Корреляция морфометрических и биохимических показателей регенерирующих тканей ожоговых ран кожи крыс при оценке репаративных свойств 2-этил-6-метил-3-гидроксипиридиния N-ацетил-6-аминогексаноата

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Обоснование. Аминогексановая кислота и ее производные — перспективные репаранты. Изучено влияние одного из производных аминогексановой кислоты на заживление экспериментальных термических ожогов кожи.

Цель — изучить взаимосвязь между морфометрическими и биохимическими показателями в ходе эксперимента по оценке эффективности использования 2 % мази с 2-этил-6-метил-3-гидроксипиридиния N-ацетил-6-аминогексаноатом для лечения ожогов кожи крыс.

Материалы и методы. Термический ожог кожи III степени площадью 225 мм2 моделировали у 63 белых нелинейных половозрелых самок крыс под общей анестезией препаратом Золетил 100. Крысы были разделены на три группы в зависимости от местного воздействия на область ожога: в контрольной группе 1 имитировали аппликации без нанесения веществ, в контрольной группе 2 наносили мазевую основу (полиэтиленгликоль), в опытной — 2 % мазь с 2-этил-6-метил-3-гидроксипиридиния N-ацетил-6-аминогексаноатом. Аппликации мази, мазевой основы и их имитации выполняли со вторых суток до завершения эксперимента. В контрольные сроки (7, 14 и 21-е сутки эксперимента) проводили морфометрические исследования ран кожи и определение биохимических показателей в гомогенатах регенерирующих тканей ран.

Результаты. У крыс опытной группы в фазу воспаления эффективность регенерации, подтвержденная динамикой площади раневых дефектов, в бóльшей степени коррелировала с шириной лейкоцитарного вала и толщиной грануляционной ткани, которые, в свою очередь, зависели от уровней фактора некроза опухоли альфа и фактора роста эндотелия сосудов соответственно. В фазу пролиферации площадь раневых дефектов в значительной степени коррелировала с протяженностью эпителиального клина и количеством фибробластов в поле зрения, которые, соответственно, зависели от уровней трансформирующего фактора роста бета и основного фактора роста фибробластов.

Выводы. Результаты корреляционного анализа свидетельствуют, что репаративный эффект местного воздействия 2 % мази с 2-этил-6-метил-3-гидроксипиридиния N-ацетил-6-аминогексаноатом обеспечивается активацией продукции факторов роста, стимулирующих пролиферацию капилляров и фибробластов — компонентов грануляционной ткани, активное формирование которой индуцирует репарацию эпидермиса, что подтверждается планиметрическими данными.

Об авторах

Марина Анатольевна Петровcкая

Тверской государственный медицинский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: solm1990@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1193-1778
SPIN-код: 5512-7253

аспирант, ассистент кафедры биологии

Россия, Тверь

Маргарита Борисовна Петрова

Тверской государственный медицинский университет

Email: pmargo-2612@mail.ru
ORCID iD: 0009-0004-7620-5958
SPIN-код: 4310-3839

д-р биол. наук, профессор, заведующая кафедрой биологии

Россия, Тверь

Елена Николаевна Егорова

Тверской государственный медицинский университет

Email: enegor@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-4323-5286
SPIN-код: 5805-8780

д-р мед. наук, доцент, заведующая кафедрой биохимии с курсом клинической лабораторной диагностики

Россия, Тверь

Елена Вячеславовна Андрианова

Тверской государственный медицинский университет

Email: andrianovaalenav@mail.ru
ORCID iD: 0009-0000-5825-7317
SPIN-код: 3946-9969

канд. биол. наук, ассистент кафедры биохимии с курсом клинической лабораторной диагностики

Россия, Тверь

Список литературы

  1. Калинин Р.Е., Сучков И.А., Мжаванадзе Н.Д. и др. Регенеративные технологии в лечении синдрома диабетической стопы // Гены и клетки. 2017. Т. 12, № 1. C. 15–26. EDN: YUPZOV doi: 10.23868/201703002
  2. Фаязов А.Д., Туляганов Д.Б., Камилов У.Р., Рузимуратов Д.А. Современные методы местного лечения ожоговых ран // Вестник экстренной медицины. 2019. Т. 12, № 1. С. 43–47. EDN: DTFIUN
  3. Имашева А.К., Лазько М.В. Особенности регенераторных процессов кожи при термических ожогах // Фундаментальные исследования. 2009. № 5. C. 22–24. EDN: KXPXUN
  4. Катаев В.А., Марков И.А. Перспектива использования новых ранозаживляющих медицинских средств для лечения ран и ожогов. В кн.: Сборник научных трудов 4-го съезда комбустиологов России. 2013. № 49–50. С. 102–104. EDN: ZAGLPF
  5. Наумкина В.В. Опыт лечения ожоговых ран повязками хитопран. В кн.: Материалы Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Термические поражения и их последствия». 2016. № 56–57. С. 137–138.
  6. Островский Н.В., Балянина И.Б. Местные консервативные лечения ожоговых ран с применением биоматериалов, разработанных саратовскими учеными. В кн.: Современные аспекты лечения термической травмы: материалы научно-практической конференции с международным участием, посвященной 70-летию первого ожогового центра России, Санкт-Петербург, 23–24 июня 2016 года. ГБУ Санкт-Петербургский НИИ скорой помощи им. И.И. Джанелидзе. 2016. С. 74–75. EDN: WIITQV
  7. Алексеева Н.Т. Морфологические особенности раневого процесса в коже при региональном лечебном воздействии: дис. ... д-ра мед. наук. Оренбург, 2015.
  8. Li Y., Xu D.B., Wang H.J. Effects of hydrogen sulfide on the secretion of cytokines in macrophages of deep partial-thickness burn wound in rats // Zhonghua Shao Shang Za Zhi. 2016. Vol. 32, N 7. P. 408–412. doi: 10.3760/cma.j.issn.1009-2587.2016.07.005
  9. Dikici S., Yar M., Bullock A.J., et al. Developing wound dressings using 2-deoxy-D-ribose to induce angiogenesis as a backdoor route for stimulating the production of vascular endothelial growth factor // Int J Mol Sci. 2021. Vol. 22, N 21. P. 11437. doi: 10.3390/ijms222111437
  10. Elbialy Z.I., Assar D.H., Abdelnaby A., et al. Healing potential of Spirulina platensis for skin wounds by modulating bFGF, VEGF, TGF-ß1 and α-SMA genes expression targeting angiogenesis and scar tissue formation in the rat model // Biomed Pharmacother. 2021. Vol. 137, N 1. doi: 10.1016/j.biopha.2021.111349
  11. Макаревич П.И., Ефименко А.Ю., Ткачук В.А. Биохимическая регуляция регенеративных процессов факторами роста и цитокинами: основные механизмы и значимость для регенеративной медицины // Биохимия. 2020. Т. 85, № 1. С. 15–33. EDN: OPVJOE doi: 10.31857/S0320972520010029
  12. Gan D., Su Q., Su H., et al. Burn ointment promotes cutaneous wound healing by modulating the PI3K/AKT/mTOR signaling pathway // Front Pharmacol. 2021. Vol. 12. P. 631102. doi: 10.3389/fphar.2021.631102
  13. Пахомов Д.В., Блинова Е.В., Шимановский Д.Н. и др. Доказательные аспекты стимулирования заживления неосложненной раны при локальном применении серебряной соли ацексамовой кислоты // Оперативная хирургия и клиническая анатомия. 2020. Т. 4, № 1. С. 19–25. EDN: SPMTIJ doi: 10.17116/operhirurg2020401119
  14. Андрианова Е.В. Биохимические аспекты прорегенераторного действия нового производного N-ацетил-6-аминогексановой кислоты: дис. ... канд. биол. наук. Тверь, 2023. 139 с. EDN: JQFLEA
  15. Перетягин С.П., Мартусевич А.К., Гришина А.А. и др. Лабораторные животные в экспериментальной медицине. Нижний Новгород: Нижегородский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии, 2011. 300 c. EDN: SIXODX
  16. Огнева Е.С., Савченко Е.С., Табоякова Л.А. Анестезия самок мышей при хирургической трансплантации эмбрионов // Биомедицина. 2021. Т. 17, № S3. С. 64–69. EDN: GQUYTV doi: 10.33647/2713-0428-17-3E-64-69
  17. Файн А.М., Петухова М.Н., Мигулева И.Ю., Савотченко А.М. Сравнительная оценка двух схем внутримышечного наркоза у лабораторных крыс в эксперименте // Вопросы реконструктивной и пластической хирургии. 2019. Т. 22, № 2. С. 53–61. EDN: OTJJTX doi: 10.17223/1814147/69/07
  18. Петровская М.А. Доклиническая оценка эффективности репаративных свойств 2-этил-6-метил-3-гидроксипиридиния N-ацетил-6-аминогексаноата // Тверской медицинский журнал. 2023. № 6. С. 49–52. EDN: MQWKYI
  19. Пахомова А.Е., Пахомова Ю.В., Пахомова Е.Е. Новый способ экспериментального моделирования термических ожогов кожи у лабораторных животных, отвечающий принципам Good Laboratory Practice (надлежащей лабораторной практики) // Медицина и образование в Сибири. 2015. № 3. C. 97–100. EDN: VXOLBT
  20. Семченко В.В., Барашкова С.А., Ноздрин В.И., Артемьев В.Н. Гистологическая техника: учебное пособие для студентов медицинских вузов. 3-е изд. Омск; Орел: Омская областная типография, 2006.
  21. Петровская М.А., Петрова М.Б., Андрианова Е.В., Егорова Е.Н. Особенности морфологии фаз регенерации и динамика уровней факторов роста при применении 2-этил-6-метил-3-гидроксипиридиния N-ацетил-6-аминогексаноата для репарации термических ожогов кожи крыс // Медицинский академический журнал. 2023. Т. 23, № 3. С. 21–29. EDN: MJGYMP doi: 10.17816/MAJ606647
  22. Петровская М.А., Петрова М.Б., Андрианова Е.В., Егорова Е.Н. Динамика уровней цитокинов в регенерирующих тканях термических ожогов кожи крыс при применении мази с новым производным N-ацетиламиногексановой кислоты // Гены и клетки. 2022. Т. 17, № 3. С. 178–179. EDN: CJOMZS
  23. Омельяненко Н.П., Слуцкий Л.И. Соединительная ткань (гистофизиология и биохимия). Москва: Известия, 2009. EDN: QKSAIH
  24. El Ayadi A., Jay J.W., Prasai A. Current approaches targeting the wound healing phases to attenuate fibrosis and scarring // Int J Mol Sci. 2020. Vol. 21, N 3. P. 1105. doi: 10.3390/ijms21031105
  25. Ahn H.N., Kang H.S., Park S.J., et al. Safety and efficacy of basic fibroblast growth factors for deep second-degree burn patients // Burns. 2020. Vol. 46, N 8. P. 1857–1866. doi: 10.1016/j.burns.2020.06.019
  26. Otani Y., Komura M., Komura H., et al. Optimal amount of basic fibroblast growth factor in gelatin sponges incorporating β-tricalcium phosphate with chondrocytes // Tissue Eng Part A. 2015. Vol. 21, N 3–4. P. 627–636. doi: 10.1089/ten.TEA.2013.0655
  27. Chakrabarti S., Mazumder B., Rajkonwar J., et al. bFGF and collagen matrix hydrogel attenuates burn wound inflammation through activation of ERK and TRK pathway // Sci Rep. 2021. Vol. 11, N 1. P. 3357. doi: 10.1038/s41598-021-82888-9
  28. Tran-Nguyen T.M., Le K.T., Nguyen L.T., et al. Third-degree burn mouse treatment using recombinant human fibroblast growth factor 2 // Growth Factors. 2020. Vol. 38, N 5–6. P. 282–290. doi: 10.1080/08977194.2021.1967342
  29. Nagaraja S., Chen L., DiPietro L.A., et al. Predictive approach identifies molecular targets and interventions to restore angiogenesis in wounds with delayed healing // Front Physiol. 2019. Vol. 10. P. 636. doi: 10.3389/fphys.2019.00636
  30. Rahman M.S., Islam R., Rana M.M., et al. Characterization of burn wound healing gel prepared from human amniotic membrane and aloe vera extract // BMC Complement Altern Med. 2019. Vol. 19. P. 115. doi: 10.1186/s12906-019-2525-5
  31. Образцова А.Е., Ноздреватых А.А. Морфофункциональные особенности репаративного процесса при заживлении кожных ран с учетом возможных рубцовых деформаций (обзор литературы) // Вестник новых медицинских технологий. Электронное издание. 2021. № 1. C. 98–107. EDN: DNUEYX doi: 10.24412/2075-4094-2021-1-3-3

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Рис. 1. Динамика сокращения площади дефектов кожи крыс в процессе регенерации термического ожога. * Различие статистически значимо (р < 0,05) между показателем у животных опытной группы и контрольных групп 1 и 2

Скачать (141KB)
Метаданные
3. Рис. 2. Морфологическая картина грануляционной ткани у крыс контрольной группы 1 (а) и опытной группы (b) на 7-е сутки. Гематоксилин и эозин. ×400

Скачать (201KB)
Метаданные
4. Рис. 3. Морфологическая картина области поражения у крыс контрольной группы 1 (а) и опытной группы (b) на 14-е сутки наблюдения. Гематоксилин и эозин. ×400

Скачать (229KB)
Метаданные

© Эко-Вектор, 2024



Согласие на обработку персональных данных

 

Используя сайт https://journals.rcsi.science, я (далее – «Пользователь» или «Субъект персональных данных») даю согласие на обработку персональных данных на этом сайте (текст Согласия) и на обработку персональных данных с помощью сервиса «Яндекс.Метрика» (текст Согласия).