Разработка методов анализа однонуклеотидных полиморфизмов Plasmodium falciparum в генах PfCRT (А > C), PfMDR1 (A > T) и PfDHFR (G > A), определяющих резистентность к хинолиновой, диамино-пиримидиновой и сульфаниламидной группам противомалярийных препаратов
- Авторы: Арюков А.Р.1, Соловьев А.И.1, Капацина В.А.2, Крутикова А.А.1, Романенко В.А.1, Коваленко А.Н.1, Колесник А.А.1, Зинин А.С.1
-
Учреждения:
- Военно-медицинская академия
- Клиническая инфекционная больница им. С.П. Боткина
- Выпуск: Том 43, № 1 (2024)
- Страницы: 13-22
- Раздел: Оригинальные исследования
- URL: https://ogarev-online.ru/RMMArep/article/view/256997
- DOI: https://doi.org/10.17816/rmmar625584
- ID: 256997
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Актуальность. Единичные нуклеотидные полиморфизмы K76T (A403627C), S1034C (A960989T) и S108N (G748410A) ассоциированы с лекарственной резистентностью возбудителей тропической малярии к мефлохину, хлорохину, пириметамину и их производным. Эти мутации связаны с изменением структуры генов PfCRT и PfMDR1 Plasmodium falciparum.
Цель исследования. Разработка способов идентификации единичных нуклеотидных полиморфизмов, пригодных для ранней диагностики лекарственно устойчивых форм тропической малярии.
Результаты. Для выявления полиморфизма K76T (A403627C) разработан метод на основе анализа длин рестрикционых фрагментов с использованием эндонуклеазы ApoI. При этом критерием устойчивости паразитов к хлорохину служило появление на электорфореграмме одного бэнда 145 bp. Его разделение на два фрагмента (98 и 47 bp) свидетельствовало о неизмененном генотипе возбудителей и сохранении их лекарственной чувствительности. При разработке системы для обнаружения S108N (G748410A) использовалась эндонуклеаза Bse1I. В этом случае признаком мутантного генотипа возбудителей служило появление на электофореграмме единичного бэнда 507 bp. О неизмененном генотипе и сохранении лекарственной чувствительности плазмодиев свидетельствовало появление двух фрагментов (323 и 184 bp). Для идентификации полиморфизма A > T в гене PfMDR1 в позиции 960989 предложено использовать технологию полимеразной цепной реакции с двумя аллель-специфичными праймерами, один из которых служит для выявления аллеля дикого типа, другой — для мутантного генотипа. Амплифицируемый фрагмент гена PfMDR1 содержит последовательности 1034-го кодона. В зависимости от генотипа Plasmodium falciparum. будут получены фрагменты 261 bp c одним из аллель-специфичных праймеров.
Заключение. Исходя из анализа полученных данных, были разработаны критерии для оценки лекарственной устойчивости P. falciparum. Гаплотипы K76T (бэнд 145 bp), S1034C (бэнд 262 bp с прямым праймером S1034C-F2) служат признаками относительной устойчивости возбудителей к хлорохину, мефлохину и их производным. Положительные результаты обследования на гаплотип S108N (бэнды 323 и 184 bp) следует рассматривать как признак снижения чувствительности к пириметамину. Разработанные методики могут применяться в клинической практике, а также в целях эпидемиолгического мониторинга.
Ключевые слова
Полный текст
Открыть статью на сайте журналаОб авторах
Артем Русланович Арюков
Военно-медицинская академия
Автор, ответственный за переписку.
Email: arukov.artem@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-8774-5467
аспирант
Россия, Санкт-ПетербургАлексей Иванович Соловьев
Военно-медицинская академия
Email: solopiter@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-3731-1756
докт. мед. наук, профессор
Россия, Санкт-ПетербургВладимир Александрович Капацина
Клиническая инфекционная больница им. С.П. Боткина
Email: ingashi@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-8959-0873
заведующий отделением
Россия, Санкт-ПетербургАнна Алексеевна Крутикова
Военно-медицинская академия
Email: anntim2575@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2561-145X
канд. биол. наук
Россия, Санкт-ПетербургВладимир Александрович Романенко
Военно-медицинская академия
Email: izvestiavmeda@mail.ru
Россия, Санкт-Петербург
Александр Николаевич Коваленко
Военно-медицинская академия
Email: ank561@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-2976-8051
докт. мед. наук, доцент
Россия, Санкт-ПетербургАким Алексеевич Колесник
Военно-медицинская академия
Email: izvestiavmeda@mail.ru
ORCID iD: 0009-0001-5809-9694
Россия, Санкт-Петербург
Артём Сергеевич Зинин
Военно-медицинская академия
Email: izvestiavmeda@mail.ru
ORCID iD: 0009-0000-4308-7554
Россия, Санкт-Петербург
Список литературы
- Mulenga M.C., Sitali L., Ciubotariu I.I., et al. Decreased prevalence of the Plasmodium falciparum PfCRT K76T and Pfmdr1 and N86Y mutations post-chloroquine treatment withdrawal in Katete District, Eastern Zambia // Malar. J. 2021. Vol. 20, N. 1. P. 329. doi: 10.1186/s12936-021-03859-z
- Hassen J., Alemayehu G.S., Dinka H., Golassa L. High prevalence of PfCRT 76T and Pfmdr1 N86 genotypes in malaria infected patients attending health facilities in East Shewa zone, Oromia Regional State, Ethiopia // Malar. J. 2022. Vol. 21, N. 1. P. 286. doi: 10.1186/s12936-022-04304-5
- Njiro B.J., Mutagonda R.F., Chamani A.T., et al. Molecular surveillance of chloroquine-resistant Plasmodium falciparum in sub-Saharan African countries after withdrawal of chloroquine for treatment of uncomplicated malaria: A systematic review // J. Infect. Public Health. 2022. Vol. 15, N. 5. P. 550–557. doi: 10.1016/j.jiph.2022.03.015
- Yobi D.M., Kayiba N.K., Mvumbi D.M., et al. Assessment of Plasmodium falciparum anti-malarial drug resistance markers in pfk13-propeller, PfCRT and Pfmdr1 genes in isolates from treatment failure patients in Democratic Republic of Congo, 2018–2019 // Malar. J. 2021. Vol. 20, N. 1. P. 144. doi: 10.1186/s12936-021-03636-y
- Shrivastava S.K., Gupta R.K., Mahanta J., Dubey M.L. Correlation of molecular markers, Pfmdr1-N86Y and PfCRT-K76T, with in vitro chloroquine resistant Plasmodium falciparum, isolated in the malaria endemic states of Assam and Arunachal Pradesh, Northeast India // PLoS One. 2014. Vol. 9, N. 8. P. e103848. doi: 10.1371/journal.pone.0103848
- Wang X., Zhang X., Chen H., et al. Molecular determinants of sulfadoxine-pyrimethamine resistance in Plasmodium falciparum isolates from Central Africa between 2016 and 2021: wide geographic spread of highly mutated Pfdhfr and Pfdhps alleles // Microbiol. Spectr. 2022. Vol. 10, N. 5. P. e0200522. doi: 10.1128/spectrum.02005-22
- Amir A., Cheong F.W., De Silva J.R., Lau Y.L. Diagnostic tools in childhood malaria // Parasit. Vectors. 2018. Vol. 11, N. 1. P. 53. doi: 10.1186/s13071-018-2617-y
- Jiang T., Huang Y., Cheng W., et al. Multiple single-nucleotide polymorphism detection for antimalarial pyrimethamine resistance via allele-specific PCR coupled with gold nanoparticle-based lateral flow biosensor // Antimicrob. Agents Chemother. 2021. Vol. 65, N. 3. P. e01063–20. doi: 10.1128/aac.01063-20
- Sharma D., Lather M., Dykes C.L., et al. Disagreement in genotyping results of drug resistance alleles of the Plasmodium falciparum dihydrofolate reductase (Pfdhfr) gene by allele-specific PCR (ASPCR) assays and Sanger sequencing // Parasitol. Res. 2016. Vol. 115, N. 1. P. 323–328. doi: 10.1007/s00436-015-4750-2
- Jiang T., Cheng W., Yao Y., et al. Molecular surveillance of anti-malarial resistance Pfdhfr and Pfdhps polymorphisms in African and Southeast Asia Plasmodium falciparum imported parasites to Wuhan, China // Malar. J. 2020. Vol. 19, N. 1. P. 434. doi: 10.1186/s12936-020-03509-w
- Dalimi A., Mosawi S.H., Fotouhi-Ardakani R., Dalirghafari A. Evaluation of Drug Resistant Genotypes to Fansidar and Chloroquine by Studying Mutation in Pfdhfr and Pfmdr1 Genes in Plasmodium falciparum Isolates from Laghman Province, Afghanistan // Iran J. Parasitol. 2022. Vol. 17, N. 1. P. 18–27. doi: 10.18502/ijpa.v17i1.9012
- Cheng W., Song X., Zhu H., et al. A rapid and specific genotyping platform for Plasmodium falciparum chloroquine resistance via allele-specific PCR with a lateral flow assay // Microbiol. Spectr. 2022. Vol. 10, N. 2. P. e0271921. doi: 10.1128/spectrum.02719-21
- Sambrook J., Russell D.W. Purification of nucleic acids by extraction with phenol: chloroform // Cold Spring Harbor Protocols. 2006. Vol. 2006, N. 1. P. pdb. prot4455. doi: 10.1101/pdb.prot4455
- Lakshmanan V., Bray P.G., Verdier-Pinard D., et al. A critical role for PfCRT K76T in Plasmodium falciparum verapamil-reversible chloroquine resistance // EMBO J. 2005. Vol. 24, N. 13. P. 2294–2305. doi: 10.1038/sj.emboj.7600681
- Anderson T.J., Nair S., Qin H., et al. Are transporter genes other than the chloroquine resistance locus (PfCRT) and multidrug resistance gene (pfmdr) associated with antimalarial drug resistance? // Antimicrob. Agents Chemother. 2005. Vol. 49, N. 6. P. 2180–2188. doi: 10.1128/aac.49.6.2180-2188.2005
- Wernsdorfer W.H., Noedl H. Molecular markers for drug resistance in malaria: use in treatment, diagnosis and epidemiology // Curr. Opin. Infect. Dis. 2003. Vol. 16, N. 6. P. 553–558. doi: 10.1097/01.qco.0000104295.87920.fd
Дополнительные файлы
