Воспалительный ответ и его роль в антенатальной трансформации шейки матки

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Понимание процессов изменений цервикальных тканей перед родами является одним из наиболее значимых вопросов современного акушерства. В обзоре рассмотрены современные публикации отечественных и зарубежных авторов в области механизмов антенатальной трансформации шейки матки. Клеточные и гуморальные компоненты воспаления в тканях шейки матки представлены как наиболее значимые причины в генезе морфологических изменений цервикальных тканей. Определены направления дальнейших исследований в области данной научной проблемы.

Об авторах

Ольга Валентиновна Прохорова

ФГБОУ ВО «Уральский государственный медицинский университет» Минздрава России

Автор, ответственный за переписку.
Email: prokhorova-ov@yandex.ru
SPIN-код: 1772-8219

канд. мед. наук, доцент, доцент кафедры акушерства и гинекологии

Россия, Екатеринбург

Анна Александровна Олина

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт акушерства, гинекологии и репродуктологии им. Д.О. Отта»

Email: olina29@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9101-7569
SPIN-код: 4255-4325
Scopus Author ID: 56021173500

д-р мед. наук, профессор, первый заместитель директора

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Deckers J, Branco Madeira F, Hammad H. Innate immune cells in asthma. Trends Immunol. 2013;34(11):540-547. https://doi.org/10.1016/j.it.2013.08.004.
  2. Romero-Garcia S, Moreno-Altamirano MM, Prado-Garcia H, Sanchez-Garcia FJ. Lactate contribution to the tumor microenvironment: mechanisms, effects on immune cells and therapeutic relevance. Front Immunol. 2016;7:52. https://doi.org/10.3389/fimmu.2016.00052.
  3. Rana SV, Sharma S, Sinha SK, et al. Pro-inflammatory and anti-inflammatory cytokine response in diarrhoea-predominant irritable bowel syndrome patients. Trop Gastroenterol. 2012;33(4):251-256. https://doi.org/10.7869/tg.2012.66.
  4. Giamarellos-Bourboulis EJ, Raftogiannis M. The immune response to severe bacterial infections: consequences for therapy. Expert Rev Anti Infect Ther. 2012;10(3):369-380. https://doi.org/10.1586/eri.12.2.
  5. Alves DB, Tozetti IA, Gatto FA, et al. CD4 and CD8 T lymphocytes and NK cells in the stroma of the uterine cervix of women infected with human papillomavirus. Rev Soc Bras Med Trop. 2010;43(4):425-429. https://doi.org/10.1590/s0037-86822010000400018.
  6. Ma C, Zhang WY, Wang JD. Expressions of Th, DC, NK cells in cervical tissue and the relationship with immune functions. Zhonghua Yi Xue Za Zhi. 2009;89(23):1650-1653.
  7. Trifonova RT, Lieberman J, van Baarle D. Distribution of immune cells in the human cervix and implications for HIV transmission. Am J Reprod Immunol. 2014;71(3):252-264. https://doi.org/10.1111/aji.12198.
  8. Hume DA. The many alternative faces of macrophage activation. Front Immunol. 2015;6:370. https://doi.org/10.3389/fimmu.2015.00370.
  9. Gordon S, Taylor PR. Monocyte and macrophage heterogeneity. Nat Rev Immunol. 2005;5(12):953-964. https://doi.org/10.1038/nri1733.
  10. Wynn TA, Chawla A, Pollard JW. Macrophage biology in development, homeostasis and disease. Nature. 2013;496(7446):445-455. https://doi.org/10.1038/nature 12034.
  11. Davies LC, Jenkins SJ, Allen JE, Taylor PR. Tissue-resident macrophages. Nat Immunol. 2013;14(10):986-995. https://doi.org/10.1038/ni.2705.
  12. Gordon S, Martinez FO. Alternative activation of macrophages: mechanism and functions. Immunity. 2010;32(5):593-604. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2010.05.007.
  13. Сарбаева Н.Н., Пономарева Ю.В., Милякова М.Н. Макрофаги. Разнообразие фенотипов и функций. Взаимодействие с чужеродными материалами // Гены и клетки. – 2016. – T. 11. – № 1. – C. 9–17. [Sarbaeva NN, Ponomareva YuV, Milyakova MN. Macrophages: diversity of phenotypes and functions, interaction with foreign materials. Genes & cells. 2016;11(1):9-17. (In Russ.)]
  14. Payne KJ, Clyde LA, Weldon AJ, et al. Residency and activation of myeloid cells during remodeling of the prepartum murine cervix. Biol Reprod. 2012;87(5):106. https://doi.org/10.1095/biolreprod.112.101840.
  15. Агнаева А.О., Беспалова О.Н., Соколов Д.И., и др. Роль естественных киллеров (NK-клеток) в репродуктивных потерях // Журнал акушерства и женских болезней. – 2017. – Т. 66. – № 3. – С. 143–156. [Agnaeva AO, Bespalova ON, Sokolov DI, et al. Role of natural killer cells in reproductive failure. Journal Of Obstetrics and Women’s Diseases. 2017;66(3):143-156. (In Russ.)]. https://doi.org/10.17816/JOWD663143-156.
  16. Серебренникова С.Н., Семинский И.Ж., Семенов Н.В., Гузовская Е.В. Интерлейкин-1, интерлейкин-10 в регуляции воспалительного процесса // Сибирский медицинский журнал. – 2012. – Т. 115. – № 8. – С. 5–7. [Serebrennikova SN, Seminskiy IZh, Semenov NV, Guzovskaya EV. Interleukin-1, interleukin-10 in regulation of inflammatory process. Sibirskii meditsinskii zhurnal. 2012;115(8):5-7. (In Russ.)]
  17. Ильина А.Е., Станислав М.Л., Денисов Л.Н., Насонов Е.Л. Интерлейкин 1 как медиатор воспаления и терапевтическая мишень // Научно-практическая ревматология. – 2011. – № 5. – С. 62–71. [Il’ina AE, Stanislav ML, Denisov LN, Nasonov EL. Interleukin-1 as an inflammation mediator and a therapeutic target. Science-practical rheumatology. 2011;(5):62-71. (In Russ.)]
  18. Palomo J, Dietrich D, Martin P, et al. The interleukin (IL)-1 cytokine family – Balance between agonists and antagonists in inflammatory diseases. Cytokine. 2015;76(1):25-37. https://doi.org/10.1016/j.cyto.2015.06.017.
  19. Shaw DM, Merien F, Braakhuis A, Dulson D. T-cells and their cytokine production: The anti-inflammatory and immunosuppressive effects of strenuous exercise. Cytokine. 2018;104:136-142. https://doi.org/10.1016/j.cyto.2017.10.001.
  20. Нефедова Д.Д., Линде В.А., Левкович М.А. Иммунологические аспекты беременности // Медицинский вестник Юга России. – 2013. – № 4. – C. 16–21. [Nefedova DD, Linde VA, Levkovich MA. Immunological aspects of pregnancy (review). Meditsinskiy vestnik Yuga Rossii. 2013;(4):16-21. (In Russ.)]
  21. Winkler M, Kemp B, Fischer DC, et al. Expression of adhesion molecules in the lower uterine segment during term and preterm parturition. Microsc Res Tech. 2003;60(4):430-444. https://doi.org/10.1002/jemt.10281.
  22. Bashaw AA, Leggatt GR, Chandra J, et al. Modulation of antigen presenting cell functions during chronic HPV infection. Papillomavirus Res. 2017;4:58-65. https://doi.org/ 10.1016/j.pvr.2017.08.002.
  23. de Gruijl TD, Bontkes HJ, van den Muysenberg AJC, et al. Differences in cytokine mRNA profiles between premalignant and malignant lesions of the uterine cervix. Eur J Cancer. 1999;35(3):490-497. https://doi.org/10.1016/s0959-8049(98)00371-2.
  24. Bekhtereva IA, Dorosevich AE. Histophysiology of epithelial and connective tissue components of the vaginal portion of the uterine cervix. Morfologiia. 2009;136(5):90-96.
  25. Word RA, Li XH, Hnat M, Carrick K. Dynamics of cervical remodeling during pregnancy and parturition: mechanisms and current concepts. Semin Reprod Med. 2007;25(1):69-79. https://doi.org/10.1055/s-2006-956777.
  26. Dubicke A, Fransson E, Centini G, et al. Pro-inflammatory and anti-inflammatory cytokines in human preterm and term cervical ripening. J Reprod Immunol. 2010;84(2):176-185. https://doi.org/10.1016/j.jri.2009.12.004.
  27. Timmons BC, Fairhurst AM, Mahendroo MS. Temporal changes in myeloid cells in the cervix during pregnancy and parturition. J Immunol. 2009;182(5):2700-2707. https://doi.org/10.4049/jimmunol.0803138.
  28. Dubicke A, Ekman-Ordeberg G, Mazurek P, et al. Density of stromal cells and macrophages associated with collagen remodeling in the human cervix in preterm and term birth. Reprod Sci. 2016;23(5):595-603. https://doi.org/10.1177/ 1933719115616497.
  29. Cohen HB, Mosser DM. Extrinsic and intrinsic control of macrophage inflammatory responses. J Leukoc Biol. 2013;94(5):913-919. https://doi.org/10.1189/jlb.0413236.
  30. Yang Z, Kong B, Mosser DM, Zhang X. TLRs, macrophages, and NK cells: our understandings of their functions in uterus and ovary. Int Immunopharmacol. 2011;11(10):1442-1450. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2011.04.024.
  31. Dobyns AE, Goyal R, Carpenter LG, et al. Macrophage gene expression associated with remodeling of the prepartum rat cervix: microarray and pathway analyses. PLoS One. 2015;10(3):e0119782. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0119782.
  32. Sakamoto Y, Moran P, Bulmer JN, et al. Macrophages and not granulocytes are involved in cervical ripening. J Reprod Immunol. 2005;66(2):161-173. https://doi.org/10.1016/ j.jri.2005.04.005.
  33. Feltovich H, Carlson L. New techniques in evaluation of the cervix. Semin Perinatol. 2017;41(8):477-484. https://doi.org/10.1053/j.semperi.2017.08.006.
  34. Gomez-Lopez N, Laresgoiti-Servitje E. T regulatory cells: regulating both term and preterm labor? Immunol Cell Biol. 2012;90(10):919-920. https://doi.org/10.1038/icb.2012.48.
  35. Ivanisevic M, Segerer S, Rieger L, et al. Antigen-presenting cells in pregnant and non-pregnant human myometrium. Am J Reprod Immunol. 2010;64(3):188-196. https://doi.org/10.1111/j.1600-0897.2010.00858.x.
  36. Shynlova O, Nedd-Roderique T, Li Y, et al. Myometrial immune cells contribute to term parturition, preterm labour and post-partum involution in mice. J Cell Mol Med. 2013;17(1):90-102. https://doi.org/10.1111/j.1582-4934.2012.01650.x.
  37. Osman I, Young A, Ledingham MA, et al. Leukocyte density and pro-inflammatory cytokine expression in human fetal membranes, decidua, cervix and myometrium before and during labour at term. Mol Hum Reprod. 2003;9(1):41-45. https://doi.org/10.1093/molehr/gag001.
  38. Osman I, Young A, Jordan F, et al. Leukocyte density and proinflammatory mediator expression in regional human fetal membranes and decidua before and during labor at term. J Soc Gynecol Investig. 2006;13(2):97-103. https://doi.org/10.1016/j.jsgi.2005.12.002.
  39. Hirsch E, Filipovich Y, Mahendroo M. Signaling via the type I IL-1 and TNF receptors is necessary for bacterially induced preterm labor in a murine model. Am J Obstet Gynecol. 2006;194(5):1334-1340. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2005.11.004.
  40. Gonzalez JM, Xu H, Chai J, et al. Preterm and term cervical ripening in CD1 Mice (Mus musculus): similar or divergent molecular mechanisms? Biol Reprod. 2009;81(6):1226-1232. https://doi.org/10.1095/biolreprod.108.075309.
  41. Timmons BC, Mahendroo MS. Timing of neutrophil activation and expression of proinflammatory markers do not support a role for neutrophils in cervical ripening in the mouse. Biol Reprod. 2006;74(2):236-245. https://doi.org/10.1095/biolreprod.105.044891.
  42. Vink J, Mourad M. The pathophysiology of human premature cervical remodeling resulting in spontaneous preterm birth: Where are we now? Semin Perinatol. 2017;41(7):427-437. https://doi.org/10.1053/j.semperi.2017.07.014.
  43. Mackler AM, Iezza G, Akin MR, et al. Macrophage trafficking in the uterus and cervix precedes parturition in the mouse. Biol Reprod. 1999;61(4):879-883. https://doi.org/10.1095/biolreprod61.4.879.
  44. Myers DA. The recruitment and activation of leukocytes into the immune cervix: further support that cervical remodeling involves an immune and inflammatory mechanism. Biol Reprod. 2012;87(5):107. https://doi.org/10.1095/biolreprod.112.105049.
  45. van Engelen E, de Groot MW, Breeveld-Dwarkasing VN, et al. Cervical ripening and parturition in cows are driven by a cascade of pro-inflammatory cytokines. Reprod Domest Anim. 2009;44(5):834-841. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2008.01096.x.
  46. Yellon SM, Mackler AM, Kirby MA. The role of leukocyte traffic and activation in parturition. J Soc Gynecol Investig. 2003;10(6):323-338. https://doi.org/10.1016/s1071-55760300116-3.
  47. Yellon SM, Ebner CA, Sugimoto Y. Parturition and recruitment of macrophages in cervix of mice lacking the prostaglandin F receptor. Biol Reprod. 2008;78(3):438-444. https://doi.org/10.1095/biolreprod.107.063404.
  48. Arnold L, Henry A, Poron F, et al. Inflammatory monocytes recruited after skeletal muscle injury switch into antiinflammatory macrophages to support myogenesis. J Exp Med. 2007;204(5):1057-1069. https://doi.org/10.1084/jem.20070075.
  49. Lavin Y, Winter D, Blecher-Gonen R, et al. Tissue-resident macrophage enhancer landscapes are shaped by the local microenvironment. Cell. 2014;159(6):1312-1326. https://doi.org/10.1016/j.cell.2014.11.018.
  50. Menzies FM, Shepherd MC, Nibbs RJ, Nelson SM. The role of mast cells and their mediators in reproduction, pregnancy and labour. Hum Reprod Update. 2011;17(3):383-396. https://doi.org/10.1093/humupd/dmq053.
  51. Sennstrom MB, Ekman G, Westergren-Thorsson G, et al. Human cervical ripening, an inflammatory process mediated by cytokines. Mol Hum Reprod. 2000;6(4):375-381. https://doi.org/10.1093/molehr/6.4.375.
  52. Bytautiene E, Vedernikov YP, Saade GR, et al. Degranulation of uterine mast cell modifies contractility of isolated myometrium from pregnant women. Am J Obstet Gynecol. 2004;191(5):1705-1710. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2004.04.008.
  53. Mitani R, Maeda K, Fukui R, et al. Production of human mast cell chymase in human myometrium and placenta in cases of normal pregnancy and preeclampsia. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2002;101(2):155-160. https://doi.org/10.1016/s0301-2115(01)00546-2.
  54. Gomez-Lopez N, StLouis D, Lehr MA, et al. Immune cells in term and preterm labor. Cell Mol Immunol. 2014;11(6):571-581. https://doi.org/10.1038/cmi.2014.46.
  55. Uldbjerg N, Ulmsten U. 3 The physiology of cervical ripening and cervical dilatation and the effect of abortifacient drugs. Bailier Clin Obstet Gynaecol. 1990;4(2):263-282. https://doi.org/10.1016/s0950-3552(05)80226-3.
  56. Hashizume M, Hayakawa N, Suzuki M, Mihara M. IL-6/sIL-6R trans-signalling, but not TNF-alpha induced angiogenesis in a HUVEC and synovial cell co-culture system. Rheumatol Int. 2009;29(12):1449-1454. https://doi.org/10.1007/s00296-009-0885-8.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Прохорова О.В., Олина А.А., 2020

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Согласие на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика»

1. Я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных»), осуществляя использование сайта https://journals.rcsi.science/ (далее – «Сайт»), подтверждая свою полную дееспособность даю согласие на обработку персональных данных с использованием средств автоматизации Оператору - федеральному государственному бюджетному учреждению «Российский центр научной информации» (РЦНИ), далее – «Оператор», расположенному по адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А, со следующими условиями.

2. Категории обрабатываемых данных: файлы «cookies» (куки-файлы). Файлы «cookie» – это небольшой текстовый файл, который веб-сервер может хранить в браузере Пользователя. Данные файлы веб-сервер загружает на устройство Пользователя при посещении им Сайта. При каждом следующем посещении Пользователем Сайта «cookie» файлы отправляются на Сайт Оператора. Данные файлы позволяют Сайту распознавать устройство Пользователя. Содержимое такого файла может как относиться, так и не относиться к персональным данным, в зависимости от того, содержит ли такой файл персональные данные или содержит обезличенные технические данные.

3. Цель обработки персональных данных: анализ пользовательской активности с помощью сервиса «Яндекс.Метрика».

4. Категории субъектов персональных данных: все Пользователи Сайта, которые дали согласие на обработку файлов «cookie».

5. Способы обработки: сбор, запись, систематизация, накопление, хранение, уточнение (обновление, изменение), извлечение, использование, передача (доступ, предоставление), блокирование, удаление, уничтожение персональных данных.

6. Срок обработки и хранения: до получения от Субъекта персональных данных требования о прекращении обработки/отзыва согласия.

7. Способ отзыва: заявление об отзыве в письменном виде путём его направления на адрес электронной почты Оператора: info@rcsi.science или путем письменного обращения по юридическому адресу: 119991, г. Москва, Ленинский просп., д.32А

8. Субъект персональных данных вправе запретить своему оборудованию прием этих данных или ограничить прием этих данных. При отказе от получения таких данных или при ограничении приема данных некоторые функции Сайта могут работать некорректно. Субъект персональных данных обязуется сам настроить свое оборудование таким способом, чтобы оно обеспечивало адекватный его желаниям режим работы и уровень защиты данных файлов «cookie», Оператор не предоставляет технологических и правовых консультаций на темы подобного характера.

9. Порядок уничтожения персональных данных при достижении цели их обработки или при наступлении иных законных оснований определяется Оператором в соответствии с законодательством Российской Федерации.

10. Я согласен/согласна квалифицировать в качестве своей простой электронной подписи под настоящим Согласием и под Политикой обработки персональных данных выполнение мною следующего действия на сайте: https://journals.rcsi.science/ нажатие мною на интерфейсе с текстом: «Сайт использует сервис «Яндекс.Метрика» (который использует файлы «cookie») на элемент с текстом «Принять и продолжить».