Сравнение теста амплификации нуклеиновых кислот на основе картриджей с тонкоигольной аспирационной цитологией при подозрении на туберкулезный лимфаденит (опыт Индии)

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Введение. Диагностика туберкулезного лимфаденита является сложной задачей, поскольку существуют различные клинические проявления и отсутствует единый «золотой стандарт» исследования. Тест амплификации нуклеиновых кислот на основе картриджей (англ.: cartridge-based nucleic acid amplification test, CBNAAT) — это быстрый молекулярный диагностический анализ для одновременного подтверждения туберкулеза и определения резистентности к рифампицину.

Цель. Оценить эффективность теста CBNAAT для выявления M. tuberculosis в образцах лимфатических узлов по сравнению с тонкоигольной аспирационной цитологией (англ.: fine needle aspiration cytology, FNAC).

Материалы и методы. Исследование выполнено в сельской больнице третичного звена в Центральной Индии. Было включено 180 пациентов с клиническим подозрением на туберкулезный лимфаденит. Соотношение мужчин и женщин составило 1:1,3; средний возраст — 33,3 года, наибольшее число случаев было зафиксировано в возрастной группе 21–40 лет. Наиболее частыми жалобами пациентов были повышение температуры тела (29,4%), с последующей потерей аппетита (9,5%), снижение веса (9,5%) и кашель (6,6%). Однако, большинство пациентов обратились в больницу только по поводу лимфаденопатии (44,4%). Наиболее часто поражался передний шейный лимфатический узел (78,8%), за которым по частоте следуют подмышечные (10,5%), подчелюстные (2,8%), паховые (2,8%), надключичные (2,2%), субментальные (1,7%) и подключичные (1,1%) лимфатические узлы. У всех пациентов выполнено как FNAC, так и на CBNAAT. Результаты на M. tuberculosis представлены как положительные или отрицательные, поскольку CBNAAT дает полуколичественную оценку концентрации бацилл. Результаты о резистентности к рифампицину были представлены как «выявлена» или «не выявлена».

Результаты. Цитологическое исследование аспиратов из лимфатических узлов показало, что в большинстве случаев это были случаи туберкулезного лимфаденита. Цитоморфологический анализ случаев туберкулезного лимфаденита выявил преобладающий тип 6 (туберкулезный абсцесс). Тестирование CBNAAT выявило 26 случаев M. tuberculosis и три случая резистентности к рифампицину. Специфичность (92,92%) комбинации методов FNAC и CBNAAT значительно выше по сравнению с использованием только метода CBNAAT при низкой чувствительности комбинированного применения методов (26,86%).

Заключение. CBNAAT наряду с FNAC является ценным дополнением в исследованиях первой линии при туберкулезном лимфадените для своевременного подтверждения диагноза.

Об авторах

Sneha Ann Oommen

Mahatma Gandhi Institute of Medical Science

Email: snehaannoommen@gmail.com
ORCID iD: 0009-0007-9472-4059
Индия, Sevagram

Bharat Umakant Patil

Mahatma Gandhi Institute of Medical Science

Автор, ответственный за переписку.
Email: bharatpatil@mgims.ac.in
ORCID iD: 0000-0002-3364-4967

MD, Associate Professor

Индия, Sevagram

Pravinkumar Ghongade

Mahatma Gandhi Institute of Medical Science

Email: pravinghongade@mgims.ac.in
ORCID iD: 0000-0003-2219-3256

MD, Assistant Professor

Индия, Sevagram

Nitin Gangane

Jawaharlal Nehru Medical College

Email: nitingangane@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-0190-4215

MD, Professor

Индия, Belagavi

Список литературы

  1. Global tuberculosis report 2021. Geneva: WHO; 2021.
  2. National Strategic Plan for Tuberculosis Elimination 2017–2025. March 2017 [Internet]. Доступно по: https://tbfacts.org/wp-content/uploads/ 2018/01/NSP-Draft-2017-2025.pdf. Ссылка активна на: 23.03.2023.
  3. Takhar R.P. NAAT: A New Ray of Hope in the Early Diagnosis of EPTB // Emerg. Med. (Los Angel.). 2016. Vol. 6, No. 4. P. 1000328. doi: 10.4172/2165-7548.1000328
  4. Ligthelm L.J., Nicol M.P., Hoek K.G.P., et al. Xpert MTB/RIF for rapid diagnosis of tuberculous lymphadenitis from fine-needle-aspiration biopsy specimens // J. Clin. Microbiol. 2011. Vol. 49, No. 11. P. 3967–3970. doi: 10.1128/jcm.01310-11
  5. Hillemann D., Rüsch–Gerdes S., Boehme C., et al. Rapid molecular detection of extra-pulmonary tuberculosis by the automated gene Xpert MTB/RIF system // J. Clin. Microbiol. 2011. Vol. 49, No. 4. P. 1202–1205. doi: 10.1128/jcm.02268-10
  6. Gupta V., Bhake A. Assessment of Clinically Suspected Tubercular Lymphadenopathy by Real-Time PCR Compared to Non-Molecular Methods on Lymph Node // Acta Cytol. 2018. Vol. 62, No. 1. P. 4–11. doi: 10.1159/000480064
  7. Goyal V.K., Jenaw R.K. Diagnostic Yield of Cartridge-Based Nucleic Acid Amplification Test (CBNAAT) In Lymph Node Tuberculosis at Institute of Respiratory Disease, SMS Medical College, Jaipur // IOSR J. Dent. Med. Sci. 2019. Vol. 18. P. 63–67.
  8. INDEX-TB GUIDELINES. Guidelines on extra-pulmonary tuberculosis for India. World Health Organisation; 2016.
  9. Thakur B., Mehrotra R., Nigam J.S. Correlation of Various Techniques in Diagnosis of Tuberculous Lymphadenitis on Fine Needle Aspiration Cytology // Pathology Research International. 2013. Vol. 2013. P. 824620. doi: 10.1155/2013/824620
  10. Mohan C.N., Annam V., Gangane N. Efficacy of Fluorescent Method over Conventional ZN Method in Detection of Acid Fast Bacilli among Various Cytomorphological Patterns of Tubercular Lymphadenitis // Int. J. Sci. Res. 2015. Vol. 4, No. 3. P. 222–225.
  11. Mishra B., Hallur V., Behera B., et al. Evaluation of loop mediated isothermal amplification (LAMP) assay in the diagnosis of tubercular lymphadenitis: A pilot study // Indian J. Tuberc. 2018. Vol. 65, No. 1. P. 76–79. doi: 10.1016/j.ijtb.2017.08.026
  12. Gupta A., Kunder S., Hazra D., et al. Tubercular lymphadenitis in the 21st century: A 5-Year single-center retrospective study from South India // Int. J. Mycobacteriology. 2021. Vol. 10, No. 2. P. 162–165. doi: 10.4103/ijmy.ijmy_66_21
  13. Srinivas C.V., Nair S. Clinicopathological Profile of Cervical Tubercular Lymphadenitis with Special Reference to Fine Needle Aspiration Cytology // Indian J. Otolaryngol. Head Neck Surg. 2019. Vol. 71, Suppl. 1. P. 205–211. doi: 10.1007/s12070-017-1235-x
  14. Gangane N., Anshu, Singh R. Role of modified bleach method in staining of acid-fast bacilli in lymph node aspirates // Acta Cytol. 2008. Vol. 52, No. 3. P. 325–328. doi: 10.1159/000325515
  15. Yew W.W., Lee J. Pathogenesis of cervical tuberculous lymphadenitis: pathways to anatomic localization // Tuber. Lung Dis. 1995. Vol. 76, No. 3. P. 275–276. doi: 10.1016/s0962-8479(05)80019-x
  16. Dasgupta S., Chakrabarti S., Sarkar S. Shifting trend of tubercular lymphadenitis over a decade — A study from the eastern region of India // Biomed. J. 2017. Vol. 40, No. 5. P. 284–289. doi: 10.1016/j.bj.2017.08.001
  17. Jamsheed A., Gupta M., Gupta A., et al. Cytomorphological pattern analysis of tubercular lymphandenopathies // Indian J. Tuberc. 2020. Vol. 67, No. 4. P. 495–501. doi: 10.1016/j.ijtb.2020.07.001
  18. Raja R., Sreeramulu P.N., Dave P., et al. GeneXpert assay — A cutting-edge tool for rapid tissue diagnosis of tuberculous lymphadenitis // J. Clin. Tuberc. Other Mycobact. Dis. 2020. Vol. 21. P. 100204. doi: 10.1016/j.jctube.2020.100204
  19. Komanapalli S.K., Prasad U., Atla B., et al. Role of CB-NAAT in diagnosing extra pulmonary tuberculosis in correlation with FNA in a tertiary care center // Int. J. Res. Med. Sci. 2018. Vol. 6, No. 12. P. 4039–4045. doi: 10.18203/2320-6012.ijrms20184904
  20. Sharif N., Ahmed D., Mahmood R.T., et al. Comparison of different diagnostic modalities for isolation of Mycobacterium Tuberculosis among suspected tuberculous lymphadenitis patients // Braz. J. Biol. 2021. Vol. 83. P. 244311. doi: 10.1590/1519-6984.244311

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Цитоморфологическая картина: эпителиоидная гранулема с гигантскими клетками Лангханса и казеозным некрозом (Giemsa, ×10) (A); только многочисленные эпителиоидные клетки и гранулемы на реактивном фоне (Giemsa, ×10) (B); казеозный некроз с небольшим количеством эпителиоидных клеток (Giemsa, ×10) (C); казеозный некроз с небольшим количеством эпителиоидных клеток (Giemsa, ×40) (D); казеозный некроз с небольшим количеством лимфоцитов и гистиоцитов, без эпителиоидных клеток (Giemsa, ×10) (E); туберкулезный абсцесс с преобладанием нейтрофилов вместе с эпителиоидными клетками (Giemsa, ×10) (F)

Скачать (221KB)

© Эко-Вектор, 2024

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License.
 


Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).