crepidostomum nemachilus.

Crepidostomum farionis (Müller, 1780) Lühe, 1909

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Salvelinus leucomaenis (р. Тиобут у п. Чапланово, бассейн р. Лютоги, июль 2001 г.) 1/4, 2 экз.

Локализация: желчный пузырь (ювенильные особи).

Примечание: сведения о находке опубликованы С. Г. Соколовым с соавторами (Соколов и др., 2012).

Pronoprymna petrowi (Layman, 1930) Bray & Gibson, 1980

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Hypomesus nipponensis (станция № 3, 21.06.11), 3 экз.

Локализация: кишечник.

Lepidapedon gadi (Yamaguti, 1934) Acena, 1947

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Eleginus gracilis (станция № 3, 10.11.11), 1 экз., Megalocottus taeniopterus (станция № 3, 10.11.11), 1 экз.

Локализация: кишечник.

Liliatrema sobolevi Gubanov, 1953 mtc.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Megalocottus taeniopterus (станция № 3, 10.11.11), 11.8%, 0.3 ± 0.2, 1–4 экз.

Локализация: мускулатура.

Heterophyidae gen. sp. mtc.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Hypomesus nipponensis (станция № 3, 21.06.11), 86.6%, 8.6 ± 2.0, 2–26 экз.

Локализация: чешуйные кармашки.

Podocotyle reflexa (Creplin, 1825) Odhner, 1905

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Eleginus gracilis (станция № 3, 10.11.11), 100%, 30.8 ± 12.0, 2–69 экз.

Локализация: кишечник.

Примечание: трематоды соответствует известному в литературе описанию (Blend, et al., 2019; Sokolov et al., 2023).

Podocotyle sp.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Megalocottus taeniopterus (станция № 3, 10.11.11), 40%, 1.3 ± 0.5, 2–4 экз.

Локализация: кишечник.

Примечание: описание вида соответствует описанию Podocotyle sp. 1, выполненному С.Г. Соколовым с соавторами (Sokolov et al., 2023).

Zoogonoides viviparus (Olsson, 1868) Odhner, 1902

Хозяин (место обнаружения) зараженность: Pseudaspius sachalinensis (станция № 3, 27.04.11), 40%, 2.5 ± 1.4, 1–12 экз., (станция № 3, 18.05.11), 33%, 0.44 ± 0.2, 1–2 экз., (станция № 3, 21.06.11), 20%, 0.4 ± 0.3, 1–3 экз., Pseudaspius hakonensis (станция № 3, 24.08.11), 30%, 13.9 ± 5.9, 10–89 экз., (станция № 3, 10.11.11), 53%, 5.4 ± 2.3, 1–25 экз.

Локализация: кишечник.

Derogenes varicus (Muller, 1784) Looss, 1901

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Megalocottus taeniopterus (станция № 3, 10.11.11), 60%, 1.9 ± 0.7, 1–7 экз.

Локализация: желудок.

Brachyphallus crenatus (Rudolphi, 1802) Odhner, 1905

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Hypomesus nipponensis (станция № 3, 10.11.11), 60%, 0.9 ± 0.3, 1–2 экз.

Локализация: желудок.

Tubulovesicula lindbergi (Layman, 1930) Yamaguti, 1934

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Salvelinus leucomaenis (станция № 3, 18.05.11), 17 экз.

Локализация: кишечник.

Класс Palaeacanthocephala

Echinorhynchus gadi Zoega in Müller, 1776

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Megalocottus taeniopterus (станция № 3, 10.11.11), 1 экз; Eleginus gracilis (станция № 3, 10.11.11) 1 экз.

Локализация: кишечник.

Pseudorhadinorhynchus leuciscus (Krotov & Petrochenko, 1956) Golvan, 1969

Хозяин: Pseudaspius sachalinensis (станция № 3, 27.04.11), 50%, 1 ± 0.4, 1–4 экз., (станция № 4, 10.11.11), 2 экз., Pseudaspius hakonensis (станция № 3, 24.08.11, 10.11.11), 75%, 2.25 ± 0.8, 1–16 экз., 80%, 2.2 ± 0.5, 1–7 экз.

Локализация: кишечник.

Corynosoma strumosum (Rudolphi, 1802) Luhe, 1904 juv.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Megalocottus taeniopterus (станция № 3, 10.11.11) 17.6%, 0.2 ± 0.1, 1–2 экз., Eleginus gracilis (станция № 3, 10.11.11), 3 экз., Pseudaspius sachalinensis (станция № 3, 27.04.11), 3 экз.

Локализация: полость тела.

Класс Nematoda

Anisakis sp. l.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Pseudaspius sachalinensis (станция № 3, 27.04.11, 21.06.11) 60%, 4.2 ± 2.3, 1–45 экз., 23%, 0.4 ± 0.2, 1–3 экз., Pseudaspius hakonensis (станция № 3, 24.08.11, 10.11.11), 21%, 0.6 ± 0.3, 1–14 экз., 29.3%, 0.6 ± 0.2, 1–5 экз., Eleginus gracilis, (станция № 3, 10.11.11), 1 экз., Megalocottus taeniopterus (станция № 3, 10.11.11), 14.7%, 0.2 ± 0.1, 1–2 экз.

Локализация: скелетная мускулатура, полость тела.

Contracaecum osculatum (Rudolphi, 1802) Baylis, 1920 l.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Hypomesus nipponensis (станция № 3, 10.11.11), 20% 0.2 ± 0.1, 1 экз.

Локализация: полость тела.

Phocanema decipiens (Krabbe, 1878) Myers, 1959 l.

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Hypomesus nipponensis (станция № 3, 10.11.11), 1 экз., Eleginus gracilis (станция № 3, 10.11.11), 1 экз., Megalocottus taeniopterus. (станция № 3, 10.11.11) 8.8%, 0.15 ± 0.1, 1–2 экз.

Локализация: скелетная мускулатура, полость тела.

Cystidicola farionis Fischer, 1798

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Hypomesus nipponensis (станция № 3, 21.06.11), 7/15, 2–7 экз.

Локализация: плавательный пузырь.

Примечание: сведения о находке опубликованы в 2015 г. (Соколов, Фролова, 2015).

Pseudocapillaria (Ichthyocapillaria) salvelini (Polyanski, 1952) Moravec, 1982

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Oncorhynchus masou (станция № 1, 07.10.11), 2/15, 4–3 экз.

Локализация: кишечник и пилорические придатки.

Примечание: сведения о находке опубликованы в работе Соколова с соавторами (Соколов и др., 2014) под названием Pseudocapillaria salvelini.

Salvelinema salmonicola (Ishii, 1916) Margolis, 1966

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Salvelinus curilus (станция № 1, 24.08.11), 5 экз.

Локализация: плавательный пузырь.

Rhabdochona zacconis Yamaguti, 1935

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Pseudaspius sachalinensis (станция № 3, 27.04.11, 18.05.11, 21.06.11) 90%, 3.3 ± 0.8, 1–12 экз., 100%, 6 ± 0.4, 1–22 экз., 60%, 2.6 ± 0.7, 1–8 экз., (станция № 4, 10.11.11), 20%, 0.2 ± 0.1, 1 экз., Pseudaspius hakonensis (станция № 3, 24.08.11, 10.11.11) 65%, 1.65 ± 0.3, 1–8 экз., 67%, 1.6 ± 0.3, 1–9 экз.

Локализация: желудок, кишечник.

Примечание: сведения о находке нематод Rhabdochona zacconis у красноперки Pseudaspius sachalinensis в р. Лютога опубликованы в работе С.Г. Соколова с соавторами (Соколов и др., 2014).

Rhabdochona oncorhynchi (Fujita, 1921) Fujita, 1927

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Oncorhynchus masou (станция № 1, 07.10.11), 1/15, 3 экз.

Локализация: кишечник.

Примечание: сведения о находке опубликованы в работе С.Г. Соколова с соавторами (Соколов и др., 2014).

Salmonema ephemeridarum (von Linstow, 1872) Moravec, Santos & Brasil-Sato, 2008

Хозяин (место обнаружения), зараженность: Oncorhynchus masou (р. Лютога, близ пос. Высокое, июль 2001), 4/6, 1–15 экз., (станция № 1, 07.10.11), 3/15, 1 экз.

Локализация: пищевод, желудок, пилорические придатки, кишечник.

Примечание: сведения о находке опубликованы в работах С.Г. Соколова с соавторами (Соколов и др., 2012, 2014) под названием Sterliadochona ephemeridarum.

Cucullanus truttae Fabricicus, 1794

Хозяин, место обнаружения, зараженность: Salvelinus curilus (станция № 1, 24.08.11), 25.6%, 1.7 ± 1.1, 5–7 экз.

Локализация: кишечник.

Примечание: ранее (Соколов и др., 2012) нематода C. truttae регистрировалась у Salvelinus leucomaenis р. Лютога, близ пос. Высокое, в июле 2001 г.

По оригинальным и литературным данным отмечено 42 вида и неопределенных до вида форм гельминтов, в том числе моногеней 6, цестод 9, трематод 14, скребней 3, нематод 10.

У рыб реки Лютога 10 видов пресноводных гельминтов зарегистрированы впервые.

Гельминты морского и эстуарного происхождения (17 видов), хотя и отмечены впервые у ряда рыб реки Лютога, являются широко распространенными в ихтиофауне морских прибрежных акваторий о-ва Сахалин.

Новые хозяева в бассейне р. Лютога отмечены для 15 видов гельминтов.

БЛАГОДАРНОСТИ

Авторы выражают благодарность В.Д. Никитину (Сахалинский филиал Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии (СахНИРО)) за организацию и проведение ихтиологических работ.

ФИНАНСИРОВАНИЕ РАБОТЫ

Исследование выполнено в рамках государственного задания Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии» №076-00005-19-00. Никаких дополнительных грантов на проведение или руководство данным конкретным исследованием получено не было.

СОБЛЮДЕНИЕ ЭТИЧЕСКИХ СТАНДАРТОВ

В данной работе отсутствуют исследования человека или животных. Вылов рыб осуществлен на основании разрешений, выданных Федеральным агентством по рыболовству №№ 652019031088, 652019030952.

КОНФЛИКТ ИНТЕРЕСОВ

Авторы данной работы заявляют, что у них нет конфликта интересов.

×

Об авторах

Е. В. Фролов

Сахалинский филиал Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии (СахНИРО)

Email: novokreshennihsv@sakhniro.vniro.ru
Россия, Южно-Сахалинск

С. А. Виноградов

Сахалинский филиал Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии (СахНИРО)

Email: novokreshennihsv@sakhniro.vniro.ru
Россия, Южно-Сахалинск

Н. К. Заварзина

Сахалинский филиал Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии (СахНИРО)

Email: novokreshennihsv@sakhniro.vniro.ru
Россия, Южно-Сахалинск

С. В. Новокрещенных

Сахалинский филиал Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии (СахНИРО)

Автор, ответственный за переписку.
Email: novokreshennihsv@sakhniro.vniro.ru
Россия, Южно-Сахалинск

Список литературы

  1. Богатов В.В., Федоровский А.С. 2017. Основы речной гидрологии и гидробиологии. Владивосток, Дальнаука, 382 с. [Bogatov V.V., Fedorovsky A.S. 2017. Fundamentals of river hydrology and hydrobiology. Vladivostok, Dalnauka, 382 pp. (in Russian)].
  2. Богданова Е.А. 1963. Паразитофауна лососей рек Южного Сахалина. Изв. ГОСНИОРХ 54, 15–47. [Bogdanova E.A. 1963. Parasitic fauna of salmon from the rivers of Southern Sakhalin. Izv. GOSNIORKH 54, 15–47. (in Russian)].
  3. Быховская-Павловская И.Е. 1985. Паразиты рыб. Руководство по изучению. М., Наука, 121 с. [Bykhovskaya-Pavlovskaya I.E. 1985. Parasites of fish. Study guide. M., Nauka, 121 pp. (in Russian)].
  4. Вялова Г.П. 2003. Паразитозы кеты (O. keta) и горбуши (O. gorbuscha) Сахалина. Ю-Сахалинск, СахНИРО, 192 с. [Vyalova G.P. 2003. Parasitoses of the chum salmon (O. keta) and the pink salmon (O. gorbuscha) Sakhalin. Yu-Sakhalinsk, SakhNIRO, 192 pp. (in Russian)].
  5. Гриценко О.Ф. 2002. Проходные рыбы острова Сахалин (систематика, экология, промысел). М., ВНИРО, 247 с. [Gritsenko O.F. 2002. Passing fish of Sakhalin Island (systematics, ecology, fishery). M., VNIRO, 247 pp. (in Russian)].
  6. Гусев А.В. 1985. Monogenea. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Л., Наука, Т. 2. 17–347. [Gusev A.V. 1985. Monogenea. Determinant of parasites of freshwater fish fauna of the USSR. L., Nauka, v. 2. 17–347. (in Russian)].
  7. Дубинина М.Н. 1987. Cestoda. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Л., Наука, Т. 3. 11–70. [Dubinina M.N. 1987. Cestoda. Determinant of parasites of freshwater fish fauna of the USSR. L., Nauka, v. 3. 11–70. (in Russian)].
  8. Живоглядова Л.А., Лабай В.С., Даирова Д.С. 2017. Сообщества подёнок, веснянок и ручейников малых рек Южного Сахалина на примере притоков р. Лютога. Труды ВНИРО 166: 125–138. [Zhivoglyadova L.A., Labai V.S., Dairova D.S. 2017. Communities of mayflies, springflies and brooks of small rivers of Southern Sakhalin on the example of tributaries of the Lyutoga River. Proceedings of VNIRO 166: 125–138. (in Russian)].
  9. Живоглядова Л.А., Лабай В.С., Даирова Д.С., Мотылькова И.В., Никитин В.Д., Полтева А.В., Галанина Е.В. 2016. Структура донных сообществ малых рек южного Сахалина в летне-осенний период на примере притоков р. Лютога. Известия ТИНРО 184(1): 178–185. [Zhivoglyadova L.A., Labai V.S., Dairova D.S., Motylkova I.V., Nikitin V.D., Polteva A.V., Galanina E.V. 2016. The structure of bottom communities of small rivers of southern Sakhalin in the summer-autumn period on the example of tributaries of the Lyutoga River. Izvestiya TINRO 184(1): 178–185. (in Russian)]. https://doi.org/10.26428/1606-9919-2016-184-178-185
  10. Лабай В.С. 2014. Сезонная динамика макрозообентоса пойменного озера р. Лютога (южный Сахалин). Чтения памяти В. Я. Леванидова 6: 360–368. [Labai V.S. 2014. Seasonal dynamics of macrozoobenthos of the floodplain lake of the Lyutoga River (southern Sakhalin). Readings in memory of V.Ya. Levanidov 6: 360–368. (in Russian)].
  11. Леман В.Н., Есин Е.В. 2008. Иллюстрированный определитель лососеобразных рыб Камчатки. М., изд-во ВНИРО, 100 с. [Lehman V.N., Esin E.V. 2008. Illustrated determinant of salmon-like fish of Kamchatka. M., VNIRO publishing house, 100 pp. (in Russian)].
  12. Линдберг Г.У., Легеза М.И. 1965. Рыбы Японского моря и сопредельных частей Охотского и Желтого морей. ч. 2. М., Л., Наука, 391 с. [Lindberg G.U., Legeza M.I. 1965. Fish of the Sea of Japan and adjacent parts of the Okhotsk and Yellow Seas. Part 2. M., L., Nauka, 391 pр. (in Russian)].
  13. Линдберг Г.У., Красюкова З.В. 1987. Рыбы Японского моря и сопредельных частей Охотского и Желтого морей. М., Л., Наука, ч. 5, 526 с. [Lindberg G.U., Krasyukova Z.V. 1987. Fishes of the Sea of Japan and adjacent parts of the Okhotsk and Yellow Seas. M., L., Nauka, part 5, 526 pр. (in Russian)].
  14. Никитин В.Д., Метленков А.В., Прохоров А.П., Сафроненко В.А., Лукьянова Н.С., Галенко К.Г. 2013. Видовой состав и сезонное распределение рыб в реке Лютога (по данным 2011–2012 годов). Труды СахНИРО 14: 55–95. [Nikitin V.D., Metlenkov A.V., Prokhorov A.P., Safronenko V.A., Lukyanova N.S., Galenko K.G. 2013. Species composition and seasonal distribution of fish in the Lyutoga River (according to 2011-2012 data). Proceedings of SakhNIRO 14: 55–95. (in Russian)].
  15. Соколов С. Г. 2005. Обзор паразитов микижи Parasalmo mykiss (Osteichthyes, Salmonidae) полуострова Камчатка. Invertebrate Zoology 2 (1), 35–60. [Sokolov S. G. 2005. A review of parasites of the rainbow trout Parasalmo mykiss (Osteichthyes, Salmonidae) of the Kamchatka Peninsula. Invertebrate Zoology 2 (1), 35–60. (in Russian)].
  16. Соколов С.Г., Атрашкевич Г.И., Протасова Е.Н., Фролова С.Е., Шедько М.Б. 2014. Новые данные о паразитах рыб внутренних водоемов о. Сахалин. Вестник СВНЦ ДВО РАН 4: 85–94. [Sokolov S.G., Atrashkevich G.I., Protasova E.N., Frolova S.E., Shedko M.B. 2014. New data on fish parasites of inland reservoirs of Sakhalin Island. Bulletin of the SVNTS FEB RAS 4: 85–94. (in Russian)].
  17. Соколов С.Г., Фролова С.Е. 2015. Материалы по паразитофауне рыб Сахалина. Вестник СВНЦ ДВО РАН 2: 90–97. [Sokolov S.G., Frolova S.E. 2015. Materials on the parasitic fauna of Sakhalin fish. Bulletin of the SVNTS FEB RAS 2: 90–97. (in Russian)].
  18. Соколов С.Г., Шедько М.Б., Протасова Е.Н., Фролов Е.В. 2012. Паразиты рыб внутренних водоемов острова Сахалин Растительный и животный мир островов северо-западной части Тихого океана. Владивосток, Дальнаука, 179–216. [Sokolov S.G., Shedko M.B., Protasova E.N., Frolov E.V. 2012. Parasites of fish in the inland waters of Sakhalin Island Flora and fauna of the islands of the northwestern Pacific Ocean. Vladivostok, Dalnauka, 179–216. (in Russian)].
  19. Amaoka K., Nakaya K., Yabe M. 1995. The Fishes of Northern Japan. Kitanihon Kaiyo Center, Sapporo, 391 pp.
  20. Blend C.K., Dronen N.O. & Armstrong H.W. 2019 Occurrence of Podocotyle Dujardin, 1845 (Opecoelidae, Podocotylinae) in three species of deep-sea macrourids from the Gulf of Mexico and Caribbean Sea with an updated key to species and host-parasite checklist. Zootaxa 4638 (4): 507–533.
  21. Ji S.J., Joo J.W., Kim S.H., Ahn D.H., Kim M.S., Lee J.H., Yang H.M., Lee G.H., Nam E.J., Park T.S., Jöst A.B., Pham H.M., Park J., Park J.H., Keum Y., Karanovic I., Karanovic T. Park J.K., Jung C.L., Min G.S. 2023. Unrecorded species of Korean invertebrates discovered through the project of ‘Discovery of Korean Indigenous Species’ II. Journal of Species Research 12 (1): 68–89.
  22. Sokolov S., Shchenkov S., Frolov E., Denisova S., Gordeev I. 2023. Molecular and morphological screening of Podocotyle spp. (Trematoda: Opecoelidae) sheds light on their diversity in Northwest Pacific and Eastern European Arctic, Journal of Helminthology 97(78): 1–11. https://doi.org/10.1017/S0022149X23000603

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рисунок 1. Карта-схема участков сбора паразитологического материала: ритраль-эпиритраль (станция № 1), мезоритраль (станция № 2), эстуарная зона (станция № 3), пойменное озеро (станция № 4)

Скачать (357KB)

© Российская академия наук, 2024

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».