Анализ методом минигенов влияния на сплайсинг нового варианта c.1545T>G в гене SLC26A4, ассоциированного с потерей слуха
- Авторы: Панина Е.А.1,2, Данильченко В.Ю.1,2, Зыцарь М.В.1,2, Орищенко К.Е.1,2, Посух О.Л.1,2
-
Учреждения:
- Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук
- Новосибирский национальный исследовательский государственный университет
- Выпуск: Том 61, № 5 (2025)
- Страницы: 103-109
- Раздел: КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ
- URL: https://ogarev-online.ru/0016-6758/article/view/296533
- DOI: https://doi.org/10.31857/S0016675825050101
- EDN: https://elibrary.ru/tlkljo
- ID: 296533
Цитировать
Аннотация
Патогенные варианты в гене SLC26A4 (OMIM #605646, 21 экзон), кодирующем трансмембранный белок пендрин, являются одной из наиболее значимых генетических причин потери слуха. Известно, что около 25% всех известных патогенных SLC26A4-вариантов, локализованных как в интронных, так и экзонных областях (вблизи экзон-интронных границ) гена, приводят к нарушению сплайсинга. При детальном анализе гена SLC26A4 у тувинских пациентов с потерей слуха (Республика Тыва, Южная Сибирь) был выявлен специфический спектр вариаций, включающий как уже известные патогенные варианты, так и новые варианты с пока неясным клиническим значением. Один из новых вариантов, c.1545T>G, локализован в потенциально «чувствительной» для сплайсинга позиции (1-ый нуклеотид в экзоне 14). Сегрегация этого варианта с потерей слуха, выявленная при анализе родословных пациентов, и значимое превышение его частоты в выборке пациентов по сравнению с контрольной выборкой свидетельствуют в пользу его патогенной значимости. Целью данной работы является анализ эффекта нового варианта c.1545T>G гена SLC26A4 на процесс сплайсинга с использованием генетических конструкций – минигенов. Была создана система минигенов, включающих анализируемый вариант c.1545T>G и вариант дикого типа. Исследование проведено на клеточной линии HEK293T и повторено на клетках HeLa и SW480. При сравнительном анализе паттернов сплайсинга в минигенах с вариантом c.1545T>G и дикого типа различий не было выявлено. Таким образом, вариант c.1545T>G гена SLC26A4 не приводит к нарушению сплайсинга, а его патогенный эффект может быть связан с заменой фенилаланина (Phe) на лейцин (Leu) в 515-ой аминокислотной позиции (p.Phe515Leu) белка пендрина.
Ключевые слова
Полный текст

Об авторах
Е. А. Панина
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук; Новосибирский национальный исследовательский государственный университет
Email: posukh@bionet.nsc.ru
Россия, Новосибирск, 630090; Новосибирск, 630090
В. Ю. Данильченко
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук; Новосибирский национальный исследовательский государственный университет
Email: posukh@bionet.nsc.ru
Россия, Новосибирск, 630090; Новосибирск, 630090
М. В. Зыцарь
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук; Новосибирский национальный исследовательский государственный университет
Email: posukh@bionet.nsc.ru
Россия, Новосибирск, 630090; Новосибирск, 630090
К. Е. Орищенко
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук; Новосибирский национальный исследовательский государственный университет
Email: posukh@bionet.nsc.ru
Россия, Новосибирск, 630090; Новосибирск, 630090
О. Л. Посух
Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук; Новосибирский национальный исследовательский государственный университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: posukh@bionet.nsc.ru
Россия, Новосибирск, 630090; Новосибирск, 630090
Список литературы
- Baralle D., Baralle M. Splicing in action: Assessing disease causing sequence changes // J. Med. Genet. 2005. V. 42. № 10. P. 737–748. https://doi.org/10.1136/jmg.2004.029538
- López-Bigas N., Audit B., Ouzounis C., Parra G. et al. Are splicing mutations the most frequent cause of hereditary disease? // FEBS Lett. 2005. V. 579. № 9. P. 1900–1903. https://doi.org/10.1016/j.febslet.2005.02.047
- Wang G.S., Cooper T.A. Splicing in disease: disruption of the splicing code and the decoding machinery // Nat. Rev. Genet. 2007. V. 8. № 10. P. 749–761. https://doi.org/10.1038/nrg2164
- Cummings B.B., Marshall J.L., Tukiainen T. et al. Improving genetic diagnosis in Mendelian disease with transcriptome sequencing // Sci. Transl. Med. 2017. V. 9. № 386. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.aal5209
- Abramowicz A., Gos M. Splicing mutations in human genetic disorders: Examples, detection, and confirmation // J. Appl. Genet. 2018. V. 59. № 3. P. 253–268. https://doi.org/10.1007/s13353-018-0444-7
- Wai H., Douglas A.G.L., Baralle D. RNA splicing analysis in genomic medicine // Int. J. Biochem. Cell Biol. 2019. V. 108. P. 61–71. https://doi.org/10.1016/j.biocel.2018.12.009
- Riolo G., Cantara S., Ricci C. What's wrong in a jump? Prediction and validation of splice site variants // Methods Protoc. 2021. V. 4. № 3. https://doi.org/10.3390/mps4030062
- Cartegni L., Chew S.L., Krainer A.R. Listening to silence and understanding nonsense: Exonic mutations that affect splicing // Nat. Rev. Genet. 2002. V. 3. № 4. P. 285–298. https://doi.org/10.1038/nrg775
- Grodecká L., Lockerová P., Ravčuková B. et al. Exon first nucleotide mutations in splicing: Evaluation of in silico prediction tools // PLoS One. 2014. V. 9. № 2. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0089570
- Perdomo-Ramirez A., de Armas-Ortiz M., Ramos-Trujillo E. et al. Exonic CLDN16 mutations associated with familial hypomagnesemia with hypercalciuria and nephrocalcinosis can induce deleterious mRNA alterations // BMC Med. Genet. 2019. V. 20. № 1. P. 6. https://doi.org/10.1186/s12881-018-0713-7
- Albader N., Zou M., BinEssa H.A. et al. Insights of noncanonical splice-site variants on RNA splicing in patients with congenital hypothyroidism // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2022. V. 10. № 3. P. e1263–e1276.https://doi.org/10.1210/clinem/dgab737
- Shi X., Wang H., Zhang R. et al. Minigene splicing assays reveal new insights into exonic variants of the SLC12A3 gene in Gitelman syndrome // Mol. Genet. Genomic Med. 2023. V. 11. № 4. https://doi.org/10.1002/mgg3.2128
- Richards S., Aziz N., Bale S. et al. Standards and guidelines for the interpretation of sequence variants: A joint consensus recommendation of the American College of Medical Genetics and Genomics and the Association for Molecular Pathology // Genet. Med. 2015. V. 17. № 5. P. 405–424. https://doi.org/10.1038/gim.2015.30
- Cooper T.A. Use of minigene systems to dissect alternative splicing elements // Methods. 2005. V. 37. № 4. P. 331–340. https://doi.org/10.1016/j.ymeth.2005.07.015
- Park H.J., Lee S.J., Jin H.S. et al. Genetic basis of hearing loss associated with enlarged vestibular aqueducts in Koreans // Clin. Genet. 2005. V. 67. № 2. P. 160–165. https://doi.org/10.1111/j.1399-0004.2004.00386.x
- Kim Y., Kim H.R., Kim J. et al. A novel synonymous mutation causing complete skipping of exon 16 in the SLC26A4 gene in a Korean family with hearing loss // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2013. V. 430. № 3. P. 1147–1150. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2012.12.022
- Lee B., Kim Y.R., Kim S.J. et al. Modified U1 snRNA and antisense oligonucleotides rescue splice mutations in SLC26A4 that cause hereditary hearing loss // Hum. Mutat. 2019. V. 40. № 8. P. 1172–1180. https://doi.org/10.1002/humu.23774
- Wasano K., Takahashi S., Rosenberg S.K. et al. Systematic quantification of the anion transport function of pendrin (SLC26A4) and its disease-associated variants // Hum. Mutat. 2020. V. 41. № 1. P. 316–331. https://doi.org/10.1002/humu.23930
- Zhao Y., Long Y., Shi T. et al. Validating the splicing effect of rare variants in the SLC26A4 gene using minigene assay // BMC Med. Genomics. 2024. V. 17. № 1. P. 233. https://doi.org/10.1186/s12920-024-02007-1
- Danilchenko V.Y., Zytsar M.V., Maslova E.A. et al. Different rates of the SLC26A4-related hearing loss in two indigenous peoples of Southern Siberia (Russia) // Diagnostics (Basel). 2021. V. 11. № 12. https://doi.org/10.3390/diagnostics11122378
- Weisschuh N., Marino V., Schäferhoff K. et al. Mutations at a split codon in the GTPase-encoding domain of OPA1 cause dominant optic atrophy through different molecular mechanisms // Hum. Mol. Genet. 2022. V. 31. № 5. P. 761–774. https://doi.org/10.1093/hmg/ddab286
- Fu Y., Masuda A., Ito M. et al. AG-dependent 3'-splice sites are predisposed to aberrant splicing due to a mutation at the first nucleotide of an exon // Nucl. Ac. Res. 2011. V. 39. № 5. P. 4396–4404. https://doi.org/10.1093/nar/gkr026
- Kováčová T., Souček P., Hujová P. et al. Splicing Enhancers at intron–exon borders participate in acceptor splice sites recognition // Int. J. Mol. Sci. 2020. V. 21. № 18. https://doi.org/10.3390/ijms21186553
- Lastella P., Surdo N.C., Resta N. et al. In silico and in vivo splicing analysis of MLH1 and MSH2 missense mutations shows exon- and tissue-specific effects // BMC Genomics. 2006. V. 7. https://doi.org/10.1186/1471-2164-7-243
- Yoon J.S., Park H.J., Yoo S.Y. et al. Heterogeneity in the processing defect of SLC26A4 mutants // J. Med. Genet. 2008. V. 45. № 7. P. 411–419. https://doi.org/10.1136/jmg.2007.054635
- Roesch S., Bernardinelli E., Nofziger C. et al. Functional Testing of SLC26A4 variants-clinical and molecular analysis of a cohort with enlarged vestibular aqueduct from Austria // Int. J. Mol. Sci. 2018. V. 19. № 1. https://doi.org/10.3390/ijms19010209
Дополнительные файлы
