Витральная оценка дегрануляции тучных клеток, опосредованной IgG антителами

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. Данные о возможности активации и дегрануляции тучных клеток под действием IgG-содержащих иммунных комплексов указывают на наличие еще одного значимого пути активации тучных клеток и позволяют объяснить тяжелое течение инфекции после вакцинации.

Цель — оценка возможности активации и дегрануляции тучных клеток перитонеального экссудата мышей при связывании Fcγ-рецепторов.

Материалы и методы. В работе использовали вирусы гриппа A/Вьетнам/1194/2004(H5N1) NIBRG-14 и A/Нью Йорк/61/2015(H1N1)pdm09. В качестве источника тучных клеток использовали клетки перитонеального экссудата мышей линии CBA, содержавшего в среднем 7–10 % тучных клеток. Дегрануляцию тучных клеток через 40 мин после внесения в культуры содержащих IgG иммунных комплексов оценивали по высвобождению гистамина в культуральные надосадки. Уровень гистамина определяли флюориметрически после формирования его комплексов с ортофталиевым альдегидом, концентрацию гистамина выражали в нг/мл.

Результаты. В ответ на связывание Fcγ-рецепторов происходит дозозависимый выброс гистамина из тучных клеток. Продукция гистамина отмечена как при внесении модельных иммунных комплексов, сформированных термоаггрегированным IgG, так и при формировании комплексов, включавших IgG и вирусы гриппа разных штаммов. Более высокий уровень секреции гистамина отмечен при формировании комплексов IgG с вирусом гриппа штамма А/H5N1. Уровень продукции гистамина тучными клетками при связывании Fcγ-рецепторов был сопоставим с ответом на связывание Fcε-рецепторов.

Заключение. Связывание иммунных комплексов, содержащих иммуноглобулины класса IgG, с рецепторами на поверхности тучных клеток перитонеального экссудата приводит к их активации и дегрануляции, которая сопровождается дозозависимой секрецией гистамина, уровень которой также зависит от штамма вируса гриппа в составе комплекса.

Об авторах

Андрей Сергеевич Мамонтов

Институт экспериментальной медицины

Email: an.mamontow@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-5901-6942
SPIN-код: 2600-2094

младший научный сотрудник отдела иммунологии

Россия, Санкт-Петербург

Надежда Александровна Кутукова

Институт экспериментальной медицины

Email: i_n_a_777@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6765-6819
SPIN-код: 5659-3524

научный сотрудник отдела иммунологии

Россия, Санкт-Петербург

Юлия Андреевна Дешева

Институт экспериментальной медицины

Email: desheva@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9794-3520
SPIN-код: 4881-3786

д-р мед. наук, доцент, ведущий научный сотрудник отдела вирусологии им. акад. А.А. Смородинцева

Россия, Санкт-Петербург

Александр Витальевич Полевщиков

Институт экспериментальной медицины

Автор, ответственный за переписку.
Email: alexpol512@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3342-178X
SPIN-код: 9627-6694

д-р биол. наук, профессор, заведующий отделом иммунологии

Россия, Санкт-Петербург

Список литературы

  1. Agier J., Różalska S., Wiktorska M., et al. The RLR/NLR expression and pro-inflammatory activity of tissue mast cells are regulated by cathelicidin LL-37 and defensin hBD-2 // Sci Rep. 2018. Vol. 8, N 1. P. 11750. doi: 10.1038/s41598-018-30289-w
  2. Prussin C., Metcalfe D.D. 5. IgE, mast cells, basophils, and eosinophils // J Allergy Clin Immunol. 2006. Vol. 117, N 2 Suppl Mini-Primer. P. S450–S456. doi: 10.1016/j.jaci.2005.11.016
  3. Hu Y., Jin Y., Han D., et al. Mast cell-induced lung injury in mice infected with H5N1 influenza virus // J Virol. 2012. Vol. 86, N 6. P. 3347–3356. doi: 10.1128/JVI.06053-11
  4. Zarnegar B., Westin A., Evangelidou S., Hallgren J. Innate immunity induces the accumulation of lung mast cells during influenza infection // Front Immunol. 2018. Vol. 9. P. 2288. doi: 10.3389/fimmu.2018.02288
  5. Liu B., Meng D., Wei T., et al. Apoptosis and pro-inflammatory cytokine response of mast cells induced by influenza A viruses // PLoS One. 2014. Vol. 9, N 6. P. e100109. doi: 10.1371/journal.pone.0100109
  6. Wu H., Zhang S., Huo C., et al. iTRAQ-based proteomic and bioinformatic characterization of human mast cells upon infection by the influenza A virus strains H1N1 and H5N1 // FEBS Lett. 2019. Vol. 593, N 18. P. 2612–2627. doi: 10.1002/1873-3468.13523
  7. Ricke D.O. Two different antibody-dependent enhancement (ADE) risks for SARS-CoV-2 antibodies // Front Immunol. 2021. Vol. 12. P. 640093. doi: 10.3389/fimmu.2021.640093
  8. Wong J.P., Christopher M.E., Viswanathan S., et al. Activation of toll-like receptor signaling pathway for protection against influenza virus infection // Vaccine. 2009. Vol. 27, N 25–26. P. 3481–3483. doi: 10.1016/j.vaccine.2009.01.048
  9. Hu Y., Jin Y., Han D., et al. Mast cell-induced lung injury in mice infected with H5N1 influenza virus // J Virol. 2012. Vol. 86, N 6. P. 3347–3356. doi: 10.1128/JVI.06053-11
  10. Pelaia G., Vatrella A., Gallelli L., et al. Respiratory infections and asthma // Respir Med. 2006. Vol. 100, N 5. P. 775–784. doi: 10.1016/j.rmed.2005.08.025
  11. Mamontov A., Losev I., Korzhevskii D., et al. Study of antibody-dependent reactions of mast cells in vitro and in a model of severe influenza infection in mice // Front Immunol. 2021. Vol. 12. P. 689436. doi: 10.3389/fimmu.2021.689436
  12. Shore P.A., Burkhalter A., Cohn V.H.Jr. A method for the fluorometric assay of histamine in tissues // J Pharmacol Exp Ther. 1959. Vol. 127. P. 182–186.
  13. Galli S.J., Tsai M. IgE and mast cells in allergic disease // Nat Med. 2012. Vol. 18, N 5. P. 693–704. doi: 10.1038/nm.2755
  14. Fang Y., Larsson L., Bruhns P., Xiang Z. Apoptosis of mouse mast cells is reciprocally regulated by the IgG receptors FcγRIIB and FcγRIIIA // Allergy. 2012. Vol. 67, N 10. P. 1233–1240. doi: 10.1111/j.1398-9995.2012.02878.x
  15. Jönsson F., Daëron M. Mast cells and company // Front Immunol. 2012. Vol. 3. P. 16. doi: 10.3389/fimmu.2012.00016
  16. Junker F., Gordon J., Qureshi O. Fc gamma receptors and their role in antigen uptake, presentation, and T cell activation // Front Immunol. 2020. Vol. 11. P. 1393. doi: 10.3389/fimmu.2020.01393

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Уровни секреции гистамина после инкубации тучных клеток (ТК) с вирус-специфическими IgG-содержащими иммунными комплексами по сравнению со стимуляцией анти-IgE-антителами. Группы: 0 — контроль, забуференный физиологический раствор (ЗФР); 1 — инкубация ТК с частицами вируса A/H5N1; 2 — инкубация ТК с мышиной антисывороткой к вирусу гриппа A/H5N1; 3 — инкубация ТК с мышиной антисывороткой к вирусу гриппа штамма A/H5N1 и частицами вируса A/H5N1; 4 — инкубация ТК с мышиной антисывороткой к вирусу гриппа A/H5N1 с последующим добавлением антисыворотки к мышиному IgE. Число наблюдений 10 по каждой точке. Достоверность различий оценивали для групп 0, 1, 2 по сравнению с группой 3 по t-критерию Стьюдента. Здесь и далее различия достоверны: * при p < 0,05; ** при p < 0,01; *** при p < 0,001

Скачать (70KB)
3. Рис. 2. Оценка продукции гистамина клетками перитонеального экссудата под действием различных концентраций аггрегированного IgG. Количество наблюдений по каждой точке 5

Скачать (119KB)

© Эко-Вектор, 2024



Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).